王 沛，王 萌，李婷婷，鄭曉楠，梁勤立，陳小慶1，*

(1.江西農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物科學(xué)技術(shù)學(xué)院，江西省動(dòng)物疫病診斷與防控重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，南昌 330045；2.中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院蘭州獸醫(yī)研究所，家畜疫病病原生物學(xué)國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，蘭州 730046)

剛地弓形蟲()是一種分布廣泛且危害嚴(yán)重的重要人畜共患病病原，全世界約有三分之一的人感染。弓形蟲生活史相對(duì)復(fù)雜，具有多宿主和多階段的發(fā)育周期。其生命周期包括有性生殖階段和無性生殖階段，但有性生殖階段僅存在于終末宿主貓科動(dòng)物的腸道黏膜中，而無性生殖階段可以發(fā)生在人及幾乎所有溫血?jiǎng)游镏?。弓形蟲的傳播方式多樣，其有性生殖階段和無性生殖階段的任一環(huán)節(jié)均可感染宿主，這也是弓形蟲病患者基數(shù)龐大的重要原因之一。弓形蟲可在宿主的腦部、心以及骨骼肌中形成包囊，人和動(dòng)物攝入未烹飪或烹飪不完全的帶有感染力包囊的食物以及被其成熟卵囊污染的水，是感染弓形蟲病的重要途徑。大多數(shù)弓形蟲病患者為隱性感染，但對(duì)于HIV/AIDS患者以及免疫功能低下的個(gè)體而言，急性感染是相對(duì)常見的，甚至有致死的可能性。弓形蟲對(duì)孕婦和孕畜的危害巨大，速殖子可穿過胎盤，誘發(fā)先天性弓形蟲病，導(dǎo)致胎兒流產(chǎn)或生理缺陷。因此，對(duì)弓形蟲毒力因子的研究具有深遠(yuǎn)的公共衛(wèi)生學(xué)意義。

弓形蟲入侵宿主細(xì)胞的機(jī)制復(fù)雜，完整的入侵過程需要多種分泌蛋白共同協(xié)作。與弓形蟲毒力相關(guān)的主要調(diào)節(jié)因子有棒狀體蛋白(rhoptry protein, ROP)、致密顆粒(dense granule protein, GRA)、微線體蛋白(microneme protein, MIC)和表面抗原(surface antigen, SAG)等。其中，MIC蛋白是微線體分泌的一類在弓形蟲入侵早期具有重要功能的蛋白，對(duì)于弓形蟲識(shí)別、黏附及侵入宿主細(xì)胞尤為重要，并且還參與肌絲滑動(dòng)，與弓形蟲的運(yùn)動(dòng)能力緊密相關(guān)。MIC蛋白的缺失，很有可能會(huì)導(dǎo)致弓形蟲失去入侵宿主細(xì)胞的能力，進(jìn)而影響毒力的發(fā)揮。MIC蛋白由多種跨膜蛋白和黏附蛋白組成。截至目前，已經(jīng)發(fā)現(xiàn)多種MIC基因，而且這些蛋白具有經(jīng)典的信號(hào)肽序列。這些蛋白結(jié)構(gòu)多樣且復(fù)雜，但是許多蛋白(如TgMIC1-4和TgMIC6-9)含有與高等真核生物蛋白質(zhì)黏附的結(jié)構(gòu)域或同源結(jié)構(gòu)。對(duì)于具有黏附結(jié)構(gòu)域的MICs蛋白，其可以與宿主細(xì)胞表面的受體和糖類結(jié)合，從而形成與宿主細(xì)胞相互作用的復(fù)合物。二者形成的復(fù)合物會(huì)分泌到蟲體的表面，在弓形蟲毒力和致病性方面發(fā)揮重要作用。通過蛋白結(jié)構(gòu)和保守位點(diǎn)預(yù)測(cè)發(fā)現(xiàn)，部分MIC蛋白和假定蛋白均含有EGF_3結(jié)構(gòu)域，并且同時(shí)還有相似的蛋白結(jié)構(gòu)。通過蛋白結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)結(jié)果和ToxoDB數(shù)據(jù)庫中提供的信息，作者挑選了4個(gè)可能與MIC蛋白相關(guān)的假定蛋白進(jìn)行基因功能學(xué)研究。此前眾多學(xué)者已經(jīng)對(duì)大部分MIC蛋白的功能進(jìn)行解析，但并未對(duì)本研究選定的4個(gè)MIC相關(guān)的假定蛋白進(jìn)行研究。那么這4個(gè)MIC假定蛋白是否也具有與MIC蛋白相似的結(jié)構(gòu)和生物學(xué)功能呢？本研究基于CRISPR/Cas9技術(shù)，對(duì)弓形蟲I型RH蟲株的4個(gè)MIC假定蛋白相關(guān)基因進(jìn)行敲除，以了解這4個(gè)基因?qū)蜗x的生長(zhǎng)和對(duì)小鼠致病性的影響，為弓形蟲疫苗的開發(fā)以及相關(guān)基因的研究奠定一定的基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 蟲株與實(shí)驗(yàn)動(dòng)物

