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        變異鏈球菌糖轉(zhuǎn)運(yùn)及其調(diào)控機(jī)制的研究進(jìn)展

        2022-09-26 07:33:40龔濤李雨慶周學(xué)東

        龔濤 李雨慶 周學(xué)東

        口腔疾病研究國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 國(guó)家口腔疾病臨床醫(yī)學(xué)研究中心四川大學(xué)華西口腔醫(yī)學(xué)院 成都 610041

        齲病是最常見(jiàn)的口腔感染性疾病之一,具有發(fā)病率高,治療率低,再治療率高等特點(diǎn),嚴(yán)重影響人類口腔和全身健康[1-3]。第四次全國(guó)口腔健康流行病學(xué)調(diào)查[4]結(jié)果顯示,中國(guó)居民整體患齲率普遍偏高,如35~44歲年齡組的恒牙患齲率為89.0%,55~64歲年齡組的恒牙患齲率為95.6%,65~74歲年齡組的恒牙患齲率高達(dá)98.0%。現(xiàn)代齲病病因?qū)W說(shuō)認(rèn)為,齲病是發(fā)生于牙體硬組織,由微生物代謝產(chǎn)酸所導(dǎo)致的慢性感染性疾病[5]。牙齒表面的微生物和細(xì)胞外基質(zhì)往往形成多種生物膜群落,正常情況下宿主與生物膜之間處于健康的動(dòng)態(tài)平衡狀態(tài)[6]。當(dāng)宿主長(zhǎng)期攝入高糖飲食時(shí),微生物代謝可產(chǎn)生多種細(xì)胞外基質(zhì)和酸性代謝物,胞外基質(zhì)的產(chǎn)生可促進(jìn)生物膜的形成,同時(shí)生物膜內(nèi)微生物多樣性減少,而產(chǎn)酸和耐酸性微生物增加,即生物膜的微生態(tài)平衡被打破,導(dǎo)致生物膜與牙齒表面接觸部位局部pH降低,最終引發(fā)牙體硬組織脫礦[6-8]。

        變異鏈球菌(Streptococcus mutans,S.mutans)是主要致齲微生物之一,其致齲毒力包括產(chǎn)酸耐酸性、對(duì)牙面的黏附作用、合成細(xì)胞外多糖(exopolysaccharides,EPS)和對(duì)環(huán)境應(yīng)激的適應(yīng)能力[9-10]。有學(xué)者發(fā)現(xiàn),S.mutans不僅能夠代謝碳水化合物(如蔗糖)產(chǎn)生有機(jī)酸致使牙齒脫礦,還能夠合成水不溶性胞外多糖。EPS不僅可作為微生物代謝的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì),也能為S.mutans及其他微生物的定植和集聚提供黏附位點(diǎn),促進(jìn)牙菌斑生物膜的形成。研究[11-12]表明,S.mutans毒力因子的形成與其糖類轉(zhuǎn)運(yùn)和代謝相關(guān),而糖類的轉(zhuǎn)運(yùn)和代謝又受到多種因子的調(diào)控。因此,本文主要綜述S.mutans糖轉(zhuǎn)運(yùn)的研究進(jìn)展,尤其關(guān)注糖轉(zhuǎn)運(yùn)方式和調(diào)控糖轉(zhuǎn)運(yùn)的各種調(diào)節(jié)因子,以期為口腔中其他細(xì)菌糖轉(zhuǎn)運(yùn)相關(guān)機(jī)制研究提供參考。

        1 糖轉(zhuǎn)運(yùn)

