劉艷, 鮑紅帥, 尚紅燕, 王國寧, 張艷, 王省芬, 馬峙英, 吳金華
(河北農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)學(xué)院, 華北作物改良與調(diào)控國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室, 河北省作物種質(zhì)資源重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室, 河北保定 071000)
棉花枯萎病是土傳性的維管束病害, 能夠在棉花的整個生育期為害。病輕時葉片褪綠變黃, 病重時葉片干枯、脫落, 植株死亡[1-2]。1891年在美國阿拉巴馬州發(fā)現(xiàn)了棉花枯萎病[3], 20世紀(jì)70年代該病已經(jīng)發(fā)展為棉花的主要病害[4], 嚴(yán)重影響著棉花的生產(chǎn)與發(fā)展。
枯萎病由尖孢鐮刀菌(Fusariumoxysporum f.sp.Vasinfectum)引起[5]。病原菌從根部侵入后在棉花植株的表皮細(xì)胞間生長;當(dāng)菌絲體進(jìn)入木質(zhì)部導(dǎo)管后大量繁殖, 在導(dǎo)管中縱向或橫向生長刺激鄰近的薄壁細(xì)胞產(chǎn)生膠狀物質(zhì)等阻塞導(dǎo)管;導(dǎo)管中的菌絲體可以通過紋孔侵入到維管束組織影響水分和養(yǎng)分的運(yùn)輸, 從而導(dǎo)致植株萎蔫死亡[6]。棉花枯萎病病原菌抗逆性強(qiáng)、致病性變異較大, 并可以通過多種途徑傳播, 所以很難防治[7]。
枯萎病菌的種類、培養(yǎng)溫度和時間及不同的營養(yǎng)成分等對其生長影響很大。劉冬梅[8]研究發(fā)現(xiàn), 菌株的最適生長溫度為28℃, 最適生長pH為7~12。曹君等[9]研究發(fā)現(xiàn), 以蔗糖作為碳源, 尖孢鐮刀菌分生孢子產(chǎn)孢量最大。高婧等[10]研究結(jié)果顯示, 向日葵中分離的輪枝鐮刀菌生長的速度最快、產(chǎn)孢量最多, 磚紅鐮刀菌的生長速度最慢。李云卿等[11]研究發(fā)現(xiàn), 主要成分為雞糞沼液的新壯態(tài)生長促進(jìn)液對病原菌菌絲的生長、分生孢子的萌發(fā)以及產(chǎn)孢量有明顯的抑制作用。
有關(guān)棉花枯萎病菌培養(yǎng)及其營養(yǎng)生理方面迄今鮮有報道, 其他植物枯萎病菌培養(yǎng)的研究主要集中于碳、氮含量培養(yǎng)基的研究上。本研究通過對棉花枯萎病菌培養(yǎng)條件的探索, 以期篩選出致病力強(qiáng)的枯萎病菌并明確其適宜的培養(yǎng)條件, 為棉花枯萎病抗性鑒定及枯萎病抗病育種奠定基礎(chǔ)。
試驗(yàn)所用菌種均為枯萎病菌7號生理小種, 包括實(shí)驗(yàn)室保存的來源于河北曲周、河北雞澤、河北保定和新疆烏魯木齊(分別命名為QF、JF、BF、WF), 以及中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護(hù)研究所簡桂良研究員提供的枯萎病菌(PF);感病品種冀棉11由河北農(nóng)業(yè)大學(xué)棉花遺傳育種團(tuán)隊(duì)提供。
1.2.1 不同枯萎病菌菌系產(chǎn)孢數(shù)及致病力鑒定不同來源的枯萎病原菌培養(yǎng)在PDA培養(yǎng)基上[12], 直至菌絲長滿平皿, 將病原菌接種至液體土豆培養(yǎng)基中, 在恒溫培養(yǎng)箱中振蕩培養(yǎng)(25℃、170 r·min-1), 于2、3、4和5 d分別統(tǒng)計其產(chǎn)孢量并觀察孢子形態(tài)。
