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        布魯氏菌分泌蛋白BspA 和BspB 真核表達載體的構(gòu)建及在胚胎滋養(yǎng)層細胞中的表達

        2022-09-30 13:44:04王書利魏淑娟李夢含司麗芳李志強
        河南農(nóng)業(yè)科學 2022年8期
        關鍵詞:脫氫酶布魯氏菌乳酸

        王書利,魏淑娟,李夢含,鄭 好,司麗芳,李志強

        (1. 河南科技大學 動物科技學院,河南 洛陽 471003;2. 商丘師范學院 生物與食品學院,河南 商丘 476000;3. 河南師范大學 生命科學學院,河南 新鄉(xiāng) 453007)

        布魯氏菌?。˙rucellosis)是由布魯氏菌(Brucella)引起的一類人畜共患傳染病,給許多國家?guī)砭薮蟮慕?jīng)濟損失[1]。該病可導致雌性動物出現(xiàn)流產(chǎn)、死胎,雄性動物表現(xiàn)為睪丸炎和附睪炎,從而影響受感染動物的繁殖性能[2]。人感染布魯氏菌后,可引起波浪熱、感染性心內(nèi)膜炎、脾膿腫、子宮內(nèi)膜炎、結(jié)節(jié)性紅斑和敗血癥等[3]。吸入細菌氣溶膠、攝入受污染的食品或接觸傷口、黏膜是人感染的主要途徑[4]。據(jù)估計,每年約新增50 萬人類感染病例[5]。

        布魯氏菌Ⅳ型分泌系統(tǒng)(Type Ⅳsecretion system,T4SS)是由12 種蛋白質(zhì)(VirB1—VirB12)組成的大分子復合物,是布魯氏菌的重要毒力因子,由virB操縱子編碼,在調(diào)節(jié)胞內(nèi)存活和操縱宿主對細菌感染的免疫反應中發(fā)揮重要作用[6]。布魯氏菌可通過T4SS分泌的效應蛋白進入宿主細胞,效應蛋白可改變病原菌的胞內(nèi)運輸,逃避感染細胞的免疫監(jiān)視,維持布魯氏菌在細胞的持續(xù)性感染[7]。MYENI 等[8]通過生物信息學和TEM-1 融合蛋白方法鑒定發(fā)現(xiàn),BspA 和BspB 蛋白為T4SS 的分泌蛋白。BspA 和BspB 蛋白分別由191 個和187 個氨基酸組成,包含DUF2062 結(jié)構(gòu)域(功能未知的結(jié)構(gòu)域2062,Pfam 數(shù)據(jù)庫)和蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)分類(SCOP)結(jié)構(gòu)域(兩側(cè)有2個跨膜結(jié)構(gòu)域)[8]。異位表達的BspA 和BspB 蛋白定位于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)內(nèi)[8],其在胞內(nèi)與哪些宿主分子相互作用還未見報道。鑒于此,以布魯氏菌T4SS 效應蛋白BspA 和BspB 為研究對象,利用分子克隆技術構(gòu)建真核表達載體,以獲得具有活性的BspA 和BspB 效應蛋白,為進一步研究布魯氏菌分泌蛋白BspA和BspB的功能提供參考。

        1 材料和方法

        1.1 菌株、載體和細胞

        布魯氏菌S2308 基因組和pEGFP-N1 載體由石河子大學張輝教授饋贈;T-Vector pMDTM19(Simple)購自Takara 公司;胚胎滋養(yǎng)層細胞(HPT-8)由石河子大學張輝教授饋贈。

        1.2 主要試劑和儀器

        普通瓊脂糖凝膠DNA 回收試劑盒、高純度質(zhì)粒小提試劑盒、無內(nèi)毒素質(zhì)粒大提試劑盒均購自天根生化科技(北京)有限公司;QuickCutTMEcoRⅠ和XbaⅠ限制酶購自Takara 公司;LipofectamineTM2000脂質(zhì)體購自美國Invitrogen 公司;鼠抗BspA 和鼠抗BspB單克隆抗體購自英國Abcam 公司;辣根過氧化物酶(HRP)標記的山羊抗鼠IgG(H+L)購自美國Bioworld 公司;乳酸脫氫酶(LDH)細胞毒性檢測試劑盒購自碧云天生物技術有限公司;人IFN-γ、IL-2、IL-4 和IL-5 細胞因子ELISA 檢測試劑盒均購自美國R&D Systems公司。

