顧會戰(zhàn) 史洪濤 何佶弦 母明新 尹振華 孫會忠 王小東*
(1四川省煙草公司廣元市公司,四川廣元 628100;2河南科技大學(xué)農(nóng)學(xué)院,河南洛陽 471003)
對于植物而言,根際環(huán)境生活的大量微生物群落通過代謝活動對植物汲取養(yǎng)分、生長發(fā)育、病蟲害防御等起到很好的促進(jìn)作用[1-4]。從根際環(huán)境中分離出的特定功能菌在與附生植物長期協(xié)同進(jìn)化的過程中形成穩(wěn)定的共生關(guān)系,往往能夠產(chǎn)生特定的生物活性物質(zhì),從而表現(xiàn)出特定的功能活性,這是從特定環(huán)境篩選微生物資源(包括生防菌)的理論依據(jù)之一[5]。
煙草根際環(huán)境中存在豐富的微生物種群,包括細(xì)菌、真菌、放線菌、微藻、單細(xì)胞的原生動物等[6-7],從煙草根際環(huán)境中篩選出生防細(xì)菌理論上是可行的,且從煙草根際環(huán)境篩選出來的生防菌對煙草具有更好的親和性,有利于對煙草真菌病害的防治。在此背景下,本研究對煙草根際土壤細(xì)菌進(jìn)行了分離培養(yǎng),篩選鑒定了具有顯著抑菌活性的微生物,并通過盆栽試驗驗證篩選菌株的生防效果,最后對目標(biāo)菌株進(jìn)行了分類鑒定?,F(xiàn)將研究結(jié)果報道如下。
1.1.1 供試土樣。采集煙草根際土壤,稱量1 g土樣加入錐形瓶內(nèi),加入10 mL無菌水,搖床振蕩10 min充分混勻后即制得10-1土壤懸浮液。另取添加9 mL無菌水的試管,取10-1土壤懸浮液1 mL加入試管并振蕩搖勻,用同樣方法依次往復(fù),制成10-4、10-5、10-6等3個濃度梯度的土壤懸浮液,各吸取1 mL涂板,37℃恒溫培養(yǎng)48 h。
1.1.2 供試培養(yǎng)基。①NA固體培養(yǎng)基,供內(nèi)生細(xì)菌的分離、培養(yǎng)及拮抗試驗用。②PDA培養(yǎng)基,供病原真菌的培養(yǎng)及拮抗試驗用。③LB液體培養(yǎng)基,供生防菌菌懸液制備用。
1.2.1 菌懸液的制備。將純化細(xì)菌接入100 mL的LB液體培養(yǎng)基中,然后在32℃、200 r/min條件下培養(yǎng)24 h。取適量菌液于滅菌離心管中,12 000 r/min離心15 min,收集菌體,用無菌水懸浮并調(diào)整濃度至1.0×108CFU/mL,獲得菌株菌懸液。
1.2.2 平板對峙試驗。采用牛津杯平板對峙法,分別考察分離內(nèi)生細(xì)菌對指示病原真菌黑曲霉的拮抗作用。在PDA平板中央接入黑曲霉菌餅,距菌餅一定距離對稱放置2個牛津杯,且每個牛津杯加注20 μL制備好的內(nèi)生細(xì)菌菌懸液,以牛津杯注入無菌水作為對照,3次重復(fù),置于28℃的培養(yǎng)箱中連續(xù)培養(yǎng)5~7 d,定期觀察生長情況。對照組長滿整個培養(yǎng)皿的3/4時,計算抑菌率,計算公式如下:
抑菌率(%)=(對照菌落直徑-處理菌落直徑)/對照菌落直徑×100
測試植株的制備:用PDA培養(yǎng)基培養(yǎng)煙草白粉病病原,并制備孢子懸浮液(血球計數(shù)板檢測孢子數(shù)目,調(diào)整孢子濃度至1.0×105CFU/L)。侵染方法:取1 mL孢子懸浮液接種到植株根部,同時進(jìn)行葉面噴霧,確保植株發(fā)?。灰詿o菌水處理作對照。
將抑菌效果最好的菌株用LB液體培養(yǎng)基32℃搖床培養(yǎng)至OD=4,然后12 000 r/min離心15 min收集菌體,再用等量無菌水懸浮菌體制得測試母液。施用方法為噴霧法(葉片完全濕潤)和灌根法,施用時間為病原侵染2 d后。每個處理3次重復(fù),以無菌水處理作對照,7 d后進(jìn)行葉片病情指數(shù)及發(fā)病率調(diào)查。
煙草白粉病調(diào)查分級標(biāo)準(zhǔn):0級,葉部無病斑出現(xiàn);1級,病斑面積占葉片總面積的15%以下;2級,病斑面積占葉片總面積的15%~25%;3級,病斑面積占葉片總面積的25%~50%;4級,病斑面積占葉片總面積的50%以上。
病情指數(shù)=Σ(各級病葉數(shù)×相對級數(shù)值)/(調(diào)查總?cè)~片數(shù)×最高級數(shù)值)×100;
防治效果(%)=(對照病情指數(shù)-處理病情指數(shù))/對照病情指數(shù)×100。
