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        二氫楊梅素對(duì)小鼠的抗疲勞作用及機(jī)制研究△

        2022-10-10 17:32:26尹美玲孫樂滕李利宋顏君許利嘉肖培根
        中國(guó)現(xiàn)代中藥 2022年9期
        關(guān)鍵詞:小鼠實(shí)驗(yàn)

        尹美玲,孫樂,滕李利,宋顏君,許利嘉,肖培根

        中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院 北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院 藥用植物研究所/中草藥物質(zhì)基礎(chǔ)與資源利用教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室

        在快速發(fā)展的社會(huì),疲勞已成為常見的社會(huì)問題,影響人們的工作效率和生活質(zhì)量[1]。疲勞是指身體極其疲憊的狀態(tài),包括精神疲勞和體力疲勞[2]。研究發(fā)現(xiàn)體力疲勞的產(chǎn)生與代謝物積累、能量紊亂、機(jī)體氧化應(yīng)激損傷等相關(guān)[3]。

        近些年研究發(fā)現(xiàn),植物來(lái)源的天然產(chǎn)物,如黃酮類化合物,對(duì)改善疲勞有重要作用[4-5]。二氫楊梅素(dihydromyricetin,DMY)是一種天然黃酮,藥理活性廣泛[6-8]。前期文獻(xiàn)報(bào)道DMY具有緩解疲勞的作用,但具體的機(jī)制還有待深入研究[9-11]。結(jié)合本課題組前期研究基礎(chǔ),本研究采用跑輪實(shí)驗(yàn)和負(fù)重游泳力竭實(shí)驗(yàn)研究DMY 的抗疲勞作用,通過(guò)分析DMY 對(duì)小鼠生化指標(biāo)、能量代謝和氧化應(yīng)激通路相關(guān)基因和蛋白表達(dá)的影響,挖掘其抗疲勞的潛在作用機(jī)制,為后續(xù)深入研究提供參考。

        1 材料

        1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物

        無(wú)特定病原體(SPF)級(jí)ICR 雄性小鼠32 只,4 周齡,體質(zhì)量18~22 g,購(gòu)自斯貝福(北京)生物技術(shù)有限公司,實(shí)驗(yàn)動(dòng)物生產(chǎn)許可證號(hào)為SCXK(京)2019-0010,由中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院藥用植物研究所倫理委員會(huì)審批,審批號(hào)為SLXD-20210115017,飼養(yǎng)于12 h 明暗交替、溫度(22±2)℃、相對(duì)濕度為(55±10)%環(huán)境中,小鼠自由獲取食物和水,用于后續(xù)跑輪實(shí)驗(yàn)。

        SPF 級(jí)ICR 雄性小鼠32 只,體質(zhì)量為18~22 g,購(gòu)于北京維通利華實(shí)驗(yàn)動(dòng)物技術(shù)有限公司,飼養(yǎng)于中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院藥用植物研究所動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心,實(shí)驗(yàn)動(dòng)物生產(chǎn)許可證號(hào)為SCXK(京)2016-0006,由中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院藥用植物研究所倫理委員會(huì)審批,審批號(hào)為SLXD-20201030014,小鼠飼養(yǎng)于12 h明暗交替的動(dòng)物房?jī)?nèi),飼養(yǎng)溫度為(23±2)℃,相對(duì)濕度為45%~65%,允許小鼠自由攝食和飲水,用于后續(xù)負(fù)重游泳力竭實(shí)驗(yàn)。

