彭珊珊, 劉思思, 巫謝生, 孫 靜, 張 詠*
(1.江西省醫(yī)學(xué)科學(xué)院, 南昌 330000; 2.南昌大學(xué)藥學(xué)院, 南昌 330036)
金黃色葡萄球菌(Staphylococcusaureus)是目前世界上最常見的社區(qū)和院內(nèi)感染因素之一,常見于燒傷、創(chuàng)傷科等,它幾乎可以感染身體的全部器官和組織,引起各種炎癥和并發(fā)癥甚至毒血癥等[1].金葡菌感染死亡率高,到目前為止所已知的人類致病菌中,沒有一種菌的具有如金葡菌一樣廣泛的致病機制和毒性機制.金黃色葡萄球菌自身擁有多種免疫逃避機制可以抵抗機體免疫系統(tǒng)的作用[2].加之金葡菌的耐藥性問題日漸嚴(yán)重,耐甲氧西林甚至耐萬古霉素的金葡菌的出現(xiàn),使得其感染的防治問題越發(fā)棘手.
Pam3CSK4(Pam3Cys-Ser-(Lys)4)是Toll樣受體2(toll like receptor 2, TLR2)的模式識別分子,是細菌脂蛋白的人工模擬物.在此前的研究中使用了TLR2的激動劑Pam3CSK4去處理小鼠肺炎、腎膿腫模型,結(jié)果顯示Pam3CSK4預(yù)處理對耐甲氧西林的金黃色葡萄球菌(methicillin-resistantStaphylococcusaureus, MRSA)攻擊的小鼠病理模型具有保護作用,能顯著延長小鼠的生存時間和生存率,小鼠各臟器對MRSA清除能力顯著增加,同時顯著降低MRSA攻擊后小鼠促炎癥細胞因子TNF-α,IL-6和IFN-γ的產(chǎn)生[3].Pam3CSK4預(yù)處理小鼠腹腔巨噬細胞能增強其對MRSA殺菌能力,并降低相應(yīng)炎癥反應(yīng)[4].對中性粒細胞的預(yù)處理可以增強對MRSA的吞噬功能和抗菌能力[5-6].表明利用Pam3CSK4干預(yù)TLR2,可能可以對抗金葡菌感染攻擊,又能同時抑制續(xù)發(fā)的炎性病理反應(yīng),避免對機體造成過度免疫反應(yīng)的二次打擊.
黃連素又名小檗堿,是黃連、黃柏等中的主要有效抗菌成分,在臨床上常以氯化物形式使用,廣泛應(yīng)用于消化道細菌性疾病.黃連素不僅具有顯著的廣譜抗菌能力,還具有一定的免疫調(diào)節(jié)能力[7-8].它可以抑制MRSA的生物膜形成,對被膜態(tài)的金葡菌抑制效果較浮游態(tài)更好,而MRSA的耐藥性獲得與其生物膜的形成密切相關(guān)[9].黃連素還可以通過抑制P65信號通路產(chǎn)生炎癥抑制作用,對小鼠構(gòu)建的金黃色葡萄球菌引起的急性肺損傷模型起到保護作用[10].
為了應(yīng)對金葡菌的耐藥性難題,本文將黃連素與Pam3CSK4聯(lián)合使用以對抗MRSA的感染,黃連素在此作為抗菌藥物,可以對抗金葡菌的耐藥性,還具有一定的免疫調(diào)節(jié)能力,Pam3CSK4作為免疫激動劑可以調(diào)動機體的先天性免疫,兩者相輔,可能在抗MRSA攻擊上具有良好效果,可以做為一種無抗生素的預(yù)防和治療金葡菌感染的手段.文中實驗觀察了小鼠用藥后對MRSA的抵抗能力,并體外初步研究了感染過后的小鼠淋巴細胞對樹突狀細胞(dendritic cell, DC)的MRSA抗原提呈的反應(yīng)情況,驗證黃連素與Pam3CSK4的聯(lián)用可以提高小鼠對抗MRSA感染效果,調(diào)動機體特異性免疫反應(yīng),為金黃色葡萄球菌的預(yù)防和治療提供新思路.
實驗動物:18~20 g的SPF級雌性昆明鼠(江西省中醫(yī)藥大學(xué)實驗動物中心).動物實驗經(jīng)江西省醫(yī)學(xué)科學(xué)院醫(yī)學(xué)倫理委員會批準(zhǔn)(批準(zhǔn)號為JXAMS=EWC-2019011).