        糖類是細(xì)菌主要的碳源,細(xì)菌攝入后可用于糖酵解途徑產(chǎn)生腺嘌呤核苷三磷酸(adenosine triphosphate,ATP),合成各種細(xì)胞組分(如肽聚糖、脂肪酸、核酸)以及細(xì)胞內(nèi)多糖(intercellular polysaccharide,IPS)。細(xì)菌攝入糖的類型因其種類不同而存在較大差異,如S.mutans可利用棉子糖作為碳源,而其他鏈球菌則不能[13]。S.mutans攝入糖的種類可大致分為單糖(葡萄糖、果糖和半乳糖),二糖(蔗糖、乳糖、麥芽糖和海藻糖),三糖(棉子糖)和氨基糖(葡萄糖胺和N-乙酰葡糖胺)等[11]。研究[11,14]表明,S.mutans轉(zhuǎn)運(yùn)糖的方式主要有2種:磷酸轉(zhuǎn)移酶系統(tǒng)(phosphotransferase system,PTS)和ATP結(jié)合盒(ATP-binding cassette,ABC)轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng)。

        1.1 PTS

        PTS又稱為磷酸烯醇式丙酮酸(phosphoenolpyruvate,PEP)依賴性糖磷酸轉(zhuǎn)移酶系統(tǒng)(phosphoenolpyruvate-dependent phosphotransferase system,PEP-PTS),是S.mutans攝入糖類最主要的方式。截止目前,已報(bào)道的PEP-PTS系統(tǒng)結(jié)構(gòu)基本相似,主要包含2個(gè)胞質(zhì)磷酸轉(zhuǎn)移酶:酶Ⅰ(enzymeⅠ,EⅠ);組氨酸磷酸載體蛋白(histidinecontaining phosphocarrier protein,HPr)以及依賴于物種的數(shù)目可變的糖結(jié)合特異性酶Ⅱ(enzymeⅡ,EⅡ)復(fù)合物,包括EⅡA、EⅡB、EⅡC和EⅡD[15]。如在攝入葡萄糖時(shí),葡萄糖先與EII特異性結(jié)合并被轉(zhuǎn)運(yùn)至細(xì)胞膜內(nèi),同時(shí)EⅠ磷酸化后再將磷酸基團(tuán)傳遞給HPr,形成的P-HPr隨即磷酸化葡萄糖形成葡萄糖-6-磷酸(glucose-6-phosphate,Glu-6P),最后Glu-6P進(jìn)入糖酵解途徑[11,15]。在S.mutansUA159中含有14種PTS,其中特異性EⅡ約15種,表明它可轉(zhuǎn)運(yùn)多種糖類滿足自身代謝需求并適應(yīng)復(fù)雜多變的環(huán)境[16-17]。

        1.2 ABC轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng)

        相比PTS,ABC轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng)轉(zhuǎn)運(yùn)糖類的特異性較低,但能夠轉(zhuǎn)運(yùn)多種不同類型的多糖[11]。ABC轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白結(jié)構(gòu)中均有ABC存在,其通過(guò)水解ATP釋放的能量來(lái)對(duì)底物進(jìn)行跨膜轉(zhuǎn)運(yùn)。S.mutansUA159基因組注釋表明含有4種ABC轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng)[14],而目前結(jié)構(gòu)相似且研究較為清楚的是:MsmEFGK和MalXFGK[18]。ABC轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng)含有4個(gè)結(jié)構(gòu)域(圖1):一個(gè)綁定多糖的膜外結(jié)合蛋白(MsmE/MalX),2個(gè)跨膜蛋白(MsmF/MalF和MsmG/MalG)和一個(gè)位于胞內(nèi)結(jié)合ATP的亞基(MsmK/MalK),即當(dāng)膜外蛋白MsmE結(jié)合多糖底物后并將其傳給跨膜通道蛋白MsmF和MsmG,同時(shí)將信號(hào)傳遞給膜內(nèi)蛋白MsmK使其水解ATP供能,促使底物進(jìn)入胞內(nèi)[18-19]。研究[18]發(fā)現(xiàn),MsmEFGK主要轉(zhuǎn)運(yùn)蜜二糖、棉子糖、水蘇糖、異麥芽糖和異麥芽三糖等,而MalXFGK主要轉(zhuǎn)運(yùn)麥芽三糖、麥芽四糖、麥芽五糖和麥芽七糖等??傊?,ABC轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng)擴(kuò)大了S.mutans攝入糖的范圍,提高自身的適應(yīng)能力。

        圖1 PTS和ABC轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng)Fig 1 PTS and ABC transporter