        1.2 試藥

        DMY(本課題組制備提取,純度為98%);乳酸(LD)測(cè)定試劑盒、乳酸脫氫酶(LDH)測(cè)定試劑盒、尿素氮(BUN)測(cè)定試劑盒、肌酸激酶(CK)測(cè)定試劑盒、谷胱甘肽過(guò)氧化物酶(GSHPx)測(cè)定試劑盒測(cè)定試劑盒(江蘇南京建成生物工程研究所);TranZol Up Plus RNA kit、TransScipt All-in-One First-Strand cDNA Synthesis SuperMix for qPCR(One-Step gDNA Removal)、PerfectStart ?Green qPCR SuperMix(北京全式金生物科技有限公司);放射免疫沉淀分析(RIPA)裂解液、超敏熒光化學(xué)發(fā)光試劑盒(碧云天生物技術(shù)研究所);十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)試劑盒(北京莊盟國(guó)際生物基因科技有限公司);甘油醛-3-磷酸脫氫酶(GAPDH)抗體、辣根過(guò)氧化物酶(HRP)標(biāo)記山羊抗兔抗體、HRP標(biāo)記山羊抗小鼠抗體、蛋白酶抑制劑、磷酸酶抑制劑、BCA 蛋白濃度測(cè)定試劑盒(江蘇康為世紀(jì)生物科技股份有限公司);腺苷酸活化蛋白激酶(AMPK)抗體、磷酸化AMPK(pAMPK)抗體、核轉(zhuǎn)錄因子E2相關(guān)因子2(Nrf2)抗體(美國(guó)CST 公司);過(guò)氧化物酶體增殖物激活受體α(PPARα)抗體(英國(guó)Abacm 公司);羧甲基纖維素鈉(CMC-Na,北京索萊寶生物科技有限公司);肝激酶1(LKB1)、鈣調(diào)蛋白依賴性蛋白激酶激酶2(CaMKK2)、腺苷酸活化蛋白激酶α2(AMPKα2)、組蛋白去乙酰化酶(SIRT1)、過(guò)氧化物酶體增殖物激活受體-γ共激活因子-1α(PGC-1α)、Nrf2、谷胱甘肽過(guò)氧化酶1(GPx-1)、血紅素家氧酶-1(HO-1)、解偶聯(lián)蛋白2(UCP2)、PPARα、GAPDH引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成,序列見表1。

        表1 實(shí)時(shí)熒光定量逆轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(qRT-PCR)引物序列

        1.3 儀器

        YLS-10B 型小鼠轉(zhuǎn)輪式疲勞儀(上海軟隆科技發(fā)展有限公司);游泳水箱(自制);1-14k型高速低溫離心機(jī)(德國(guó)Sigma 公司);Infinite M1000 PRO型多功能酶標(biāo)儀(瑞士Tecan公司);XMTD-8222型智能數(shù)顯控溫儀(上海精宏實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司);AL204 型電子天平[梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司];G560E Vortex-Genie 2 型渦旋振蕩器(美國(guó)Scientific Industries 公司);OSE-MC8 型臺(tái)式離心機(jī)[天根生化科技(北京)有限公司];H2O3-H 型加熱制冷型金屬浴[卡尤迪生物科技(北京)有限公司];SIM-F140 型制冰機(jī)(日本Sanyo 公司);NanoPhotometer 型分光光度計(jì)(美國(guó)Implen 公司);Fastprep-24 ?5G 型快速樣品制備儀(美國(guó)MP Biomedicals 公司);BE-6100 型微孔板迷你離心機(jī)(海門市其林貝爾儀器制造有限公司);Veriti?型96孔熱循環(huán)儀(美國(guó)Thermo Fisher Scientific 公司);CFX96 型實(shí)時(shí)定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR)儀、PowerPac Basic 型電泳儀和ChemiDoc ? Touch Imaging System型蛋白顯影儀(美國(guó)Bio-Rad公司)。

        2 方法

        2.1 跑輪實(shí)驗(yàn)

        2.1.1動(dòng)物分組與給藥 小鼠隨機(jī)分為4 組,分別為對(duì)照組和DMY 低、中、高劑量組,每組8 只。對(duì)照組小鼠每日按體質(zhì)量灌胃給予0.5% CMC-Na(0.01 mL·kg-1);DMY 溶于0.5% CMC-Na 水溶液中制成混懸液,低、中、高劑量組小鼠分別灌胃20、40、80 mg·kg-1。各組小鼠每日上午給藥1 次,連續(xù)給藥7 d,給藥期間可以自由攝水和飲食。實(shí)驗(yàn)結(jié)束后小鼠注射速眠新麻醉,脫頸椎處死。