菌種:耐甲氧西林的金黃色葡萄球菌標(biāo)準(zhǔn)株(MRSA,ATCC43300,江西省醫(yī)學(xué)科學(xué)院微生物實驗室保存).
培養(yǎng)基:胰蛋白胨大豆肉湯培養(yǎng)基(Solarbio),金黃色葡萄球菌顯色培養(yǎng)基(科瑪嘉),RPMI 1640培養(yǎng)基(Solarbio),胎牛血清(Gibco).
藥品:氯化小檗堿水合物(東京化成工業(yè)株式會社,TGI),Pam3CSK4(invivogen).
細胞因子:GM-CSF(Pepro Tech),IL-4(Pepro Tech).
染料、抗體和試劑盒:羊抗小鼠IgG-HRP(Solarbio),小鼠免疫球蛋白M(IgM)檢測試劑盒(Biolegend),CFSE(Abcam),APC anti-mouse CD11c(Biolegend Inc),PE anti-mouse MHCII(Biolegend Inc),F(xiàn)ITC anti-mouse CD282(TLR2)(Biolegend Inc),PE anti-mouse CD3(Biolegend Inc),APC anti-mouse CD19(Biolegend Inc),PE-Cy5 anti-mouse CD4(Biolegend Inc),PE-Cy7 anti-mouse CD8(Biolegend Inc).
取MRSA用TSB培養(yǎng)基培養(yǎng)至對數(shù)期,3 000 r·min-1離心取沉淀,用1 mL PBS稀釋,充分混勻后用紫外分光光度計檢測其600 nm波長處的吸光度,用PBS調(diào)整菌液濃度至6×109cfu·mL-1,2 h沸水水浴或40 min UV照射可以置備滅活的MRSA菌液[11].
小鼠分組腹腔注射MRSA菌液,每組10只,每只分別注射1×108、5×108、1×109、1.5×109、2×109、2.5×109、3×109cfu,連續(xù)7 d觀察小鼠死亡情況,確定后續(xù)實驗中采用的腹腔注射MRSA的非致死劑量和致死劑量.
小鼠分組:聯(lián)合治療組、黃連素組、Pam3CSK4組、生理鹽水組、空白組,每組6只.聯(lián)合治療組先給予Pam3CSK4尾靜脈注射給藥,每只100 μg,給藥1次,1 d后進行MRSA攻擊,同時每日黃連素灌胃給藥,每只2 mg;黃連素組先給予生理鹽水尾靜脈注射,給藥1次,1 d后進行MRSA攻擊,同時黃連素每日灌胃給藥,每只2 mg;Pam3CSK4組先給予Pam3CSK4尾靜脈注射給藥,每只100 μg,給藥1次,1 d后進行MRSA攻擊,同時生理鹽水灌胃給藥;生理鹽水組進行一次生理鹽水尾靜脈注射,1 d后進行MRSA攻擊,同時生理鹽水灌胃給藥;空白組不給藥.
MRSA攻擊采取小鼠腹腔注射最大致死劑量MRSA,24 h內(nèi)每6 h觀察一次小鼠死亡情況,24~48 h內(nèi)每12 h觀察1次,36 h后每24 h觀察一次,累計1周,記錄死亡數(shù)、生存時間,計算存活率.
非致死劑量MRSA的腹腔注射小鼠,3 d后頸椎脫臼處死小鼠,無菌條件下取小鼠肝、腎臟器,向組織中加入1 mL PBS溶液后勻漿,勻漿后10倍稀釋,取200 μL勻漿稀釋液涂布于金黃色葡萄球菌顯色培養(yǎng)基上,37 ℃培養(yǎng)24 h后選擇平板上紫紅色、紅色、粉紅色的菌落進行計數(shù),計錄肝、腎上MRSA的細菌載量.
非致死劑量MRSA攻擊小鼠后第7 d對小鼠進行眼球取血,離心分離血清,采用ELISA法分別檢測血清中MRSA特異性抗體IgG和總IgM的水平.