        PCR 儀(nexus GSX1)購自德國Eppendorf 公司,凝膠成像系統(tǒng)(Gel Doc XR+)購自美國BIO-RAD 公司,分子雜交箱(Big SHOT Ⅲ)購自美國Boekel Scientific 公司,生物安全柜(BIO ⅡA)購自西班牙Telstar 公司,半干式轉(zhuǎn)膜系統(tǒng)購自北京六一生物科技有限公司。

        1.3 引物設計與PCR擴增

        根據(jù)布魯氏菌S2308 的BspA(BAB1_0678)和BspB(BAB1_0712)基因序列,利用Primer Premier 5.0 軟件設計引物(表1),并由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。

        表1 布魯氏菌BspA和BspB基因的引物序列Tab.1 Primer sequences of BspA and BspB genes of Brucella

        以布魯氏菌S2308 基因組或ddH2O(陰性對照)為模板,利用表1 中的引物,分別對BspA和BspB基因進行PCR 擴增。對PCR 產(chǎn)物進行1.5%瓊脂糖凝膠電泳檢測,將目的片段切膠回收純化。

        1.4 重組質(zhì)粒pMD-BspA和pMD-BspB的構(gòu)建和鑒定

        將回收后的BspA和BspB目的片段分別與TVector pMDTM19(Simple)連接,連接后的產(chǎn)物轉(zhuǎn)化感受態(tài)細胞DH5α 中,涂布含Amp(100 mg/L)的LB平板,篩選陽性菌,提取質(zhì)粒,利用EcoRⅠ和XbaⅠ進行雙酶切鑒定。將鑒定正確的質(zhì)粒分別命名為pMD-BspA和pMD-BspB,并送生工生物工程(上海)股份有限公司測序。

        1.5 真核表達載體pEGFP-BspA和pEGFP-BspA的構(gòu)建和鑒定

        將重組質(zhì)粒pMD-BspA、pMD-BspB和pEGFPN1 載體利用EcoRⅠ和XbaⅠ進行雙酶切,經(jīng)1.0%瓊脂糖凝膠電泳后,回收酶切產(chǎn)物,連接pEGFP-N1載體,轉(zhuǎn)化DH5α感受態(tài)細胞,涂布含Amp(100 mg/L)的LB 平板,篩選陽性菌,提取質(zhì)粒,利用EcoRⅠ和XbaⅠ進行雙酶切鑒定。將鑒定正確的質(zhì)粒分別命名為pEGFP-BspA和pEGFP-BspB,并送生工生物工程(上海)股份有限公司測序。

        1.6 細胞轉(zhuǎn)染

        利用LipofectamineTM2000 進行細胞轉(zhuǎn)染[9]。將HPT-8細胞傳代于6孔板中,待細胞密度達到70%~80%時,分別取5 μg pEGFP-BspA、pEGFP-BspB或pEGFP-N1(陰性對照),加至1 mL 不完全DMEM 培養(yǎng)基中,再加入10 μL LipofectamineTM2000,混勻后室溫靜置20 min。將該混合液加至細胞培養(yǎng)孔進行轉(zhuǎn)染,轉(zhuǎn)染后的細胞置于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中,6 h 后棄去培養(yǎng)液,用PBS 液漂洗2 次,更換新鮮的完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)。24 h 后棄掉培養(yǎng)液,使用RAPA 裂解液裂解細胞,獲得總蛋白質(zhì)樣品,對蛋白質(zhì)濃度進行測定后,置于-20 ℃保存。