產(chǎn)孢量統(tǒng)計及形態(tài)觀察:取潔凈的25格×16格的血球計數(shù)板, 在超凈工作臺中用移液槍吸取少許菌液滴入血球計數(shù)板的計數(shù)區(qū), 蓋上蓋玻片靜置片刻, 將血球計數(shù)板放置于顯微鏡下(OLYMPUS-BX51)觀察孢子形態(tài), 數(shù)5個方格中的孢子數(shù)量, 統(tǒng)計總體產(chǎn)孢量。
種苗前, 首先將無菌蛭石裝進(jìn)營養(yǎng)缽備用, 種子于28℃浸泡約10 h, 然后放入2層無菌紗布間過夜催芽, 待種子露白后挑選發(fā)芽整齊一致、生長狀態(tài)良好的種子種植于溫室備好的營養(yǎng)缽中。種苗10 d左右, 待棉苗長至兩葉一心時接種枯萎病菌。將培養(yǎng)好的枯萎病菌在超凈工作臺中接種于液體培養(yǎng)基中, 恒溫振蕩培養(yǎng)的菌液用雙層紗布過濾, 用清水將懸浮液孢子含量調(diào)至1×107cfu·mL-1, 進(jìn)行接菌, 每盆接菌300 mL。接菌25~30 d時觀察棉苗的發(fā)病情況。根據(jù)病害發(fā)生的部位及發(fā)病程度[13], 將棉花枯萎病分為5級, 記為0、1、2、3、4(表1)。
表1 分級標(biāo)準(zhǔn)Table 1 Grading criteria
1.2.2 枯萎病菌液體培養(yǎng)基的篩選 試驗(yàn)設(shè)置8種不同的液體培養(yǎng)基(PD-50、PD-75、PD-100、PD-150、PD-200、PS-75、PS-200和Czapek), 具體配方見表2。培養(yǎng)基在高壓滅菌鍋中滅菌(121℃, 20 min), 待培養(yǎng)基冷卻, 在超凈工作臺中將致病力強(qiáng)的枯萎病菌接種于8種不同的液體培養(yǎng)基中, 恒溫振蕩培養(yǎng)(25℃、170 r·min-1), 在1、2、3、4、5和6 d分別統(tǒng)計產(chǎn)孢數(shù)。
1.2.3 不同固體培養(yǎng)基菌落生長速率的測定 設(shè)置4種固體培養(yǎng)基(PDA-75、PSA-75、PSA-200和Czapek)處理, 在表2基礎(chǔ)上添加瓊脂(15 g·L-1)。固體培養(yǎng)基高壓滅菌(121℃, 20 min), 在超凈工作臺中分裝至平皿, 待培養(yǎng)基凝固備用, 將致病力強(qiáng)的枯萎病菌用5 mm的打孔器打成菌餅置于平皿中, 放置在25℃恒溫培養(yǎng)箱中暗培養(yǎng)。每個處理設(shè)置3次重復(fù), 從培養(yǎng)2 d時開始觀測, 每天觀測菌落表型及菌落直徑, 連續(xù)觀測5 d, 每個重復(fù)用十字交叉法測量4次。
表2 不同液體培養(yǎng)基配方Table 2 Formulation of different Liquid culture media (g·L-1)
1.2.4 不同固體培養(yǎng)基上枯萎病菌產(chǎn)孢量統(tǒng)計待1.2.3中培養(yǎng)的病原菌長滿平皿時, 在超凈工作臺中將其分別接種到Czapek液體培養(yǎng)基中振蕩培養(yǎng)(25℃、170 r·min-1), 分別于2、3、4、5和6 d統(tǒng)計其產(chǎn)孢數(shù)。
1.2.5 枯萎病菌培養(yǎng)天數(shù) 將枯萎病菌分別接種到PD-75和Czapek培養(yǎng)基中培養(yǎng), 通過顯微鏡每天觀察產(chǎn)孢數(shù), 連續(xù)觀察10 d, 并記錄孢子數(shù)量。
1.2.6 培養(yǎng)溫度對產(chǎn)孢量的影響 在25和30℃條件下, 將枯萎病菌分別接種到液體培養(yǎng)基中進(jìn)行振蕩培養(yǎng), 于2、3、4、5和6 d統(tǒng)計其產(chǎn)孢數(shù)并記錄。