弓形蟲RH蟲株速殖子由中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院蘭州獸醫(yī)研究所保存，30只6～8周齡SPF雌性昆明小鼠購自中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院蘭州獸醫(yī)研究所實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心。

1.2 主要試劑

DMEM高糖培養(yǎng)基、胎牛血清(FBS)以及0.25%胰酶均購自美國Gibco公司。質(zhì)粒小提試劑盒購自北京天根生化有限公司，膠回收試劑盒購自O(shè)MEGA公司，乙胺嘧啶粉末購自美國Sigma-Aldrich公司，大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞購自南京諾唯贊技術(shù)有限公司，其余試劑均為國產(chǎn)分析純。

1.3 細(xì)胞和蟲體培養(yǎng)

使用添加了10% FBS DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng)HFF細(xì)胞，待細(xì)胞長(zhǎng)滿，換成添加2% FBS的培養(yǎng)基，用于傳代弓形蟲I型RH蟲株親本株和基因敲除株的速殖子。待蟲體大量逸出時(shí)，收集蟲體和細(xì)胞，用1 mL注射器反復(fù)抽吸，裂解宿主細(xì)胞，使蟲體全部逸出。用孔徑為5 μm的Millipore過濾器過濾速殖子，最后將速殖子接入長(zhǎng)滿HFF的細(xì)胞中傳代培養(yǎng)。

1.4 目的基因結(jié)構(gòu)特征分析

將從ToXoDB下載的目的基因蛋白序列導(dǎo)入蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)域、家族和功能位點(diǎn)數(shù)據(jù)庫(https://prosite.expasy.org/)，獲得目的基因活性功能位點(diǎn)。將目的基因蛋白序列導(dǎo)入蛋白3D結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)網(wǎng)站(https://swissmodel.expasy.org/interactive/)，以評(píng)分最高的蛋白結(jié)構(gòu)進(jìn)行3D建模，最后用Discovery Studio 4.5 分析蛋白結(jié)構(gòu)。

1.5 弓形蟲基因敲除株的構(gòu)建、篩選和鑒定

利用CRISPR/Cas9靶點(diǎn)選擇網(wǎng)站(http://www.e-crisp.org/E-CRISP/)對(duì)弓形蟲RH蟲株的4個(gè)目的基因(TGME49_222975、TGME49_275798、TGME49_238220和TGME49_238210)進(jìn)行靶點(diǎn)預(yù)測(cè)，并設(shè)計(jì)相關(guān)引物(表1)。根據(jù)設(shè)計(jì)的引物，以pSAG1::CAS9-U6::sgUPRT為模板，利用Q5定點(diǎn)突變?cè)噭┖袑⒛０遒|(zhì)粒中的靶點(diǎn)序列(SgUPRT)替換為目的基因靶點(diǎn)特異的SgRNA序列，酶切環(huán)化后得到帶有目的基因靶點(diǎn)序列的質(zhì)粒，轉(zhuǎn)化后測(cè)序鑒定獲得陽性質(zhì)粒。用表2設(shè)計(jì)的引物，以RH蟲株DNA為模板，擴(kuò)增目的基因的U3、U5同源臂，以DHFR-D質(zhì)粒為模板擴(kuò)增抗性片段DHFR-TS，膠回收后，利用同源重組的方法，將目的基因的U3、U5和DHFR-TS連接至PUC19載體，獲得帶有相關(guān)目的基因同源臂以及乙胺嘧啶抗性片段的質(zhì)粒，轉(zhuǎn)化后測(cè)序鑒定獲得陽性質(zhì)粒。最后通過電擊轉(zhuǎn)染的方式將帶有目的基因靶點(diǎn)序列的質(zhì)粒與帶有目的基因臂以及DHFR的抗性片段導(dǎo)入弓形蟲RH速殖子中(圖1)，用乙胺嘧啶進(jìn)行篩選陽性蟲株。96孔板單克隆篩選后提取蟲體DNA，用之前設(shè)計(jì)的引物進(jìn)行PCR驗(yàn)證(表3)。所有目的基因缺失株構(gòu)建原理相同。

