吳鑠珺,王曙東,蘇 華,劉文雅
(中國人民解放軍東部戰(zhàn)區(qū)總醫(yī)院藥劑科,江蘇 南京 210012)
川芎嗪是中藥川芎的主要有效成分,可有效抑制 肺癌細胞、乳腺癌細胞等多種腫瘤細胞的增殖與遷移,誘導(dǎo)凋亡和自噬[1-2]。川芎嗪主要以鹽酸川芎嗪(LTH)和磷酸川芎嗪形式存在,其分子中的甲基易被氧化代謝,存在代謝快、半衰期短、生物利用度低等缺點,臨床使用須頻繁給藥,易致蓄積性中毒。將其制成緩釋制劑,有利于提高療效及降低毒副作用[3]。查閱文獻發(fā)現(xiàn),利用MCF-7及A549細胞培養(yǎng)模型,可檢測川芎嗪納米粒的細胞毒性。細胞攝取試驗結(jié)果表明,修飾后的主動靶向納米粒的攝取量、熒光強度均顯著高于川芎嗪溶液[4]。為此,本研究中以聚乳酸-羥基乙酸共聚物(PLGA)為載體材料,制備殼寡糖修飾的鹽酸川芎嗪緩釋微球(COS-LTH-MS)并進行體外評價,旨在為中藥抗腫瘤制劑的開發(fā)提供實驗室數(shù)據(jù)?,F(xiàn)報道如下。
ER-182A型電子分析天平(日本A&D公司);Waters 1525型高效液相色譜儀,含717型自動進樣器、2487型紫外檢測器、Waters Empower色譜軟件(美國Waters公司);Nicolet 5700型傅里葉變換紅外光譜儀(美國Thermo公司);85-2型溫控磁力攪拌器(江蘇金怡儀器科技有限公司);SM-650D型超聲波細胞粉碎機(南京貝帝實驗儀器有限公司);TM3000型臺式掃描電鏡(上海辛茨精密儀器有限公司);ZS90型納米粒徑測定儀(廈門億恩達科技有限公司);Eppendorf 5427型低速離心機(北京欣興強森生物科技有限公司);Bio-Rad iMark酶標(biāo)儀(上海麥莎生物科技有限公司);Thermo CO2培養(yǎng)箱(賽默飛世爾科技<中國>有限公司);TCS SP2型激光共聚焦顯微鏡(德國Leica公司)。
鹽酸川芎嗪原料藥(北京燕京藥業(yè)有限公司,批號為180605);鹽酸川芎嗪對照品(中國食品藥品檢定研究院,批號為110817-200305,含量98%);聚乙烯醇(PVA,上海五四試劑廠,批號為181022);PLGA(濟南岱罡生物工程有限公司,批號為181115);殼寡糖(COS,青島博智匯力生物科技有限公司,批號為190103);2-(N-嗎啉)乙磺酸(MES,愛爾蘭Megazyme公司,批號為181025);1-乙基-(3-二甲基氨基丙基)碳酰二亞胺鹽酸鹽(EDC,批號為800107)、N-羥基琥珀酰亞胺(NHS,批號為A1016),均購自美國Sigma公司;RPMI 1640培養(yǎng)基(批號為30030)、胎牛血清(FBS,批號為11012),均購自美國Gibco公司;CCK-8試劑盒(日本同仁化學(xué)研究所,批號為CK04);甲醇為色譜純,其余試劑均為分析純,水為雙蒸水。
人乳腺癌MCF-7細胞株、人肺腺癌A549細胞株,均由美國菌種保藏中心(ATCC)提供。
采用復(fù)乳-溶劑揮發(fā)法[6]。稱取PLGA約200 mg,溶于5 mL乙酸乙酯-二氯甲烷(3∶2,V/V)的混合溶液中,作為有機相,備用。取鹽酸川芎嗪150 mg,精密稱定,溶于5 mL水中,取0.5 mL作為內(nèi)水相,緩慢加入有機相中,冰浴下超聲(功率250 W,頻率40 Hz,下同)處理形成油包水(W/O)的初乳,緩慢傾入10 mL的1%PVA溶液中,超聲處理10 min形成復(fù)乳(W/O/W),傾入15 mL的1%PVA溶液中,磁力攪拌4 h,使有機溶劑揮發(fā),高速離心,收集固化的微球[7],用水洗滌3遍,冷凍干燥[8],得到鹽酸川芎嗪微球(LTH-MS),分散于適量MES緩沖液(pH 5.0)中,加入35 mg EDC和15 mg NHS活化,將上述殼寡糖溶液加入上述反應(yīng)體系中,室溫下攪拌48 h,離心分離后冷凍干燥,得COS-LTH-MS[5]。初步檢測,該微球表面形態(tài)光滑圓整、尺寸可控;載藥量達19.05%,包封率為68.16%,體外釋放24 h達到平穩(wěn)狀態(tài),累積釋放量78.23%,顯示出一定的緩釋特性。