        2.1.2小鼠跑輪實(shí)驗(yàn) 末次給藥結(jié)束后,將小鼠放進(jìn)帶跑輪系統(tǒng)的機(jī)器中,先以16、20 r·min-1適應(yīng)性訓(xùn)練各15 min,共30 min,再使用24 r·min-1直到小鼠力竭。記錄小鼠在24 r·min-1速度下的跑步力竭距離。

        2.2 負(fù)重游泳力竭實(shí)驗(yàn)

        2.2.1動(dòng)物分組與給藥 小鼠的分組和給藥劑量設(shè)置同2.1.1項(xiàng)下。

        2.2.2小鼠負(fù)重游泳實(shí)驗(yàn) 末次給藥后30 min,在小鼠尾根處系上相當(dāng)于5%體質(zhì)量的鉛絲,依次放入水深約30 cm、水溫為(24±2)℃的游泳箱中游泳。以小鼠頭部沉入水中7 s內(nèi)未浮出水面作為判斷小鼠力竭的標(biāo)準(zhǔn),記錄此時(shí)間為小鼠的游泳力竭時(shí)間。

        2.2.3小鼠血清及組織樣本收集 負(fù)重游泳實(shí)驗(yàn)結(jié)束后,繼續(xù)灌胃給藥2 d,末次給藥后30 min,于2.2.2項(xiàng)下相同游泳裝置中,各組小鼠無(wú)負(fù)重游泳15 min 后注射速眠新麻醉,摘眼球取血,靜置一段時(shí)間,3500 r·min-1離心10 min(離心半徑為0.6 cm),得到血清上清液,轉(zhuǎn)移至-80 ℃冰箱保存。脫頸椎處死小鼠后取得腿部骨骼肌、肝臟組織,用0.9%氯化鈉溶液浸洗掉血漬,濾紙吸干組織表面水分后,將組織包在錫箔紙中迅速置于液氮,隨后轉(zhuǎn)移至-80 ℃冰箱中冷凍保存。

        2.3 血液生化指標(biāo)測(cè)定

        采用LD、LDH、CK、BUN 檢測(cè)試劑盒,按說(shuō)明書要求將血清稀釋成合適質(zhì)量濃度,分別檢測(cè)其中LDH、CK活性及LD、BUN含量。

        2.4 肌肉LD、肝糖原、肝GSH-Px測(cè)定

        稱取適量肌肉和肝臟組織,加入0.9%氯化鈉溶液勻漿,分別采用LD、肌/肝糖原、GSH-Px 檢測(cè)試劑盒檢測(cè)肌肉中LD 和肝臟中糖原的含量,以及肝GSH-Px的活性,具體操作按試劑盒說(shuō)明書進(jìn)行。

        2.5 mRNA表達(dá)量檢測(cè)

        分別稱取小鼠骨骼肌組織和肝臟組織15~25 mg,加入TranZol 裂解液0.8 mL。按TranZol Up Plus RNA kit 試劑盒說(shuō)明提取總RNA。得到的RNA 樣品取少量用于總RNA的純度和濃度檢測(cè)。按TransScipt All-in-One First-Strand cDNA Synthesis SuperMix for qPCR(One-Step gDNA Removal)試劑盒的使用說(shuō)明進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)。按PerfectStart?Green qPCR SuperMix 試劑盒說(shuō)明書進(jìn)行qRT-PCR。以GAPDH為內(nèi)參基因,mRNA相對(duì)表達(dá)量按2-ΔΔCt計(jì)算。