表1 目的基因sgRNATable 1 sgRNA of target genes

表2 擴(kuò)增同源片段引物Table 2 Primers for amplification of homologous fragments

表3 驗(yàn)證敲除引物Table 3 Primers used for identification of the deletion

圖1 TGME49_222975基因敲除原理示意圖Fig.1 Schematic diagram of disrupting TGME49_222975

1.6 噬斑試驗(yàn)

將剛逸出的速殖子接種到長(zhǎng)滿HFF細(xì)胞的12孔板中，分別接入300個(gè)目的基因缺失株和RH野生株速殖子，細(xì)胞培養(yǎng)箱培養(yǎng)7 d后，棄去原培養(yǎng)基，用PBS洗滌3遍，每孔加入1 mL 4%多聚甲醛固定液固定30 min，棄掉固定液，隨后每孔加入500 μL 0.5%結(jié)晶紫染液,染色10 min，棄掉結(jié)晶紫染液，再用PBS洗滌兩邊，倒置晾干，觀察并拍照記錄結(jié)果。

1.7 復(fù)制試驗(yàn)

長(zhǎng)滿HFF細(xì)胞的12孔板中每孔分別接入1×10個(gè)目的基因缺失株和RH野生株速殖子，培養(yǎng)24 h，棄掉原培養(yǎng)基，每孔加入1 mL 4%多聚甲醛固定液，固定30 min，顯微鏡下分別記錄含有16、8、4、2、1個(gè)速殖子的納蟲空泡的數(shù)目及百分比。

1.8 逸出試驗(yàn)

長(zhǎng)滿單層HFF細(xì)胞的12孔板中每孔分別接入2×10個(gè)剛逸出的目的基因缺失株和RH野生株速殖子，培養(yǎng)28～32 h，棄去原有培養(yǎng)基，每孔加入1 mL提前37 ℃預(yù)熱添加了3 μmol·LA23187鈣離子的DMEM培養(yǎng)基，立刻用相機(jī)記錄速殖子實(shí)時(shí)逸出情況。

1.9 小鼠毒力試驗(yàn)

將30只SPF級(jí)6～8周齡昆明雌鼠隨機(jī)分為5組，每組6只。以腹腔注射的方式接種基因缺失株速殖子和野生株RH速殖子，每只小鼠接種100個(gè)速殖子。每天定時(shí)觀察發(fā)病情況，并記錄小鼠的死亡情況。

1.10 基于ToXoDB數(shù)據(jù)庫對(duì)目的基因進(jìn)行表達(dá)差異分析

通過ToxoDB(http：/ / toxodb.org)網(wǎng)站，分別檢索4個(gè)目的基因在不同基因型弓形蟲蟲株、不同生活史階段以及不同分裂周期的表達(dá)量數(shù)據(jù)，并對(duì)此數(shù)據(jù)進(jìn)行差異化分析。

2 結(jié) 果

2.1 目的基因結(jié)構(gòu)分析

用ExPASy分析4個(gè)目的基因蛋白序列(圖2)。未在TGME49_222975中檢索到保守的結(jié)構(gòu)域，TGME49_275798檢索到1個(gè)EGF_3結(jié)構(gòu)域，TGME49_238220和TGME49_238210均發(fā)現(xiàn)含有1個(gè)SRCR_2結(jié)構(gòu)域和1個(gè)EGF_3結(jié)構(gòu)域。SRCR_2結(jié)構(gòu)域上有3個(gè)二硫鍵，EGF_3位點(diǎn)上有2個(gè)二硫鍵。SWISS-MODEL蛋白建模結(jié)果與ExPASy結(jié)果相符，并且發(fā)現(xiàn)TGME49_238220和TGME49_238210蛋白結(jié)構(gòu)相似，蛋白功能可能比較相似；而TGME49_222975的蛋白結(jié)構(gòu)與其余3個(gè)目的基因的蛋白結(jié)構(gòu)差異較大，因此功能可能有較大差異。

a.保守結(jié)構(gòu)域預(yù)測(cè)；b～e. 3D結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)。掃文章首頁OSID碼可查看彩圖a. Conservative structure domain prediction; b-e. 3D structure prediction. Scan OSID code for the color pictures圖2 目的基因保守結(jié)構(gòu)域及蛋白3D結(jié)構(gòu)Fig.2 Conserved structural domain of target gene and 3D structure of protein