間接ELISA法檢測特異性IgG:將滅活的MRSA以1×108cfu·mL-1或溶血素-α以2 μg·mL-1用0.05 mol·L-1PH 9.4的碳酸鹽緩沖液重懸,加入ELISA板,每孔包被100 μL,4 ℃包被過夜.PBST洗板4次,加入200 μL 1% BSA,37 ℃封閉1 h.PBST洗板4次,加入100 μL待測血清,37 ℃孵育2 h.PBST洗板4次,加入100 μL羊抗小鼠IgG-HRP, 37 ℃孵育1 h.PBST洗板4次,加入100 μL TMB,避光孵育20 min,加入100 μL 1 M H2SO4終止反應(yīng).用酶標(biāo)儀在波長450 nm光下讀取吸光度[12].
ELISA法檢測總IgM:按照試劑盒說明書,在酶標(biāo)ELISA板上加待測血清100 μL,37 ℃孵育1 h.PBST洗板4次,加入100 μL酶標(biāo)二抗, 37 ℃孵育1 h.PBST洗板4次,加入100 μL TMB,避光孵育20 min,加入100 μL 終止液終止反應(yīng).用酶標(biāo)儀在波長450 nm光下讀取吸光度.
斷頸處死6周齡小鼠, 游離小鼠后腿兩側(cè)股骨,無菌取股骨骨髓細胞懸液,過200目篩,并調(diào)整密度為106cell· ml-1, 加入含GM-CSF(10 ng·mL-1),IL-4(10 ng·mL-1),10% 胎牛血清的RPMI1640,置于六孔板中于37 ℃、5% CO2培養(yǎng).48 h后吸去懸浮細胞換液,兩天半后半量換液, 7 d后利用APC anti-mouse CD11c和PE anti-mouse MHCII進行標(biāo)記, 流式細胞儀檢測DC純度.
第10 d處死非致死劑量MRSA的小鼠, 無菌取腸系膜小鼠淋巴結(jié),輕輕碾磨取淋巴結(jié)細胞懸液,過200目篩濾網(wǎng),懸液離心重懸,細胞計數(shù).
將培養(yǎng)到第7 d的DC加入滅活的MRSA刺激3 h,DC用FITC anti-mouse CD282染色,流式檢測其細胞表面TLR2表達情況.淋巴細胞懸液中加入CFSE染色,10 min后用50%的血清終止染色,離心洗去染液.將MRSA刺激后的DC與CFSE染色的淋巴細胞按1∶10的比例混合共培養(yǎng)3 d,收集細胞,用PE anti-mouse CD3,APC anti-mouse CD19,PE-Cy5 anti-mouse CD4,PE-Cy7 anti-mouse CD8進行染色,流式細胞術(shù)檢測CD4、CD8和CD19陽性細胞的增殖情況.
為確定實驗中MRSA的注射致死劑量和非致死劑量,對小鼠腹腔注射一系列不同劑量的MRSA懸液,連續(xù)觀察5 d小鼠的生存情況,結(jié)果如表1,在后續(xù)實驗中采取每只2×109cfu MRSA為腹腔注射的致死劑量,每只5×108cfu MRSA為非致死劑量.
表1 小鼠腹腔注射MRSA致死實驗
為了探討黃連素、Pam3CSK4以及兩種藥物聯(lián)用對小鼠在MRSA攻擊下的保護作用,將小鼠分組成聯(lián)合治療組、黃連素組、Pam3CSK4組、生理鹽水組、空白組進行給藥,每只小鼠腹腔注射2×109cfu 劑量的MRSA進行攻擊,連續(xù)觀察小鼠的生存情況,計算小鼠的生存率如圖1所示.結(jié)果顯示聯(lián)合給藥組存活率最高,為66.7%;黃連素組存活率25%;Pam3CSK4組存存活率41.7%;生理鹽水組存活率16.7%.生存分析結(jié)果顯示,聯(lián)合給藥組與生理鹽水組對照相比,對小鼠的感染預(yù)保護實驗結(jié)果存活率有統(tǒng)計學(xué)差異(p<0.05).單獨給藥黃連素或Pam3CSK4對小鼠存活率無顯著差異.數(shù)據(jù)表明Pam3CSK4和黃連素聯(lián)合給藥可以有效提高小鼠感染后的存活率,黃連素或Pam3CSK4單獨給藥對小鼠感染后的存活情況有提高但并不明顯.說明黃連素的抗菌作用與Pam3CSK4的免疫激動作用相結(jié)合,相對單獨給藥來對抗MRSA感染是有意義的.
注:*、**分別表示p<0.05、p<0.01.下同.