1.4.1 形態(tài)學(xué)觀察及生理生化特征測定。將測定菌株接種于LB固體培養(yǎng)基培養(yǎng)48 h,制樣進(jìn)行光鏡和掃描電鏡下的形態(tài)觀察[8]。生理生化指標(biāo)的測定方法參考文獻(xiàn)[9-10]。
1.4.2 菌株16S rDNA分析。將測定菌株接種于LB固體培養(yǎng)基,搖床過夜培養(yǎng),采用試劑盒提取基因組DNA;選用通用引物 27F(5′-AGAGTTTGATCCTGGC TCAG-3′)、1492R(5′-GGTTACCTTGTTACGACTT-3′)。PCR體系及操作方法參考文獻(xiàn)進(jìn)行。測序結(jié)果提交NCBI進(jìn)行比對,并采用MEGA7的N-J法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹[11]。
土壤懸浮液涂布NA平板中,37℃培養(yǎng)2~3 d以后,平板上形成特征菌落。挑取菌落進(jìn)行3次劃線純化,獲得19株細(xì)菌活體純培養(yǎng)物,編號為GHZ1~GHZ19。采用15%甘油于-20℃條件下保種備用。
以黑曲霉為指示菌株,分別對獲得的19株根際土壤細(xì)菌的拮抗活性進(jìn)行測定,對峙試驗結(jié)果表明,GHZ05、GHZ09和GHZ12等3株菌對黑曲霉具有顯著的抑制作用,抑菌圈直徑依次為13、11、28 mm,抑菌率依次為 31.36%、40.55%、60.39%(圖1)。
盆栽試驗驗證了菌株GHZ12對煙草白粉病的生物防治效果。煙草白粉病病原侵染接種6 d后植株開始發(fā)病,初期表現(xiàn)為葉片正面出現(xiàn)黃褐色褪綠小斑,隨即在斑塊的正反兩面出現(xiàn)毯狀小點,漸次擴(kuò)大,白粉可覆蓋葉片的大部或全部,嚴(yán)重時葉片干枯,后期偶爾可見黑色的顆粒體。由表1可知,GHZ12菌懸液的灌根、葉面噴霧和灌根+葉面噴霧3種不同處理表現(xiàn)出不同的生防效果,灌根+葉面噴霧混合處理在整個發(fā)病期均表現(xiàn)出比葉面噴霧和灌根單一處理要好的生防效果。15 d時,灌根+葉面噴霧混合處理的防治效果達(dá)到了56.50%,葉面噴霧防治效果為59.96%,2個處理的防治效果均為單一灌根處理的2倍以上。3種施用方法防治效果相互之間差異達(dá)顯著水平。驗證結(jié)果證實,GHZ12菌株對煙草白粉病的防治是有效的,在施用方法上,單一葉面噴霧和灌根+葉面噴霧均取得了較好的生防效果;灌根效果較差,不宜單獨使用。
表1 菌株GHZ12對煙草白粉病的防治效果
菌株GHZ12的形態(tài)特征(圖2):菌落呈土黃色,不透明,邊緣具有齒狀突出,菌落整體隆起明顯,表面半濕潤。革蘭氏染色陰性,菌體桿形,多單生,兩端鈍圓,具有端鞭毛,長 1.3~2.2 μm,直徑 0.5~0.9 μm。
菌株GHZ12的生理生化指標(biāo)測定結(jié)果呈陽性反應(yīng)的項目包括明膠水解試驗、V-P試驗、檸檬酸鹽利用試驗、接觸酶試驗、脲酶水解試驗和吲哚試驗;陰性反應(yīng)項目包括淀粉水解、甲基紅試驗、糖類(葡萄糖、蔗糖、果糖、麥芽糖、乳糖)發(fā)酵試驗。
菌株GHZ12的16S rDNA基因擴(kuò)增產(chǎn)物測序結(jié)果為1 496 bp,序列在GenBank比對獲得同源性較高的序列,并構(gòu)建進(jìn)化樹(圖3)。結(jié)果表明,菌株GHZ12與Pseudomonas sp.S35(KT890311.1)聚在同一分支。結(jié)合菌株LZ-7的形態(tài)、生理生化和分子鑒定結(jié)果,將其鑒定為假單胞菌屬菌株,暫命名為Pseudomonas sp.GHZ12。
煙草是我國重要的經(jīng)濟(jì)作物,在栽培過程中病害嚴(yán)重,通過尋找生防菌能夠?qū)崿F(xiàn)煙草病害的綠色防控,這也是煙草行業(yè)可持續(xù)發(fā)展的技術(shù)需求[12]。本研究從煙草根際土壤中共分離出3株拮抗菌株,試驗以黑曲霉為指示菌株,3株具有拮抗活性的菌株GHZ05、GHZ09和GHZ12可初步定性為對真菌病原具有抑制作用的生防菌,具有后期深度開發(fā)的價值。
盆栽試驗證實,GHZ12對煙草白粉病具有較好的生防效果,從第5天發(fā)病開始到第15天的發(fā)病周期中,GHZ12的生防效果在各處理中均持續(xù)提高,這說明GHZ12發(fā)揮出了對煙草白粉病病原持續(xù)性的抑制作用,符合生防菌發(fā)揮作用的規(guī)律和生物學(xué)特點,可作為開發(fā)煙草白粉病生物防治的資源菌株。