對不同來源的枯萎病原菌進(jìn)行培養(yǎng)并統(tǒng)計產(chǎn)孢數(shù), 結(jié)果表明, 5個菌培養(yǎng)3~4 d孢子數(shù)達(dá)到最高, 顯著高于2和5 d。QF、WF和PF孢子數(shù)最高達(dá)108cfu·mL-1、BF最高達(dá)109cfu·mL-1、JF最高達(dá)107cfu·mL-1;QF、JF和BF為小型分生孢子, 卵圓形或腎臟形;WF是鐮刀型和腎臟形混合;PF為大型分生孢子, 鐮刀型, 略彎曲。
用這些孢子懸浮液接種棉花枯萎病感病對照冀棉11, 結(jié)果(圖1)表明, 接菌JF和BF后35 d, 棉苗仍然沒有發(fā)病癥狀;接菌QF和WF后35 d部分子葉有發(fā)黃癥狀;接菌PF后25~30 d出現(xiàn)失綠、干枯等枯萎病癥狀。因此, 選擇PF進(jìn)行枯萎病抗性鑒定。
圖1 不同枯萎病菌產(chǎn)孢量、孢子形態(tài)及致病力Fig.1 Sporulation, spore morphology and pathogenicity of different Fusarium oxysporum
8種液體培養(yǎng)基接種枯萎病菌后產(chǎn)孢數(shù)結(jié)果(表3)表明, Czapek培養(yǎng)基產(chǎn)孢數(shù)顯著高于其他培養(yǎng)基, 其次為PD-75;PD-50和PS-75之間差異不顯著;PD-100、PD-150和PD-200之間差異不顯著;PS-200總產(chǎn)孢量最少。總體來看, 培養(yǎng)4 d產(chǎn)孢數(shù)的平均值最大, 顯著高于其他培養(yǎng)天數(shù), 培養(yǎng)3和5 d之間產(chǎn)孢量差異不顯著, 培養(yǎng)1 d的產(chǎn)孢數(shù)最少(圖2)。因此, 選擇Czapek培養(yǎng)4 d的孢子進(jìn)行接菌為宜。
表3 不同培養(yǎng)基孢子數(shù)顯著性分析Table 3 Significance analysis of the number of spores in different media
圖2 不同培養(yǎng)時間8種培養(yǎng)基孢子數(shù)平均值變化Fig.2 Average number of Fusarium oxysporum spores by 8 culture media at different time
枯萎病菌PF在4種固體培養(yǎng)基上培養(yǎng), 連續(xù)6 d觀察其生長速率, 由表4可知, PDA-75、PSA-75和PSA-200的平均生長速率分別為0.86、0.87和0.91 cm·d-1, 三者之間生長速率差異不顯著。Czapek固體培養(yǎng)基上的生長速率為1.29 cm·d-1, 其生長速率要顯著高于其他3種培養(yǎng)基。
表4 不同固體培養(yǎng)基菌落生長速率比較Table 4 Comparison of growth rates of colonies in different solid media
在PDA-75、PSA-75、PSA-200和Czapek固體培養(yǎng)基上培養(yǎng)枯萎病菌, 連續(xù)觀察菌落生長狀態(tài), Czapek培養(yǎng)基上6 d左右可長滿平皿, 其余培養(yǎng)基培養(yǎng)12 d左右即可長滿平皿。菌落培養(yǎng)12 d后的形態(tài)觀察顯示, PDA-75氣生菌絲生長初期菌絲紫色絨狀, 生長后期分泌色素較多, 紫色加深, 菌絲平鋪在培養(yǎng)基上;PSA-75氣生菌絲絨狀, 顏色呈現(xiàn)淡紫色, 后期顏色變深, 菌絲稀疏;PSA-200氣生菌絲為白色的致密羊毛狀, 生長后期顏色沒有發(fā)生變化;Czapek上生長的氣生菌絲為白色薄絨狀, 菌絲較稀疏, 后期有較少的絨毛狀菌絲生成, 顏色變?yōu)榈S色(圖3)。
