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        大鼠BMSCs經(jīng)同種異體軟骨細(xì)胞體外非接觸共培養(yǎng)誘導(dǎo)成軟骨組織

        2022-08-09 14:13:20江祖炘汪春秀王躍
        中國(guó)老年學(xué)雜志 2022年15期
        關(guān)鍵詞:支架

        江祖炘 汪春秀 王躍

        (1宜賓市第二人民醫(yī)院 四川大學(xué)華西醫(yī)院宜賓醫(yī)院,四川 宜賓 644000;2四川省人民醫(yī)院)

        隨著中國(guó)進(jìn)入老齡化社會(huì),關(guān)節(jié)軟骨損傷的患者越來(lái)越多,特別是老年骨關(guān)節(jié)炎患者,關(guān)節(jié)軟骨由于解剖原因自身無(wú)血管、淋巴組織,缺乏必要的營(yíng)養(yǎng)供給,且成熟的軟骨細(xì)胞再分化增殖能力差,所以一旦損傷后自我修復(fù)困難,進(jìn)而可發(fā)展為骨關(guān)節(jié)炎,嚴(yán)重影響日常生活〔1,2〕。近年新興的軟骨組織工程技術(shù),提供了一種解決傳統(tǒng)關(guān)節(jié)軟骨修復(fù)方法取材不足、增加創(chuàng)傷、遠(yuǎn)期效果不佳等問(wèn)題的方法〔3,4〕。本研究旨在探討骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(BMSCs)復(fù)合改良纖維蛋白凝膠和軟骨細(xì)胞體外非接觸共培養(yǎng)向軟骨組織分化,獲取優(yōu)秀的種子細(xì)胞,同時(shí)可注射微創(chuàng)下修復(fù)關(guān)節(jié)軟骨缺損的可能方法。

        1 材料與方法

        1.1主要試劑及方法 清潔級(jí)3~5 d SD大鼠乳鼠4只(四川大學(xué)華西醫(yī)院動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心);L-DMEM培養(yǎng)基(GIBCO公司);胎牛血清(FBS,HyClone公司);胰蛋白酶(Trypsin,GIBCO公司);Ⅱ型膠原酶(GIBCO公司);兔抗大鼠Ⅱ型膠原單克隆抗體(武漢博士德生物工程公司);逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、cDNA 試劑盒、瓊脂糖凝膠電泳試劑盒(DNA Marker)、綠如藍(lán)低毒核酸(DNAgreen)染料、凝膠加樣緩沖液均購(gòu)自天根公司。

        1.2SD大鼠股骨BMSCs的獲取、培養(yǎng)、鑒定 取3~5 d SD大鼠乳鼠處死后,于超凈工作臺(tái)內(nèi),注射器吸取0.5 ml L-DMEM培養(yǎng)基用力沖洗股骨髓腔,將沖洗液反復(fù)吹散后轉(zhuǎn)移至25 cm2培養(yǎng)瓶中,置于37℃、5%CO2孵箱中培養(yǎng),傳代,鏡下觀察,取第3代(P3)BMSCs復(fù)合支架后行蘇木素-伊紅(HE)染色及甲苯胺藍(lán)染色。

        1.3SD大鼠膝關(guān)節(jié)軟骨細(xì)胞的獲取、培養(yǎng)、鑒定 取3~5 d SD大鼠乳鼠處死后,于超凈工作臺(tái)內(nèi),獲取股骨遠(yuǎn)端和脛骨近端關(guān)節(jié)軟骨,將剪碎的軟骨組織依次0.25%的胰蛋白酶及0.2%Ⅱ型膠原酶消化,離心后獲取軟骨細(xì)胞,將軟骨細(xì)胞接種于25 cm2培養(yǎng)瓶中培養(yǎng),置于37℃、5%CO2孵箱中培養(yǎng),傳代,鏡下觀察,取P1軟骨細(xì)胞復(fù)合支架后行Ⅱ型膠原免疫組化染色、HE染色及甲苯胺藍(lán)染色。