2.2 目的基因敲除蟲株的鑒定

將電轉(zhuǎn)后的速殖子接入25T長(zhǎng)滿單層HFF細(xì)胞，加入乙胺嘧啶進(jìn)行篩選，待速殖子全部逸出后接入96孔板長(zhǎng)滿單層HFF細(xì)胞中進(jìn)行單克隆篩選。提取單克隆蟲株的DNA，用表3中引物檢驗(yàn)是否成功篩選出目的蟲株。如圖3所示，4個(gè)目的基因缺失株(RHΔTGME49_222975、RHΔTGME49_275798、RHΔTGME49_238200和RHΔTGME49_238210)均無法擴(kuò)增出PCR2目的基因片段，而成功擴(kuò)增出PCR1、PCR3目的基因片段。對(duì)于RH野生株，均無法擴(kuò)增出PCR1、PCR3基因片段，而PCR2可以擴(kuò)增出目的大小基因片段，這說明成功構(gòu)建4個(gè)目的基因敲除株。

圖3 目的基因的敲除驗(yàn)證Fig.3 Identification of the knock-out strain

2.3 噬斑試驗(yàn)

目的基因缺失株和RH野生株的速殖子以相同數(shù)量接種至12孔板長(zhǎng)滿單層HFF細(xì)胞培養(yǎng)7 d后，固定染色并拍照記錄試驗(yàn)結(jié)果。結(jié)果表明，4個(gè)目的基因敲除株與野生株RH所形成的噬斑數(shù)量和大小沒有明顯差異(>0.05，圖4)。

a.空斑大小及數(shù)目；b.空斑大小及數(shù)目可視化分析,n.s.P>0.05。掃文章首頁OSID碼可查看彩圖a.Size and number of plaques; b. Visual analysis of plaques size and number, n.s.P>0.05. The color pictures can be found by scanning the OSID code on the front page圖4 目的基因缺失株和RH野生株空班形成情況Fig.4 Plaques formed by wild-type and the deletion strain

2.4 復(fù)制試驗(yàn)

接種目的基因缺失株和RH野生株1×10個(gè)速殖子的12孔板長(zhǎng)滿單層HFF細(xì)胞培養(yǎng)24 h后，棄去原培養(yǎng)基后固定，顯微鏡下觀察包含不同速殖子個(gè)數(shù)的納蟲空泡數(shù)量。結(jié)果顯示，含有16個(gè)速殖子的納蟲空泡數(shù)目最多，4個(gè)目的基因缺失株和RH野生株包含相同速殖子個(gè)數(shù)的納蟲空泡數(shù)目差別不顯著(>0.05，圖5)。

掃文章首頁OSID碼可查看彩圖The color picture can befound by scanning the OSID code on the front page圖5 目的基因缺失株和RH野生株體外復(fù)制情況Fig.5 Comparison of in vitro replication between the deletion strain and wild-type

2.5 逸出試驗(yàn)

接種目的基因敲除株和RH野生株2×10個(gè)速殖子12孔板長(zhǎng)滿單層HFF細(xì)胞培養(yǎng)28～32 h,棄去原培養(yǎng)基，加入一定濃度鈣離子，拍照記錄速殖子逸出情況。結(jié)果顯示，目的基因敲除株和RH野生株納蟲空泡內(nèi)的速殖子2 min內(nèi)大部分可全部逸出，在1 及1.5 min時(shí)間點(diǎn)時(shí)速殖子逸出情況也大體相似(圖6)。

圖6 RHΔTGME49_222975和RH野生株逸出情況Fig.6 Comparison of in vitro egress of RHΔTGME49_222975 and wild strain

2.6 小鼠毒力試驗(yàn)

5組小鼠(6只·組)以腹腔注射的方式接種目的基因缺失株和RH野生株速殖子100個(gè)·只。結(jié)果顯示，5組小鼠在8～11 d內(nèi)全部死亡，4個(gè)目的基因缺失株小鼠存活時(shí)間較接種野生株小鼠稍有延長(zhǎng)，但差異并不明顯(>0.81，圖7)。

掃文章首頁OSID碼可查看彩圖The color picture can be found by scanning the OSID code on the front page圖7 目的基因缺失株與RH野生株對(duì)昆明鼠的毒力情況Fig.7 Survival curves of Kunming mice infected with the deletion strain and wild-type strain