圖3 不同固體培養(yǎng)基培養(yǎng)菌落6和12 d后的菌落形態(tài)比較Fig.3 Comparison of colony morphology after culturing colonies on different solid media between 6 and 12 d
將2.3中4種固體培養(yǎng)基培養(yǎng)的病原菌分別接種至Czapek液體培養(yǎng)基中, 連續(xù)6 d觀察枯萎病菌在液體培養(yǎng)基中的產(chǎn)孢數(shù)。結(jié)果(圖4)表明, 培養(yǎng)在PSA-200固體培養(yǎng)基上的枯萎病菌在Czapek液體培養(yǎng)基中總產(chǎn)孢量最大, Czapek固體培養(yǎng)基上培養(yǎng)的枯萎病菌接種在其液體培養(yǎng)基中總產(chǎn)孢量最少;PSA-200固體培養(yǎng)基上培養(yǎng)的枯萎病菌接種到Czapek液體培養(yǎng)基中的產(chǎn)孢量與PDA-75之間差異不顯著, 但顯著高于PSA-75和Czapek(表5)。
表5 不同固體培養(yǎng)基產(chǎn)孢數(shù)的差異顯著性分析Table 5 Significance analysis of the difference in the number of spores produced by different solid media
圖4 不同固體培養(yǎng)基培養(yǎng)病菌產(chǎn)孢數(shù)變化Fig.4 Changes in the number of spores of pathogens cultivated in different solid media
為進(jìn)一步明確適宜的培養(yǎng)天數(shù), 將枯萎病菌在PD-75和Czapek中連續(xù)培養(yǎng)10 d。結(jié)果(圖5和表6)表明, Czapek培養(yǎng)4 d孢子數(shù)最多, 其次為7 d, 培養(yǎng)4和7 d孢子數(shù)之間差異不顯著, 但它們顯著高于其他培養(yǎng)天數(shù);培養(yǎng)3、6和8 d之間差異不顯著, 5、9和10 d之間差異不顯著, 但顯著高于1和2 d孢子數(shù)。
表6 枯萎病菌在Czapek和PD-75培養(yǎng)基不同培養(yǎng)天數(shù)之間產(chǎn)孢數(shù)的差異顯著性分析Table 6 Significance analysis of number of spores between different culture days on different media
圖5 枯萎病菌在Czapek和PD-75培養(yǎng)基連續(xù)培養(yǎng)10 d的孢子數(shù)動態(tài)變化Fig.5 Dynamic change of Fusarium oxysporum spores for 10 d on medium Czapek and PD-75
枯萎病菌在PD-75培養(yǎng)基接菌后孢子數(shù)變化結(jié)果表明, 培養(yǎng)4 d的孢子數(shù)最多, 依次為6、8和7 d, 且4和6 d之間差異不顯著, 7和3 d之間差異不顯著, 5、9和10 d之間差異不顯著, 接菌后1 d孢子數(shù)最少。
基于上述結(jié)果并結(jié)合實(shí)際需要, 進(jìn)一步確認(rèn)選擇培養(yǎng)4 d的孢子進(jìn)行接菌為宜。