為進一步分析黃連素和Pam3CSK4抗MRSA的作用,每只小鼠給予非致死劑量5×108cfuMRSA腹腔注射攻擊并分組給藥,取其肝、腎臟勻漿后用金黃色葡萄球菌顯色培養(yǎng)基檢測其中的細菌載量.結(jié)果如圖2所示,聯(lián)合給藥和單獨Pam3CSK4給藥,統(tǒng)計學(xué)上顯著降低肝臟(p<0.05)和腎臟(p<0.01)的細菌量,而黃連素用藥對MRSA的清除率提高也有一定作用.在肝、腎臟清除MRSA的過程中,顯然Pam3CSK4通過其免疫激動作用發(fā)揮了比黃連素的抗菌作用更大的效果,兩者的聯(lián)合使用似乎更加強了這種效果,從圖上看聯(lián)合給藥組在載菌量的整體水平相較于Pam3CSK4組還是雖然并不顯著,但是仍然更低一些.
圖2 分組給藥的小鼠肝、腎上MRSA的載菌量
在機體抗感染的過程中,體液免疫發(fā)揮了重要的作用,為了進一步研究黃連素和Pam3CSK4抗MRSA的作用,采用ELISA法分析了各組小鼠感染后第七天血清中的免疫球蛋白IgG和IgM的水平.其中抗體特異性的IgG的檢測采用了間接ELISA法,將抗原即滅活的MRSA或溶血素-α包被到ELISA板上,再加入待測血清與抗原特異性結(jié)合,以酶標(biāo)二抗羊抗小鼠IgG-HRP顯色檢測[12].溶血素-α是金黃色葡萄球菌分泌的最重要的細胞毒素,以滅活的MRSA或溶血素-α分別為抗原檢測特異性IgG可以相互印證結(jié)果.總IgM的檢測采用雙抗夾心ELISA法.結(jié)果如圖3顯示,黃連素組和生理鹽水組的MRSA和溶血素-α特異性IgG水平都沒有明顯差別,Pam3CSK4組和聯(lián)合給藥組特異性IgG水平也沒有明顯差別,黃連素組和生理鹽水組顯著性高于Pam3CSK4組和聯(lián)合給藥組的特異性IgG水平;與之相反,Pam3CSK4組和聯(lián)合給藥組的總IgM的量要高于黃連素組和生理鹽水組,黃連素組和生理鹽水組的總IgM水平無明顯差異,Pam3CSK4組和聯(lián)合給藥組也無明顯差異.表明Pam3CSK4會降低小鼠對MRSA的IgG分泌水平但是會增加IgM的分泌,黃連素對IgG和IgM的分泌無明顯影響.
圖3 分組給藥對血清中特異性IgG和總IgM水平的影響
為了觀察黃連素和Pam3CSK4對淋巴細胞的增殖的影響,首先培養(yǎng)健康小鼠的樹突狀細胞(DC),培養(yǎng)到第6 d的DC用滅活的MRSA進行刺激,流式檢測其TLR2的表達情況.結(jié)果如圖4所示,培養(yǎng)到第6 d的細胞,CD11c陽性細胞比例61%以上,MHCII、CD11c雙陽性細胞52.6%(圖4a).DC細胞經(jīng)過MRSA刺激后,TLR2表達量由未經(jīng)細菌刺激前的20.5%提高到25.1%,提示DC細胞接受了抗原刺激,其TLR2表達量提高(圖4b).然后在各給藥組進行了非致死劑量MRSA攻擊的10 d,取小鼠腸系膜淋巴結(jié)的淋巴細胞,與DC細胞共培養(yǎng)后,流式細胞術(shù)檢測圈出CD3+細胞為T淋巴細胞,CD19+細胞為B淋巴細胞,在CD3+細胞群中圈出CD4+和CD8+細胞,CD4+亞群是輔助性T細胞,CD8+亞群是毒性T細胞,利用染色的CFSE檢測各類細胞的增殖情況.