        1.7 Western blot檢測BspA和BspB的表達

        將蛋白質(zhì)樣品加熱變性后,進行SDS-PAGE 電泳。電泳結(jié)束后,將目的凝膠切下,利用半干式電轉(zhuǎn)法,以200 mA電流轉(zhuǎn)膜1 h,將目的蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)印至硝酸纖維素膜(NC膜)上;用5 mL含5%脫脂奶粉的封閉液37 ℃封閉1 h;用TBST 洗膜3 次,加入5 mL一抗(鼠抗BspA 和BspB 單克隆抗體,稀釋比例為1∶5 000),37 ℃孵育1 h;用TBST 洗膜3 次,加入5 mL 二抗(HRP 標記的山羊抗鼠IgG,稀釋比例為1∶2 000),37 ℃孵育1 h;用TBST 洗膜3 次后,進行ECL化學發(fā)光檢測[10]。

        1.8 細胞因子檢測

        按1.6 中的方法轉(zhuǎn)染HPT-8 細胞,分別在轉(zhuǎn)染后12、24、48 h 收集細胞培養(yǎng)液,培養(yǎng)液經(jīng)0.22 μm的濾膜過濾后,利用人IFN-γ、IL-2、IL-4 和IL-5 細胞因子ELISA 檢測試劑盒檢測細胞因子水平[11]。試驗設3個重復。

        1.9 細胞毒性檢測

        按1.6 中的方法轉(zhuǎn)染HPT-8 細胞,分別在轉(zhuǎn)染后12、24、48 h 利用乳酸脫氫酶細胞毒性檢測試劑盒,測定細胞毒性[12]。乳酸脫氫酶釋放量的計算方法:LDH=(處理樣品吸光度-樣品對照孔吸光度)/(細胞最大酶活性的吸光度-樣品對照孔吸光度)×100%。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 BspA和BspB基因的PCR擴增結(jié)果

        BspA基因片段的大小為576 bp,BspB基因片段的大小為564 bp(圖1)。

        圖1 布魯氏菌BspA和BspB基因的PCR擴增結(jié)果Fig.1 PCR amplification products of the BspA and BspB genes of Brucella

        2.2 重組質(zhì)粒pMD-BspA和pMD-BspB的酶切鑒定結(jié)果

        由圖2 可知,重組質(zhì)粒pMD-BspA和pMD-BspB經(jīng)EcoRⅠ和XbaⅠ雙酶切后,獲得的條帶大小分別為576 bp 和564 bp。測序結(jié)果表明,成功構(gòu)建pMD-BspA和pMD-BspB載體。

        圖2 重組質(zhì)粒pMD-BspA和pMD-BspB的酶切鑒定結(jié)果Fig.2 Identification of recombinant plasmids pMD-BspA and pMD-BspB by enzyme digestion

        2.3 重組質(zhì)粒pEGFP-BspA和pEGFP-BspB的酶切鑒定結(jié)果

        重組質(zhì)粒pEGFP-BspA和pEGFP-BspB經(jīng)EcoRⅠ和XbaⅠ雙酶切鑒定,瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果顯示,出現(xiàn)2 條目的條帶,一條為pEGFP-N1 載體片段,另一條為目的基因條帶(圖3),且測序結(jié)果與GenBank登錄的序列同源性為100%,表明重組質(zhì)粒pEGFPBspA和pEGFP-BspB構(gòu)建正確。

        圖3 重組質(zhì)粒pEGFP-BspA和pEGFP-BspB的酶切鑒定結(jié)果Fig.3 Identification of recombinant plasmids pEGFPBspA and pEGFP-BspB by enzyme digestion

        2.4 BspA和BspB蛋白的表達結(jié)果

        Western blot 分析結(jié)果顯示,轉(zhuǎn)染空載體的對照組未出現(xiàn)條帶,而轉(zhuǎn)染pEGFP-BspA和pEGFP-BspB組分別在70 ku和68 ku處出現(xiàn)目的條帶(圖4)。結(jié)果表明,BspA和BspB蛋白在HPT-8細胞中成功表達。