2.2.1 細胞毒性
采用CCK-8法。取對數(shù)生長期的MCF-7和A549細胞(1×104個),用胰酶消化后進行細胞計數(shù),鋪入96孔板中培養(yǎng)。分為實驗組[0.014,0.028,0.056,0.112,0.224,0.448 mg/mL的COS-LTH-MS(載藥量為20.02%)]、對照組(相應(yīng)質(zhì)量濃度的空白微球)及空白組(培養(yǎng)基),各設(shè)3個平行孔,進行24 h常規(guī)培養(yǎng)[9]。實驗當(dāng)天,換無血清培養(yǎng)液,加1%牛血清蛋白(BSA),各組給予相應(yīng)微球或培養(yǎng)基處理[5]。作用24 h后,每孔加入10 μL的CCK-8溶液,繼續(xù)培養(yǎng)4 h后測定其在450 nm波長處的吸光度(OD)值[5]。細胞生長率=實驗組OD值/空白組OD值×100%。
給藥24 h后,空白微球在給藥濃度范圍內(nèi)對MCF-7和A549細胞基本無毒性。當(dāng)0.056 mg/mL COS-LTH-MS作用24 h后,MCF-7和A549細胞生長率均在95%以上(圖1),表明0.056 mg/mL為COS-LTH-MS的細胞低毒性質(zhì)量濃度。故選擇此質(zhì)量濃度作為后續(xù)試驗的給藥濃度。
圖1 細胞毒性試驗結(jié)果A.Control group B.Test groupFig.1 Results of the cytotoxicity test
2.2.2 細胞內(nèi)LTH質(zhì)量濃度
取對數(shù)生長期的MCF-7和A549細胞(1×106個),分別接種于T75培養(yǎng)瓶中,分為LTH溶液組、LTH-MS組和COS-LTH-MS組,均分別作用1,2,8,12,24 h后,細胞用磷酸鹽緩沖液(PBS)洗3次,用胰酶消化細胞,1 000 r/min離心5 min,棄上清,收集細胞并加甲醇100 μL,-80℃反復(fù)凍融3次,使細胞破碎。高速離心后收集上清液,檢測細胞內(nèi)LTH含量。
采用高效液相色譜(HPLC)法測定LTH含量。色譜條件[10-11]:色譜柱為Sepax GP-C18柱(250 mm×4.6 mm,5 μm),流動相為水-甲醇(52∶48,V/V),流速為1 mL/min,檢測波長為290 mm,柱溫為35℃,進樣量為10 μL。LTH出峰時間約為9 min,峰形良好,陰性對照無干擾;成功建立LTH質(zhì)量濃度線性方程;精密度、穩(wěn)定性、重復(fù)性試驗結(jié)果的RSD均小于2.0%;平均加樣回收率為98.72%,RSD為1.04%(n=9)。
結(jié)果表明,隨給藥時間的延長,A549細胞和MCF-7細胞內(nèi)藥物質(zhì)量濃度逐漸升高,體現(xiàn)出一定的濃度依賴性。修飾后的微球由于PLGA外層包裹殼寡糖,藥物須經(jīng)殼寡糖緩慢降解后釋放,給藥12 h后,細胞內(nèi)藥物質(zhì)量濃度達到飽和。2種細胞內(nèi)LTH質(zhì)量濃度變化情況見表1和表2??梢姡?jīng)殼寡糖修飾后的微球能將LTH更多地靶向腫瘤細胞中,且MCF-7較A549細胞更明顯。
表1 A549細胞內(nèi)川芎嗪質(zhì)量濃度(±s,μg/mL)Tab.1 Mass concentration of ligustrazine in A549 cells(±s,μg/mL)
表1 A549細胞內(nèi)川芎嗪質(zhì)量濃度(±s,μg/mL)Tab.1 Mass concentration of ligustrazine in A549 cells(±s,μg/mL)
注:與LTH溶液組比較,*P<0.05,**P<0.01;與LTH-MS組比較,#P<0.05,##P<0.01。表2同。Note:Compared with those in the LTH solution group,*P<0.05,**P<0.01;Compared with those in the LTH-MS group,#P<0.05,##P<0.01(for Tab.1-2).