a.CD11c和MHCll雙陽性的DC細胞;b.無MRSA刺激的DC細胞TLR2表達;c.MRSA刺激的DC細胞TLR2表達
CD4+的T淋巴細胞的增殖情況如圖5所示,結(jié)果顯示,未經(jīng)過共培養(yǎng)的CD4+T淋巴細胞幾乎沒有增殖,與DC細胞共培養(yǎng)的空白組CD4+T淋巴細胞增值率均數(shù)為20.1%,共培養(yǎng)后生理鹽水組CD4+T細胞增殖量均數(shù)為24.5%,黃連素組CD4+T細胞增殖量約26.7%,Pam3CSK4組CD4+T細胞增殖量約31.7%,聯(lián)合給藥組CD4+T細胞增殖量約37.5%.生理鹽水組較空白組而言,相當(dāng)于DC細胞給予了CD4+T淋巴細胞第二次的激活,其增殖量有所增長,符合淋巴細胞的增殖規(guī)律.聯(lián)合給藥組的CD4+T細胞增殖量最大,顯著性高于生理鹽水組和黃連素組(p<0.05).而單獨給藥的兩組,雖然在統(tǒng)計學(xué)上無明顯提高CD4+T細胞的增殖,但整體水平依然高于生理鹽水組,特別是Pam3CSK4組,由于藥物聯(lián)合使用對CD4+T細胞增殖的確實有明顯的促進效果,可以推論兩種藥物都有可能可以對輔助性T細胞的有促進作用,且Pam3CSK4的促進效果更加明顯.
圖5 CD4+ T淋巴細胞的增殖
CD8+的T淋巴細胞的增殖情況如圖6所示,結(jié)果顯示,未共培養(yǎng)的CD8+T淋巴細胞幾乎沒有增殖,與DC細胞共培養(yǎng)的空白組CD8+T淋巴細胞增值率均數(shù)為5.67%,共培養(yǎng)后生理鹽水組CD8+T細胞增殖量約16.6%,黃連素組CD8+T細胞增殖量約16.1%,Pam3CSK4組CD8+T細胞增殖量約23.9%,聯(lián)合給藥組CD8+T細胞增殖量約20.2%.黃連素的單獨給藥對CD8+T細胞的增殖無明顯影響,Pam3CSK4單獨給藥可以明顯促進CD8+T細胞的增殖(p<0.05),藥物聯(lián)合使用對CD8+T細胞增殖的促進水平稍大于黃連素單獨使用4.1%,相較于Pam3CSK4組對其的影響反而有所下降,這是否與黃連素的免疫調(diào)節(jié)能力相關(guān),其中原因尚需進一步探索.
圖6 CD8+ T淋巴細胞的增殖
B淋巴細胞的增殖情況如圖7所示,結(jié)果顯示,未與DC細胞共培養(yǎng)的CD19+B淋巴細胞幾乎沒有增殖,與DC細胞共培養(yǎng)的空白組B淋巴細胞增值率為2.28%,共培養(yǎng)后生理鹽水組B細胞增殖量約6.13%,黃連素組B細胞增殖量約11.3%,Pam3CSK4組B細胞增殖量約20.1%,聯(lián)合給藥組B細胞增殖量約20.6%.結(jié)果可以看出, Pam3CSK4組較聯(lián)合給藥組幾乎沒有差別,都可以很大程度促進B細胞的增殖;盡管p>0.05,從圖7上看黃連素的單獨給藥對B細胞的增殖也有明顯程度的促進.但兩種藥物共同作用,對促進B細胞的增殖并未產(chǎn)生聯(lián)合放大的作用.
圖7 B淋巴細胞的增殖
Pam3CSK4已經(jīng)顯示出其通過提前干預(yù)的方式來激動機體免疫系統(tǒng)對抗耐藥型金葡菌感染的潛力[3-4].黃連和黃連素在多種中藥的對比中也表現(xiàn)出比較顯著的對MRSA的殺菌和抑菌能力[9,13].本研究考察了Pam3CSK4和黃連素單獨和聯(lián)合使用時小鼠對抗MRSA感染的情況和效果.從提高小鼠生存率,增強小鼠對MRSA清除率,影響免疫球蛋白的分泌水平和T、B淋巴細胞的增殖幾個方面綜合來看,聯(lián)合給藥較兩種藥物單獨給藥對小鼠抵抗MRSA感染的保護作用確實產(chǎn)生了一定的放大效應(yīng).對于聯(lián)合給藥組而言,除對CD8+T細胞以外,在各方面對小鼠都具有的顯著性影響.單獨給藥Pam3CSK4效果遜于聯(lián)合給藥,但相較于單獨給藥黃連素對小鼠的保護作用更加明顯.