2種溫度培養(yǎng)的枯萎病菌孢子數(shù)統(tǒng)計結(jié)果(圖6)顯示, 接菌后25和30℃培養(yǎng)枯萎病菌, 培養(yǎng)3、4、5和6 d產(chǎn)孢數(shù)無顯著差異。
圖6 不同溫度下枯萎病菌產(chǎn)孢數(shù)變化Fig.6 Number of spores under different temperatures
病原菌的生物學(xué)特性研究對抗病育種以及病害防治極其重要。本研究結(jié)果表明, 不同來源枯萎病菌產(chǎn)孢量、孢子大小形態(tài)以及致病力均存在差異。仇存璞等[14]研究顯示不同芝麻主產(chǎn)區(qū)不同菌株致病力不同。過崇儉等[15]研究表明, 棉花枯萎病菌不同?;汀澳暇┬汀焙汀皢|型”大型分生孢子和小型分生孢子的大小形態(tài)不同。本研究的5個枯萎病菌7號生理小種產(chǎn)孢數(shù)之間的差異可能與不同來源的病原菌生長所需要的營養(yǎng)成分不同有關(guān), 這與李金峰等[16]研究結(jié)果一致。培養(yǎng)過程中所用的菌餅大小及活性之間的誤差可能對試驗(yàn)結(jié)果也有一定的影響, 但總的產(chǎn)孢趨勢不受影響。
本研究表明, 病原菌在Czapek固體培養(yǎng)基上生長速率最快, 在PSA-200固體培養(yǎng)基培養(yǎng)的病原菌產(chǎn)孢量最大, 這2種培養(yǎng)基都以蔗糖為碳源。這與蔡悅等[17]和馮雪等[18]研究的大多合歡枯萎病菌菌株在蔗糖為碳源的培養(yǎng)基上生長速度較快的結(jié)果一致。鄭莉等[19]研究發(fā)現(xiàn), 草莓枯萎病菌以葡萄糖為碳源和以硝酸鈉為氮源的培養(yǎng)基上菌落生長速率快, 本研究與該結(jié)論相似, 差異之處可能是由于植物種類的不同造成的。供試菌株在Czapek培養(yǎng)基中產(chǎn)孢量要高于其他培養(yǎng)基, 該培養(yǎng)基以蔗糖作為碳源, 這與曹君等[9,20]研究以蔗糖作為碳源時產(chǎn)孢量最大的結(jié)論基本一致。但李金峰等[16]研究的南瓜枯萎病原菌以淀粉為碳源時產(chǎn)孢量大。本研究以葡萄糖和蔗糖為碳源, 且設(shè)置了不同的濃度, 其產(chǎn)孢量之間也表現(xiàn)出差異, 說明枯萎病菌產(chǎn)孢量的多少可能與碳源濃度以及培養(yǎng)基中其他成分的含量也有關(guān)系。將枯萎病菌在PD-75和Czapek液體培養(yǎng)基中連續(xù)培養(yǎng)10 d, 篩選出4 d孢子數(shù)最多且為適宜的培養(yǎng)天數(shù)。秦涵淳等[21]研究的全糖型和尿素型培養(yǎng)基在6 d時產(chǎn)孢量最大;肖榮鳳等[22]研究的淀粉型培養(yǎng)基5 d后產(chǎn)孢量開始下降。造成這一差異的主要原因可能是培養(yǎng)基成分影響著產(chǎn)孢量的速度。本研究中培養(yǎng)溫度25和30℃之間產(chǎn)孢量差異不顯著, 這與前人研究的最適溫度在27~30℃之間的結(jié)論基本一致[8,23]。沈文淵[24]研究了瓜類枯萎病菌4種專化型的最適生長溫度為25~31℃之間;高婧等[10]研究的枯萎病菌株的最適生長溫度為25~30℃。
本研究篩選出了對棉花枯萎病致病力強(qiáng)的病原菌PF;明確了Czapek液體培養(yǎng)基產(chǎn)孢數(shù)顯著高于其他培養(yǎng)基;病原菌在Czapek固體培養(yǎng)基上的生長最快, 但在PSA-200固體培養(yǎng)基上總產(chǎn)孢量最大;進(jìn)一步確認(rèn)了枯萎病菌培養(yǎng)4 d孢子量最大;揭示了培養(yǎng)溫度25和30℃之間產(chǎn)孢量差異不顯著, 對棉花枯萎病抗病育種及種質(zhì)資源的枯萎病抗性鑒定奠定了基礎(chǔ)。