        2 調(diào)控糖轉(zhuǎn)運(yùn)的機(jī)制

        2.1 轉(zhuǎn)錄激活子

        S.mutansUA159菌株海藻糖操縱子中TreR作為轉(zhuǎn)錄激活子調(diào)控treA和treB表達(dá)以響應(yīng)對(duì)海藻糖的利用[20]。研究[20]還發(fā)現(xiàn),TreR的缺失不僅影響氧耐受和酸耐受能力,同時(shí)也極大地降低變鏈素的產(chǎn)生,導(dǎo)致種間競(jìng)爭(zhēng)能力下降。此外,CelR也作為轉(zhuǎn)錄激活子調(diào)控S.mutans對(duì)纖維二糖的利用[21];StsR失活引起多個(gè)PTS操縱子基因下調(diào),導(dǎo)致糖轉(zhuǎn)運(yùn)能力嚴(yán)重下降,并影響EPS合成和生物膜的形成[22]。這些結(jié)果表明,轉(zhuǎn)錄因子可直接參與調(diào)控PTS轉(zhuǎn)運(yùn)糖的能力,同時(shí)也能影響其毒力因子的形成。

        2.2 轉(zhuǎn)錄抑制子

        S.mutansUA159菌株中NigR作為轉(zhuǎn)錄抑制子結(jié)合至啟動(dòng)子區(qū)域,與RNA聚合酶形成空間阻遏并阻止下游基因的轉(zhuǎn)錄,抑制代謝蔗糖形成生物膜的操縱子PTSBio的表達(dá),進(jìn)而影響糖轉(zhuǎn)運(yùn)和生物膜形成[23]。研究[24-26]發(fā)現(xiàn),分解代謝物控制蛋白(catabolite control protein A,CcpA)、FruR和EⅡMan都可抑制manLMN操縱子(主要轉(zhuǎn)運(yùn)葡萄糖、甘露醇、半乳糖、葡萄糖胺和N-乙酰葡糖胺)的表達(dá);同時(shí),CcpA和FruR也可阻遏fruRKI操縱子(主要轉(zhuǎn)運(yùn)果糖)的轉(zhuǎn)錄,而fruR和fruK的缺失可影響S.mutans碳水化合物代謝以及生物膜的形成[17]。以上研究結(jié)果表明,部分轉(zhuǎn)錄因子不僅可作為負(fù)調(diào)節(jié)子阻止糖類的轉(zhuǎn)運(yùn),而且單個(gè)轉(zhuǎn)錄因子還能同時(shí)調(diào)節(jié)多個(gè)糖轉(zhuǎn)運(yùn)操縱子轉(zhuǎn)錄,暗示著S.mutans擁有精密而又復(fù)雜的糖轉(zhuǎn)運(yùn)調(diào)控網(wǎng)絡(luò)。

        2.3 雙組分系統(tǒng)

        FruA是S.mutans果聚糖水解酶,可分解果聚糖為果糖被其利用,而果聚糖的存在又可激活fruA的表達(dá)[27]。研究[28]發(fā)現(xiàn),在果糖存在的情況下,LevQRST雙組分系統(tǒng)響應(yīng)果糖并激活fruA和levDEFG(即PTS的EⅡlev組分)轉(zhuǎn)錄。一方面,大量表達(dá)的FruA將胞外的果聚糖分解為果糖,同時(shí)將轉(zhuǎn)運(yùn)更多的胞外果糖至細(xì)胞內(nèi)。另一方面,F(xiàn)ruA的積累促使EⅡlev和EⅡFru反饋調(diào)節(jié)fruA并抑制它的表達(dá);同時(shí),胞內(nèi)的果糖增加也會(huì)激活碳分解代謝物阻遏(carbon catabolite repression,CCR)系統(tǒng)去關(guān)閉fruA的轉(zhuǎn)錄。此外,果聚糖可作為S.mutans的胞外儲(chǔ)能多糖,當(dāng)缺乏速效碳源時(shí)可利用該途徑攝入果糖為細(xì)胞提供碳源,以應(yīng)對(duì)饑餓脅迫并提高環(huán)境適應(yīng)能力。