        2.6 相關(guān)蛋白測(cè)定

        稱取適量小鼠骨骼肌和肝臟置于裂解液中,冰上裂解30 min 提取總蛋白,12 000 r·min-14 ℃離心20 min(離心半徑為0.6 cm),得到組織上清液,采用BCA 蛋白定量試劑盒測(cè)定骨骼肌的蛋白質(zhì)量濃度,然后加入1/4體積的loading buffer,95 ℃煮沸蛋白,得到實(shí)驗(yàn)樣品。采用SDS-PAGE 分離樣品,然后將樣品轉(zhuǎn)移到活化的聚偏氟乙烯(PVDF)膜上,5%脫脂奶粉室溫封閉2 h,加一抗4 ℃冰箱過(guò)夜;次日先用TBST 清洗3 次,每次10 min,然后分別加入對(duì)應(yīng)的二抗室溫孵育1 h,再用TBST 洗3 次,每次10 min,隨后用電化學(xué)發(fā)光顯影曝片,并保留相關(guān)條帶,使用Image J 1.4.3 軟件分析計(jì)算各蛋白灰度值。

        2.7 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

        所有實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以(ˉx±s)表示,數(shù)據(jù)符合正態(tài)分布且方差齊時(shí)采用單因素方差分析,兩組之間的差異用獨(dú)立的t檢驗(yàn),P<0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。采用SPSS 23.0 統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,使用GraphPad Prism 6軟件制圖。

        3 結(jié)果

        3.1 DMY對(duì)小鼠體質(zhì)量及跑步力竭距離的影響

        如表2 所示,在實(shí)驗(yàn)開始前和實(shí)驗(yàn)結(jié)束后,對(duì)照組及DMY各給藥組小鼠組間的體質(zhì)量差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。與初始體質(zhì)量比較,實(shí)驗(yàn)結(jié)束時(shí)各組小鼠體質(zhì)量有明顯增長(zhǎng)(P<0.001)。在實(shí)驗(yàn)過(guò)程中,各組小鼠精神狀態(tài)正常、皮毛光滑,沒有打斗痕跡或其他異常狀況。DMY 各劑量對(duì)小鼠的體質(zhì)量及生長(zhǎng)發(fā)育沒有不良影響。與對(duì)照組比較,DMY 各劑量均能顯著延長(zhǎng)小鼠的跑步力竭距離(P<0.001)。

        表2 各組小鼠體質(zhì)量及跑步力竭距離(, n=8)

        表2 各組小鼠體質(zhì)量及跑步力竭距離(, n=8)

        注:與同組初始體質(zhì)量比較,###P<0.001;與對(duì)照組比較,***P<0.001。

        3.2 DMY對(duì)小鼠體質(zhì)量及負(fù)重游泳時(shí)間的影響

        如表3 所示,負(fù)重游泳實(shí)驗(yàn)進(jìn)行過(guò)程中,對(duì)照組及DMY各給藥組小鼠在實(shí)驗(yàn)開始前和實(shí)驗(yàn)結(jié)束后組間的體質(zhì)量差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。與初始體質(zhì)量比較,實(shí)驗(yàn)結(jié)束時(shí)各組小鼠體質(zhì)量明顯增長(zhǎng)(P<0.01,P<0.001)。在實(shí)驗(yàn)過(guò)程中,各組小鼠無(wú)異常狀況發(fā)生。與對(duì)照組比較,DMY 各劑量均能不同程度地延長(zhǎng)小鼠的負(fù)重游泳力竭時(shí)間(P<0.05,P<0.001)。

        表3 各組小鼠體質(zhì)量及負(fù)重游泳時(shí)間(, n=8)

        表3 各組小鼠體質(zhì)量及負(fù)重游泳時(shí)間(, n=8)

        注:與同組初始體質(zhì)量比較,##P<0.01,###P<0.001;與對(duì)照組比較,*P<0.05,***P<0.001。

        3.3 DMY 對(duì)小鼠血清LD、LDH、SUN 和CK 水平的影響

        結(jié)果如表4 所示,運(yùn)動(dòng)后,與對(duì)照組比較,DMY 各劑量可以顯著降低小鼠血清中LD 水平和LDH 活性(P<0.05)。DMY 中、高劑量組小鼠的SUN水平顯著低于對(duì)照組(P<0.05,P<0.01)。DMY中劑量組小鼠血清中CK活性顯著低于對(duì)照組小鼠(P<0.05)。