        圖4 Western blot檢測BspA和BspB蛋白的表達結(jié)果Fig.4 Expression of BspA and BspB proteins detected by Western blot

        2.5 BspA和BspB蛋白對細胞因子分泌的影響

        細胞因子檢測結(jié)果顯示,與對照組(pEGFP-N1空質(zhì)粒轉(zhuǎn)染組)相比,pEGFP-BspA和pEGFP-BspB重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)染的細胞中有較高水平的細胞因子產(chǎn)生(P<0.01)(圖5)。此外,BspA 和BspB 蛋白誘導HTP-8 細胞產(chǎn)生Th1 型細胞因子IFN-γ 和IL-2 的水平略微高于Th2型細胞因子IL-4和IL-5的水平。以上結(jié)果表明,pEGFP-BspA和pEGFP-BspB轉(zhuǎn)染HPT-8 細胞后,可誘導Th1 和Th2 型細胞因子的產(chǎn)生,且BspA 和BspB 蛋白誘導HTP-8 細胞產(chǎn)生細胞因子不存在偏好性。

        圖5 pEGFP-BspA和pEGFP-BspB轉(zhuǎn)染HPT-8細胞后IFN-γ(A)、IL-2(B)、IL-4(C)和IL-5(D)的水平檢測結(jié)果Fig.5 Productions of IFN-γ(A),IL-2(B),IL-4(C)and IL-5(D)in HPT-8 cells transfected with pEGFP-BspA and pEGFP-BspB

        2.6 BspA和BspB蛋白對細胞毒性的影響

        細胞毒性檢測結(jié)果(圖6)顯示,pEGFP-BspA和pEGFP-BspB重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)染細胞12 h 后,細胞乳酸脫氫酶的釋放量分別為5.88%和5.72%,pEGFP-N1轉(zhuǎn)染細胞的乳酸脫氫酶釋放量為3.52%;轉(zhuǎn)染細胞24 h 后,細胞乳酸脫氫酶的釋放量分別為6.17%和6.08%,pEGFP-N1轉(zhuǎn)染細胞的乳酸脫氫酶釋放量為4.63%;轉(zhuǎn)染細胞48 h 后,細胞乳酸脫氫酶的釋放量分別為6.58%和6.43%,pEGFP-N1轉(zhuǎn)染細胞的乳酸脫氫酶釋放量為5.05%。隨著轉(zhuǎn)染時間的延長,細胞乳酸脫氫酶的釋放水平逐漸增加,但各組差異均不 顯 著(P>0.05)。結(jié) 果 表 明,pEGFP-BspA和pEGFP-BspB重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)染細胞后,對細胞無毒性反應。

        圖6 BspA和BspB蛋白對HPT-8細胞的毒性Fig.6 The cytotoxicity of BspA and BspB proteins on HPT-8 cells

        3 結(jié)論與討論

        布魯氏菌為胞內(nèi)寄生菌,T4SS是其關鍵的毒力因子,在感染期間抑制宿主免疫應答和調(diào)控胞內(nèi)生存中發(fā)揮重要作用[13]。已有研究證明,在受感染的人宮頸癌細胞(HeLa)中,BspA 和BspB 蛋白可抑制宿主蛋白的分泌[8]。此外,BspA 和BspB 蛋白在轉(zhuǎn)染細胞中過表達時可抑制宿主細胞的蛋白質(zhì)分泌途徑[8]。雖然BspA和BspB缺失后,影響布魯氏菌在巨噬細胞內(nèi)的繁殖能力,以及在感染小鼠肝臟中的生存能力[8],但僅在感染后期發(fā)揮作用,并且BspA 蛋白與BspB 蛋白具有互補功能。本研究成功構(gòu)建了真核表達載體pEGFP-BspA和pEGFP-BspB,轉(zhuǎn)染HPT-8細胞后,經(jīng)Western blot檢測,分別于70 ku和68 ku 處出現(xiàn)了目的條帶,表明HPT-8 細胞表達的BspA 和BspB 蛋白具有良好的反應原性,為下一步篩選宿主互作蛋白提供了材料。