2.7 基于ToxoDB數(shù)據(jù)庫數(shù)據(jù)對(duì)目的基因的表達(dá)差異分析

通過ToxoDB數(shù)據(jù)庫檢索目的基因在不同弓形蟲蟲株(圖8a)、不同分裂期表達(dá)量(圖8b)和卵囊、速殖子和緩殖子期轉(zhuǎn)錄水平(圖8c)的數(shù)據(jù)，并分析發(fā)現(xiàn)，TGME49_222975、TGME49_275798相關(guān)數(shù)據(jù)并不齊全，不適合進(jìn)行后續(xù)分析。TGME49_238220、TGME49_238210表達(dá)水平低，其中，TGME49_238220、TGME49_238210在RH蟲株中的表達(dá)量接近，表達(dá)量最高的蟲株分別為VEG和Pru，但表達(dá)量總體低。TGME49_238220不同分裂期表達(dá)量沒有變化，TGME49_238210表達(dá)量在S1分裂期間有一定增加。TGME49_238220、TGME49_238210在弓形蟲卵囊、速殖子和緩殖子階段的轉(zhuǎn)錄水平均不高，不同分裂期表達(dá)量差異不顯著(圖8)。

a、b、c分別代表目的基因在弓形蟲不同分裂期、不同基因型和不同生命階段的表達(dá)量差異分析a, b, c represent the differential expression of target genes in different division stages, different genotypes and different life stages of Toxoplasma gondii, respectively圖8 基于ToxoDB數(shù)據(jù)庫的目的基因表達(dá)差異分析Fig.8 Differential expression analysis of target genes based on ToxoDB database

3 討 論

CRISPR/Cas9作為一種操作簡(jiǎn)便、高效的基因編輯工具，已經(jīng)廣泛用于分子生物學(xué)和遺傳學(xué)研究。經(jīng)過長(zhǎng)時(shí)間的發(fā)展，CRISPR工具已經(jīng)是弓形蟲基因的編輯常用工具之一，眾多相關(guān)研究成果已相繼發(fā)表。MIC基因是決定弓形蟲毒力的重要基因之一，大多數(shù)MIC基因生物學(xué)功能已經(jīng)被相繼解析，但對(duì)于與MIC相關(guān)基因的研究相對(duì)有限。本研究基于轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)，有針對(duì)地挑選4個(gè)與MIC基因相關(guān)的假定蛋白展開功能學(xué)研究，以期找到與重要MIC基因聯(lián)系緊密的基因，更全面地解析MIC基因功能，為以后開發(fā)高效的弓形蟲疫苗奠定一定基礎(chǔ)。

多種微線體蛋白都含有EGF同源類似的結(jié)構(gòu)域或EGF樣結(jié)構(gòu)域，這些結(jié)構(gòu)域?qū)τ谖⒕€體蛋白間形成復(fù)合物，從而提高弓形蟲對(duì)宿主細(xì)胞的黏附能力十分重要。EGF還可以通過與宿主細(xì)胞的EGFR結(jié)合，激活EGFR和Akt通路，進(jìn)而阻止由宿主自噬蛋白和溶酶體蛋白啟動(dòng)蟲體清除程序。SCRC是一種富含半胱氨酸的保守結(jié)構(gòu)域，其功能不僅與蟲體黏附宿主細(xì)胞緊密相關(guān)，還與蟲體調(diào)節(jié)宿主免疫反應(yīng)相關(guān)。其作為傳統(tǒng)意義上的模式識(shí)別受體，作為蛋白與蛋白相互作用中的受體是其發(fā)揮功能的重要體現(xiàn)。ExPASy檢索目的蛋白序列保守結(jié)構(gòu)域發(fā)現(xiàn)，TGME49_275798含有1個(gè)EGF_3位點(diǎn)，TGME49_238220和TGME49_238210含有1個(gè)EGF_3和1個(gè)SCRC保守結(jié)構(gòu)域。EGF和SCRC結(jié)構(gòu)對(duì)于弓形蟲對(duì)宿主細(xì)胞的黏附、微線體蛋白之間形成復(fù)合物、蛋白與宿主蛋白發(fā)揮相互作用以及調(diào)節(jié)宿主的免疫反應(yīng)有重要作用。以同樣方法分析部分MIC蛋白序列(如MIC3和MIC8)的保守結(jié)構(gòu)域和3D結(jié)構(gòu)發(fā)現(xiàn)，MIC3和MIC8蛋白也含有EGF_3位點(diǎn)。目的基因TGME49_238220和TGME49_23821與MIC3和MIC8蛋白3D結(jié)構(gòu)也十分相似。