        表4 各組小鼠血清LD、SUN水平和LDH、CK活性(, n=8)

        表4 各組小鼠血清LD、SUN水平和LDH、CK活性(, n=8)

        注:與對(duì)照組比較,*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001;表5~8同。

        3.4 DMY對(duì)小鼠肌肉LD、肝糖原和肝GSH-Px水平的影響

        結(jié)果表明,與對(duì)照組比較,DMY 各劑量組小鼠肌肉中LD 水平均降低,其中DMY 低、高劑量組差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);肝糖原水平升高,其中DMY 中劑量組差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);DMY 高劑量組小鼠肝GSH-Px 活性顯著升高(P<0.05),見表5。

        表5 各組小鼠肌肉LD、肝糖原、肝GSH-Px水平(, n=8)

        表5 各組小鼠肌肉LD、肝糖原、肝GSH-Px水平(, n=8)

        3.5 DMY 對(duì)小鼠骨骼肌AMPK 信號(hào)通路基因表達(dá)的影響

        如表6 所示,與對(duì)照組比較,DMY 各劑量組小鼠骨骼肌中AMPK通路LKB1、CaMKK2、AMPKα2、SIRT1、PGC-1αmRNA表達(dá)水平升高(P<0.05,P<0.01,P<0.001)。

        表6 各組小鼠骨骼肌AMPK通路蛋白mRNA相對(duì)表達(dá)量(, n=5)

        表6 各組小鼠骨骼肌AMPK通路蛋白mRNA相對(duì)表達(dá)量(, n=5)

        3.6 DMY 對(duì)小鼠肝臟Nrf2 通路、PPARα 通路相關(guān)基因表達(dá)的影響

        如表7 所示,與對(duì)照組比較,DMY 各劑量組小鼠肝臟中Nrf2、HO-1、GPx-1、PPARα、UCP2 mRNA表達(dá)水平顯著升高(P<0.05,P<0.01,P<0.001)。

        表7 各組小鼠肝臟氧化應(yīng)激相關(guān)蛋白mRNA相對(duì)表達(dá)量(, n=5)

        表7 各組小鼠肝臟氧化應(yīng)激相關(guān)蛋白mRNA相對(duì)表達(dá)量(, n=5)

        3.7 DMY 對(duì)小鼠肌肉AMPK 及肝臟Nrf2、PPARα蛋白的影響

        Western blot結(jié)果顯示(表8和圖1),DMY 可以顯著增加小鼠肌肉中pAMPK/AMPK的比值,激活了AMPK信號(hào)通路(P<0.01)。此外,DMY也可以顯著增加小鼠肝臟Nrf2、PPARα蛋白的表達(dá)(P<0.05)。

        圖1 各組小鼠肌肉AMPK和肝臟Nrf2、PPARα蛋白表達(dá)

        表8 各組小鼠肌肉pAMPK/AMPK和肝臟Nrf2、PPARα蛋白相對(duì)表達(dá)量(, n=3)

        表8 各組小鼠肌肉pAMPK/AMPK和肝臟Nrf2、PPARα蛋白相對(duì)表達(dá)量(, n=3)