        2.4 CCR

        CCR是指微生物在混合碳源發(fā)酵時(shí)優(yōu)先利用速效碳源(通常為葡萄糖),且該碳源的代謝產(chǎn)物會(huì)抑制其他非速效碳源代謝相關(guān)的基因表達(dá)和蛋白活性,從而影響非速效碳源利用的現(xiàn)象[29-30]。在低GC含量(即鳥(niǎo)嘌呤和胞嘧啶所占的比例)的革蘭陽(yáng)性菌中,CCR的關(guān)鍵調(diào)控因子為CcpA[29]。如S.mutans以葡萄糖等為速效碳源時(shí),胞內(nèi)ATP和果糖-1,6-二磷酸(fructose-1,6-bisphosphate,F(xiàn)BP)含量升高激活HPrK/P的活性,將HPr絲氨酸殘基磷酸化形成P-(Ser)-HPr,隨即與轉(zhuǎn)錄因子CcpA形成復(fù)合物直接結(jié)合非速效碳源基因的代謝響應(yīng)位點(diǎn)分解代謝反應(yīng)元件(catabolite response elements,CRE),從而激活或阻遏非速效碳源基因的轉(zhuǎn)錄,然而CcpA的缺失并不會(huì)導(dǎo)致CCR功能完全喪失[31]。研究[32]發(fā)現(xiàn),CcpA不僅調(diào)節(jié)S.mutans碳水化合物代謝以及毒力因子的表達(dá),同時(shí)在其許多基因的啟動(dòng)子區(qū)域可檢測(cè)到大量的潛在CcpA結(jié)合位點(diǎn)cre,暗示CcpA還有可能調(diào)控其他生理功能。如CcpA可直接結(jié)合lrgAB和cidAB操縱子的啟動(dòng)子區(qū)域,進(jìn)而調(diào)控葡萄糖攝取,細(xì)胞自溶,基因感受態(tài),生物膜形成和應(yīng)激響應(yīng)等[33]。當(dāng)以葡萄糖、果糖或甘露醇作為單一碳源時(shí),敲除CcpA雖然影響S.mutans的生長(zhǎng),卻增強(qiáng)了其糖酵解能力、IPS的儲(chǔ)存和酸耐受能力[34]。然而,IPS的儲(chǔ)存在細(xì)菌長(zhǎng)久定植(或持留)和毒力因子形成方面具有重要作用[35],進(jìn)一步表明CcpA可影響S.mutans碳源的利用和毒力因子的形成。此外,CcpA也可調(diào)節(jié)多種EⅡ滲透酶的表達(dá)來(lái)間接影響非速效糖攝入的能力[31,36]。因此,S.mutans以CCR這種方式快速且無(wú)縫地調(diào)節(jié)碳水化合物的攝取和代謝途徑,從而更加高效地響應(yīng)口腔內(nèi)不斷變化的復(fù)雜環(huán)境。

        3 小結(jié)與展望

        S.mutans糖類的攝入與其毒力因子的形成有著非常密切的聯(lián)系,其攝入糖類的方式主要包括PTS系統(tǒng)和ABC轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng)。它們不僅可以運(yùn)輸和磷酸化碳水化合物,而且可以執(zhí)行與碳代謝有關(guān)的調(diào)節(jié)功能以及影響毒力因子的形成??谇皇且粋€(gè)持續(xù)變化的復(fù)雜環(huán)境,S.mutans擁有多種轉(zhuǎn)運(yùn)糖類的方式,以維持新陳代謝和適應(yīng)多變復(fù)雜的環(huán)境。未來(lái)的工作將致力于糖轉(zhuǎn)運(yùn)的機(jī)制研究,尋找更多調(diào)控糖類轉(zhuǎn)運(yùn)的關(guān)鍵因子,以此作為抗齲靶點(diǎn)阻止糖類的轉(zhuǎn)運(yùn)并抑制毒力因子的形成,從而為齲病防治或治療提供新策略。

        利益沖突聲明:作者聲明本文無(wú)利益沖突。

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