基于此，作者利用CRISPR技術(shù)敲除RH野生株4個(gè)與MIC相關(guān)的假定蛋白基因進(jìn)行功能研究，成功獲得4個(gè)目的基因缺失株RHΔTGME49_222975、RHΔTGME49_275798、RHΔTGME49_238200和RHΔTGME49_238210。隨后比較基因敲除株與RH野生株在體外復(fù)制能力、逸出能力、形成空班的能力以及對(duì)昆明鼠的毒力間的差異。結(jié)果表明，目的基因缺失株與RH野生株形成的包含相同速殖子個(gè)數(shù)的納蟲空泡數(shù)目大體相當(dāng)，目的基因缺失株與RH野生株速殖子的逸出能力以及形成空斑的數(shù)目和大小，接種相同劑量的目的基因缺失株和RH野生株的昆明鼠從開始死亡時(shí)間到全部死亡時(shí)間差別并不大，均無統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(>0.05)。此外，基于定位蟲株的構(gòu)建，間接免疫熒光試驗(yàn)和蛋白免疫印記試驗(yàn)結(jié)果均表明目的基因在速殖子階段并不表達(dá)或表達(dá)量極低以至于無法檢測(cè)到。以上結(jié)果均說明這4個(gè)與MIC相關(guān)的目的基因并不是影響弓形蟲體外生長(zhǎng)能力、逸出能力以及毒力的重要基因。

通過ToxoDB數(shù)據(jù)庫，將目的基因在不同基因型弓形蟲蟲株、不同細(xì)胞周期的表達(dá)水平以及不同生活史階段的轉(zhuǎn)錄水平數(shù)據(jù)進(jìn)行差異分析。但沒有檢索到TGME49_222975和TGME49_275798完整的可用于分析的轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)。通過比較TGME49_238220和TGME49_238210轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)發(fā)現(xiàn)，TGME49_238220在Pru中的表達(dá)量最高，在RH中表達(dá)量最低。TGME49_238210在VEG中表達(dá)量最高。但相較于其他功能較強(qiáng)大的基因，TGME49_238220與TGME49_238210在Pru、VEG中的表達(dá)水平并不高。這或許解釋了目的基因缺失株對(duì)弓形蟲體外復(fù)制能力、逸出能力以及對(duì)昆明鼠的毒力并未產(chǎn)生顯著影響。TGME49_238220在不同的分裂周期及不同生活史階段(卵囊、速殖子和緩殖子)轉(zhuǎn)錄水平無明顯變化，說明其對(duì)于弓形蟲分裂、卵囊的形成、速殖子緩殖子之間的轉(zhuǎn)化沒有影響或所發(fā)揮的功能有限。TGME49_238210在弓形蟲S1期表達(dá)量最高，說明其可能在分裂S1期中有一定作用，但表達(dá)量相對(duì)較低，也說明其作用有限。TGME49_238220和TGME49_238210在不同生活史階段中表達(dá)量有輕微浮動(dòng)，但幅度較小。數(shù)據(jù)分析結(jié)果表明TGME49_238220和TGME49_238210在RH中的表達(dá)量較低，在不同分裂周期表達(dá)量、不同生活史階段(卵囊、速殖子和緩殖子)的轉(zhuǎn)錄水平均較低，與基因缺失株表型試驗(yàn)結(jié)果相吻合。

本研究結(jié)果表明，4個(gè)目的基因均不是弓形蟲的重要“獨(dú)立”毒力因子，但可能在其他方面發(fā)揮著重要生物學(xué)功能。本研究為后續(xù)開發(fā)弓形蟲疫苗、全面解析弓形蟲蛋白的功能奠定了基礎(chǔ)。

4 結(jié) 論

成功構(gòu)建4個(gè)以弓形蟲RH野生株為載體的MIC相關(guān)假定蛋白基因缺失株(RHΔTGME49_222975、RHΔTGME49_275798、RHΔTGME49_238200和RHΔTGME49_238210)，基因缺失株和野生株RH的噬斑試驗(yàn)、復(fù)制試驗(yàn)、逸出試驗(yàn)以及小鼠毒力試驗(yàn)結(jié)果均差異不顯著，可見4個(gè)目的基因均不是弓形蟲的重要“獨(dú)立”毒力因子。