        4 討論

        DMY 是一種黃酮類化合物,前期文獻(xiàn)報(bào)道其具有緩解疲勞的作用,但具體的機(jī)制還有待深入研究[9-11]。運(yùn)動(dòng)時(shí)機(jī)體會(huì)產(chǎn)生疲勞,近年來(lái)研究發(fā)現(xiàn)疲勞的產(chǎn)生與體內(nèi)代謝物堆積、能量損耗、氧化應(yīng)激等因素有關(guān)[12-13]。疲勞最直接的體現(xiàn)就是運(yùn)動(dòng)耐力的下降[14],跑輪實(shí)驗(yàn)、負(fù)重游泳實(shí)驗(yàn)等常作為小鼠耐力和疲勞狀態(tài)等指標(biāo)的評(píng)價(jià)方法[15]。因此,本實(shí)驗(yàn)采用跑輪實(shí)驗(yàn)?zāi)P秃拓?fù)重力竭游泳模型驗(yàn)證DMY的抗疲勞作用,并對(duì)其緩解疲勞的機(jī)制深入研究。研究結(jié)果表明,DMY 顯著延長(zhǎng)了小鼠跑步力竭距離和負(fù)重游泳力竭時(shí)間,對(duì)提高小鼠運(yùn)動(dòng)耐力及緩解體力疲勞有顯著作用。

        葡萄糖是肌肉活動(dòng)時(shí)能量的主要來(lái)源,主要以糖原的形式儲(chǔ)存在肝臟和肌肉中[16]。糖原的含量與機(jī)體的運(yùn)動(dòng)耐力有密切關(guān)系。機(jī)體運(yùn)動(dòng)時(shí),肌糖原直接消耗提供能量,隨著肌糖原逐漸減少,為了維持血糖穩(wěn)定,肝糖原會(huì)分解成葡萄糖,如果肝糖原耗竭,血糖明顯下降,運(yùn)動(dòng)不能繼續(xù),因此肝糖原的儲(chǔ)量直接反映機(jī)體運(yùn)動(dòng)耐力的水平。肝糖原儲(chǔ)備越多,運(yùn)動(dòng)持續(xù)時(shí)間越長(zhǎng),運(yùn)動(dòng)耐力越強(qiáng),抗疲勞作用越強(qiáng)[17]。運(yùn)動(dòng)后,DMY 各組小鼠的肝糖原水平顯著高于對(duì)照組,證明了DMY緩解疲勞的有效性。

        當(dāng)劇烈運(yùn)動(dòng)時(shí),機(jī)體呈現(xiàn)相對(duì)無(wú)氧狀態(tài),肌肉糖酵解供能占主導(dǎo),肌肉和血液中積累大量LD,同時(shí)LDH 控制著肌肉LD 的代謝反應(yīng),LD 增多,H+濃度增加,引起機(jī)體神經(jīng)傳導(dǎo)、糖酵解及肌肉收縮等功能障礙,影響能量的產(chǎn)生、釋放和儲(chǔ)存,進(jìn)一步導(dǎo)致疲勞發(fā)生[18-19]。當(dāng)運(yùn)動(dòng)時(shí)間延長(zhǎng),糖和脂肪酸的氧化無(wú)法滿足能量供應(yīng)時(shí),蛋白質(zhì)和氨基酸代謝增加維持能量供應(yīng),導(dǎo)致血清BUN 含量增加,反映機(jī)體對(duì)負(fù)荷的適應(yīng)能力較差。此外,血清BUN 的含量越少,也說(shuō)明機(jī)體內(nèi)蛋白質(zhì)代謝參與供能較少,糖和脂肪類能源物質(zhì)供應(yīng)充足,這可以與肝糖原的實(shí)驗(yàn)結(jié)果相印證。另外,血清中CK 的含量是反映機(jī)體過(guò)度勞累及間接反映肌肉損傷的重要指標(biāo)。CK的活性升高,提示肌肉受損及機(jī)體疲勞[20-21]。與文獻(xiàn)報(bào)道的結(jié)果相似,本研究結(jié)果證明,DMY 可以顯著降低疲勞小鼠肌肉LD,血清LD、SUN 的含量,降低血清LDH 和CK 的活性,具有緩解疲勞的作用,改善了疲勞小鼠的能量代謝水平。