對于單獨使用黃連素而言,盡管大部分實驗結(jié)果統(tǒng)計學(xué)計算中并沒有明顯差異,但是各個部分的實驗數(shù)據(jù)相互呼應(yīng),生存率的提升,載菌量的降低,T、B細胞增殖的促進作用,表明黃連素的在抗MRSA感染中的使用依舊有意義.兩者結(jié)合使用則明顯增強了小鼠的抵抗MRSA的能力.因此聯(lián)合給藥,從抗菌與免疫調(diào)節(jié)兩方面同時出發(fā)來對抗MRSA感染是有意義的.在機體對抗細菌攻擊時,免疫系統(tǒng)被調(diào)動起來發(fā)揮其作用,然而金葡菌自身擁有多種免疫逃避機制可以抵抗機體免疫系統(tǒng)的作用,常常使得機體無法有效與之對抗[14].研究從體液免疫和細胞免疫兩方面分析了部分Pam3CSK4和黃連素對機體免疫的影響.有研究發(fā)現(xiàn),在體外用Pam3CSK4處理B細胞,相較于細菌的脂多糖(lipopolysaccharide, LPS)來說,更可以增加B細胞分泌的IgM和IgG2a、IgG2b的水平,但是幾乎不能促進在IgG家族中含量最高的IgG1的分泌[15].對比本研究中Pam3CSK4對機體分泌特異性IgG和總IgM的影響,結(jié)果并無矛盾,在小鼠受到MRSA攻擊后,Pam3CSK4會降低小鼠對MRSA的特異性IgG分泌水平但是會增加總IgM的分泌.研究還發(fā)現(xiàn)Pam3CSK4的使用可以促進對CD4+和CD8+T細胞以及B細胞的在體外的二次增殖,同時還驗證了黃連素也具有一定的免疫調(diào)節(jié)作用,黃連素的使用使小鼠B細胞在體外的二次增殖有一定量的增加,CD4+T細胞在體外的二次增殖也有輕度的增長,兩者聯(lián)合使用時,對CD4+T細胞的促進作用得到了進一步加強,同時黃連素還可能在聯(lián)合給藥時對CD8+T細胞的增殖發(fā)揮了抑制作用.可以推測不論是聯(lián)合給藥還是兩種藥物單獨使用,均對小鼠具產(chǎn)生了一定的免疫調(diào)節(jié)作用影響,對小鼠的獲得性免疫也可能具有積極的意義.機體應(yīng)對金葡菌的感染時常常發(fā)生過度免疫反應(yīng),其造成的二次打擊對自身傷害很大.因此在對抗金葡菌感染時,不僅要考慮對金葡菌的清除和免疫系統(tǒng)的激活,同樣也要考慮免疫反應(yīng)的調(diào)節(jié)避免二次打擊.CD8+T細胞作為毒性T細胞在機體發(fā)生二次打擊時處于高水平狀態(tài),對機體產(chǎn)生負(fù)面的影響,聯(lián)合用藥時CD8+T細胞在增殖實驗中水平的下降,對于降低機體在MRSA感染時的過度免疫反應(yīng)有也著積極意義.金黃色葡萄球菌的持續(xù)傳播與增長已逐漸成為一個全球性危機,耐藥性問題日趨嚴(yán)重,甚至發(fā)現(xiàn)了耐萬古霉素的金葡菌,尋找抗生素的替代應(yīng)對方法意義非凡.黃連素作為一種抗菌物質(zhì),它可以抑制金葡菌的生物膜,進而對抗耐藥性的產(chǎn)生,免疫激動劑的使用也避免了細菌的耐藥性問題,對這兩種藥物聯(lián)合抗MRSA的研究,也是提出一種對抗金葡菌感染的新思路[9].
綜上所述,為應(yīng)對金葡菌日趨嚴(yán)峻的耐藥性問題,采用免疫激動劑Pam3CSK4和黃連素的聯(lián)用可能會是一種有潛力的對抗和預(yù)防金葡菌感染的方法.TLR2作為一種膜相關(guān)的模式識別受體,Pam3CSK4將其激活后通過抗原提呈細胞來調(diào)動機體的細胞免疫和體液免疫反應(yīng);黃連素殺菌抑菌,效果互為補充,一定程度上彌補在對抗金葡菌時藥效不足的尷尬,還可以對抗細菌的耐藥性,同時與Pam3CSK4各自發(fā)揮免疫調(diào)節(jié)的作用,降低機體的過度免疫反應(yīng)造成的傷害.這種免疫激動劑與中藥成分相結(jié)合的使用,一方面可以作為預(yù)防性對抗MRSA感染風(fēng)險的手段,一方面可能也有用于治療MRSA感染的潛力.