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表2 MCF-7細胞內(nèi)鹽酸川芎嗪質(zhì)量濃度(±s,μg/mL)Tab.2 Mass concentration of ligustrazine hydrochloride in MCF-7 cells(±s,μg/mL)
表2 MCF-7細胞內(nèi)鹽酸川芎嗪質(zhì)量濃度(±s,μg/mL)Tab.2 Mass concentration of ligustrazine hydrochloride in MCF-7 cells(±s,μg/mL)
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2.2.3 細胞對微球的攝取
采用激光共聚焦顯微鏡觀察。取對數(shù)生長期的MCF-7及A549細胞(1×104個),分別接種于共聚焦專用培養(yǎng)皿(直徑60 mm),分組同2.2.2項,分別加藥干預(yù)12 h。棄去培養(yǎng)基,PBS洗滌3次。設(shè)置發(fā)射光波長為526 nm,激發(fā)光波長為488 nm,置激光共聚焦顯微鏡下觀察??梢奓TH溶液組自發(fā)綠色熒光,COS-LTH-MS組的熒光強度顯著高于LTH-MS組和LTH組,MCF-7細胞較A549細胞熒光強度更大,詳見圖2。推測可能是經(jīng)修飾的川芎嗪微球與MCF-7細胞特定的配體結(jié)合,進入靶向部位,使MCF-7細胞內(nèi)熒光較明顯。
圖2 激光共聚焦熒光強度圖(×40)A1,B1.LTH solution group A2,B2.LTH-MS group A3,B3.COS-LTH-MS groupA.A549 cells B.MCF-7 cellsFig.2 Fluorescence intensity spectra of laser-scanning confocal microscopy(×40)
新型藥物載體系統(tǒng)多有緩釋性和靶向性的特點,微球也不例外。高分子化合物均有良好的生物相容性和可降解性,PLGA是應(yīng)用和研究較廣泛的載體材料之一[12]。為提高LTH的生物利用度,增強療效,將其制備成PLGA緩釋微球。由于川芎嗪是水溶性藥物,藥物黏附在微球表面,微球在釋放介質(zhì)中溶脹后經(jīng)孔道釋放的速度較快,釋放初期藥物存在突釋,可能導(dǎo)致血藥濃度高于治療濃度[13],迫切需要解決。本研究中是采用EDC和NHS活化,將PLGA的羧基端與殼寡糖的游離氨基共價連接,制得殼寡糖修飾的鹽酸川芎嗪PLGA微球[5]。體外釋藥實驗表明,修飾后的微球由于PLGA外層包裹殼寡糖,藥物須經(jīng)殼寡糖緩慢降解后釋放,突釋效應(yīng)減小,為水溶性中藥緩釋制劑的研究提供了參考[5]。
殼寡糖為帶正電荷的陽離子堿性低聚糖,具有吸收能力強、生物活性高等優(yōu)點,同時具備調(diào)節(jié)免疫、抗腫瘤等生理活性[14-15]。由于其相對分子質(zhì)量小,易進入細胞,負載的藥物可通過受體結(jié)合機制和靜電吸附作用轉(zhuǎn)移到腫瘤細胞中,從而增加細胞內(nèi)藥物濃度,增強抗腫瘤作用。體外細胞試驗也證實,修飾微球的攝入量明顯優(yōu)于未修飾微球,說明殼寡糖修飾微球?qū)δ[瘤細胞具有更強的靶向性。未經(jīng)修飾的微球缺少主動靶向性,在體外細胞試驗中其作用明顯低于鹽酸川芎嗪原料藥,推測可能是因有特定的配體與靶細胞的受體結(jié)合,細胞表面凹陷,形成內(nèi)涵體,內(nèi)涵體在細胞內(nèi)酸化破裂而釋藥,或因細胞攝取機制等原因,改變未經(jīng)修飾的微球在體內(nèi)的自然分布,從而到達特定的靶向部位,亦可將藥物修飾成前體藥物,在藥理學(xué)惰性物質(zhì)的活性部位被激活,特別是靶功能被激活發(fā)揮作用,但明確的機制還有待進一步研究[5],下一步還將進行體內(nèi)實驗,并考察其在體內(nèi)的組織分布等情況。制備鹽酸川芎嗪靶向微球,可提高腫瘤細胞內(nèi)藥物質(zhì)量濃度,減緩釋放速度,增強靶向作用,應(yīng)用于抗腫瘤前景良好。