        AMPK 途徑在機(jī)體的能量合成和代謝中有重要作用。在運(yùn)動(dòng)過(guò)程中,肌肉中的AMPK 受上游AMPK 激酶,包括肝激酶1(LKB1)和鈣調(diào)蛋白依賴性蛋白激酶激酶1(CaMKK1)和CaMKK2 的調(diào)節(jié)[22]。AMPK 下游的SIRT1 是一種煙堿腺嘌呤二核苷酸(NAD+)依賴性的蛋白去乙?;福瑓⑴c調(diào)節(jié)生物代謝過(guò)程,可以激活PGC-1α基因表達(dá)[20],從而調(diào)節(jié)葡萄糖代謝、葡萄糖攝取及線粒體的生物合成[23]。本研究結(jié)果表明,DMY 顯著增加LBK1、CaMKK2 mRNA 表達(dá),激活A(yù)MPKα2 及下游SIRT1和PGC-1αmRNA 的表達(dá),并且顯著增加了AMPK磷酸化水平,表明DMY 可能激活了AMPK 能量代謝途徑,為肌肉運(yùn)動(dòng)提供更多能量。

        當(dāng)劇烈運(yùn)動(dòng)時(shí),機(jī)體進(jìn)入氧化應(yīng)激狀態(tài),產(chǎn)生大量活性氧(ROS)自由基,影響機(jī)體生物大分子的氧化,從而加速疲勞的產(chǎn)生[24]。此時(shí),機(jī)體的抗氧化能力對(duì)于緩解機(jī)體疲勞有重要作用。肝臟是體內(nèi)代謝的重要器官,在運(yùn)動(dòng)過(guò)程中,除儲(chǔ)存糖原外,也參與調(diào)節(jié)GSH-Px 等抗氧化酶的分泌。GSH-Px 是一種機(jī)體廣泛存在的過(guò)氧化物分解酶,可以清除ROS 等代謝產(chǎn)物,調(diào)節(jié)機(jī)體的氧化平衡,保護(hù)細(xì)胞正常功能[25-26]。本研究表明,DMY 高劑量可以增加抗氧化酶GSH-Px 活性,提示DMY 抗氧化的作用機(jī)制可能與GSH-Px 的促分泌有關(guān)。進(jìn)一步探討DMY抗氧化的可能作用機(jī)制,Nrf2 是細(xì)胞抗氧化的重要因子,其活化后進(jìn)入細(xì)胞核,與抗氧化反應(yīng)元件結(jié)合,激活下游HO-1、GPx-1等抗氧化基因表達(dá)及抗氧化酶GSH-Px 的分泌[3]。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,DMY 可以顯著上調(diào)肝臟Nrf2、HO-1和GPx-1基因的表達(dá)及顯著增加肝Nrf2 蛋白的表達(dá),提示DMY 可能作用Nrf2相關(guān)通路發(fā)揮抗氧化作用。

        此外,PPAR 是一類激素受體,其中PPARα的表達(dá)可以增強(qiáng)機(jī)體的氧化能力,改善脂質(zhì)代謝[27],并且PPARα可以調(diào)控下游UCP2 的分泌,在線粒體的氧化應(yīng)激中發(fā)揮重要作用[28]。已有文獻(xiàn)報(bào)道DMY可以上調(diào)疲勞小鼠肌肉中PGC-1α和PPARα基因表達(dá)[10]。在本研究中,實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,DMY 可以顯著上調(diào)肝臟PPARα和UCP2基因表達(dá),并且其顯著上調(diào)了肝PPARα蛋白表達(dá),提示DMY 可能作用PPARα相關(guān)通路提高疲勞小鼠抗氧化的能力。

        綜上所述,DMY 可能通過(guò)激活肌肉AMPK 通路及肝Nrf2 和PPARα相關(guān)通路改善小鼠疲勞。本研究報(bào)道了DMY 對(duì)上調(diào)Nrf2 和PPARα蛋白表達(dá)的顯著作用,為DMY 抗疲勞的機(jī)制探索提供了參考,相關(guān)的機(jī)制研究仍需深入,以助力DMY 的深度開發(fā)。

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