        本研究選取的pEGFP-N1載體具有高效穩(wěn)定表達目的蛋白的作用,該載體含有多克隆位點,可融合表達多種外源基因,并能保持外源蛋白的生物學活性,廣泛應用于基因的表達檢測[14-15]。張沾等[16]構(gòu)建了T4SS 效應蛋白VceC 的真核表達載體pEGFPVceC,轉(zhuǎn)染HPT-8 細胞后,促進細胞釋放一氧化氮(NO)和增加乳酸脫氫酶活力。李躍峰等[17-18]利用pEGFP-N1載體構(gòu)建了結(jié)核桿菌CFP10基因的重組真核表達載體pEGFP-N1-CFP10,轉(zhuǎn)染人腎上皮細胞(293T)后,對細胞有促凋亡的作用。王慧勤等[19]研發(fā)了基于結(jié)核桿菌ESAT6基因的DNA 疫苗,免疫小鼠后可誘導機體產(chǎn)生有效的細胞免疫應答。此外,結(jié)核分支桿菌分泌蛋白Rv2031c 和Rv2626c 的融合表達重組載體pEGFP-N1-Rv2031c和pEGFPN1-Rv2626c轉(zhuǎn)染293T 細胞后24、48 h 時促進了細胞凋亡[20]。除了293T 細胞外,HPT-8 細胞也被廣泛用于表達研究外源基因,驗證所構(gòu)建的載體是否有效表達[21],且該細胞為布魯氏菌的靶細胞[22-23]。本研究利用構(gòu)建的重組質(zhì)粒pEGFP-BspA和pEGFPBspB轉(zhuǎn)染HPT-8 細胞,經(jīng)Western blot 證實BspA 和BspB 蛋白獲得表達,為篩選BspA 和BspB 在宿主細胞中的互作蛋白,研究效應蛋白BspA 和BspB 對宿主細胞正常代謝、凋亡等生理功能的影響及作用機制奠定了基礎。

        以產(chǎn)生IFN-γ 和IL-2 為特征的Th1 型免疫應答與布魯氏菌的保護性免疫有關[24]。IFN-γ 可刺激Th1分化,從而誘導活化漿細胞產(chǎn)生抗體[25]。IFN-γ在感染早期根除胞內(nèi)病原菌方面發(fā)揮重要作用[26]。IL-2 與布魯氏菌的保護性免疫有關。IFN-γ 和IL-2是布魯氏菌誘導Th1型免疫中的關鍵細胞因子[27]。IL-4 是一種重要的抗炎因子,參與對抗細胞外病原體,屬于Th2 型細胞因子[28]。IL-5 由Th2 型細胞產(chǎn)生,是一種主要參與特應性疾病發(fā)病機制的細胞因子[29]。IL-4 和IL-5 的功能相互補充,促進Th2 細胞介導的過敏反應[30]。本研究發(fā)現(xiàn),BspA 和BspB 蛋白可誘導產(chǎn)生較高水平的IFN-γ、IL-2、IL-4 和IL-5,表明BspA 和BspB 蛋白可誘導Th1 和Th2 型混合免疫反應。

        BspA和BspB基因大小分別為576 bp 和564 bp。重組質(zhì)粒pEGFP-BspA和pEGFP-BspB轉(zhuǎn)染HPT-8細胞后,經(jīng)Western blot 檢測顯示,分別在70 ku 和68 ku 處出現(xiàn)目的條帶,表明真核表達載體能在HPT-8 細胞中表達。此外,BspA 和BspB 蛋白均可誘導細胞分泌Th1 型細胞因子(IFN-γ 和IL-2)和Th2型細胞因子(IL-4和IL-5),且不存在偏好性,對HPT-8 細胞無毒性。本研究為篩選分泌蛋白BspA和BspB在宿主細胞的互作蛋白,從宿主互作分子角度闡述布魯氏菌逃避免疫的機制奠定了基礎。

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