        1.4改良纖維蛋白凝膠支架-細(xì)胞復(fù)合物制備 將P3 BMSCs加入0.9% NaCl配制的含50 mg/L的纖維蛋白原溶液,并使細(xì)胞懸液濃度為2×106/ml。再配制凝血酶復(fù)合液:凝血酶(50 μ/ml)、抑肽酶(0.2 mg/ml)、氨甲環(huán)酸(20 mg/ml)、氯化鈣(40 mmol/L)。向24孔培養(yǎng)板中每孔先加入凝血酶復(fù)合液250 μl,再加入改良的纖維蛋白細(xì)胞懸液250 μl,然后放入37℃、CO2孵箱,3~5 min后,支架凝固成型。

        1.5實(shí)驗(yàn)分組 將制備的凝膠支架-細(xì)胞復(fù)合物置于Transwell共培養(yǎng)系統(tǒng)中的下室,P1軟骨細(xì)胞接種于Transwell共培養(yǎng)系統(tǒng)中的上室,BMSCs和軟骨細(xì)胞體外按細(xì)胞數(shù)比例2∶1非接觸共培養(yǎng)作為實(shí)驗(yàn)組(B組);分別用第1代(P1)軟骨細(xì)胞和P3 BMSCs按上述方法與改良纖維蛋白膠凝膠支架材料復(fù)合,分別體外培養(yǎng)作為陽(yáng)性對(duì)照(A)組和陰性對(duì)照(C)組,調(diào)整細(xì)胞數(shù)量,使3組細(xì)胞-支架復(fù)合體內(nèi)細(xì)胞總數(shù)相同。使用10%FBS 的L-DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng)。

        1.6樣本采集及成軟骨組織能力檢測(cè) 標(biāo)本大體觀察及重量比較、HE和甲苯胺藍(lán)染色、Ⅱ型膠原免疫組化染色。阿利新藍(lán)比色法檢測(cè)蛋白聚糖(GAG)含量,RT-PCR法半定量檢測(cè)Ⅱ型膠原mRNA表達(dá)檢測(cè)。

        1.7統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 采用SPSS19.0軟件行LSD-t檢驗(yàn)。

        2 結(jié) 果

        2.1BMSCs、軟骨細(xì)胞倒置相差顯微鏡觀察 原代BMSCs 48 h換液時(shí)見部分貼壁生長(zhǎng),呈不均勻狀菌落分布,部分細(xì)胞邊緣出現(xiàn)突起,長(zhǎng)短粗細(xì)不一,可見梭形狀、少量多角形細(xì)胞,傳代生長(zhǎng)過(guò)程中細(xì)胞形態(tài)逐步相同,胞質(zhì)內(nèi)顆粒增多(圖1)。原代軟骨細(xì)胞未貼壁時(shí)呈球形,約1 d后完全貼壁,傳代后5~6 h即可見貼壁生長(zhǎng),4 d左右即可完全長(zhǎng)滿培養(yǎng)瓶,細(xì)胞片狀增殖,可見典型軟骨細(xì)胞“蜂巢”樣改變(圖2)。

        2.23組重量比較分析 C組重量與A組、B組差異顯著(P<0.05)。見表1。

        2.3GAG含量測(cè)定 B組與A組GAG含量差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),C組GAG含量明顯低于A組和B組(P<0.05)。見表1。

        圖1 原代BMSCs培養(yǎng)2 d后鏡下觀察(×40)

        圖2 原代軟骨細(xì)胞4 d鏡下觀察(×40)

        2.43組標(biāo)本肉眼觀察 A組和B組肉眼觀察見標(biāo)本體積較大,形態(tài)相對(duì)飽滿圓潤(rùn),能維持凝膠支架合成時(shí)的形狀,標(biāo)本內(nèi)可見類似軟骨組織樣的膠凍狀半透明物質(zhì)沉積,韌性較好;C組標(biāo)本凝膠支架變形,部分分解,形狀不規(guī)則,韌性較差。見圖3。

        2.5各組HE和甲苯胺藍(lán)染色結(jié)果 A組和B組標(biāo)本中皆可見軟骨細(xì)胞分布,活性良好,且可見明顯的細(xì)胞外基質(zhì)環(huán)繞,染色后的細(xì)胞成典型的蜂巢樣結(jié)構(gòu),而C組標(biāo)本染色只能見到梭形的BMSCs細(xì)胞及少量的細(xì)胞外基質(zhì)。見圖4。

        表1 3組標(biāo)本重量、GAG含量及Ⅱ型膠原蛋白mRNA比較

        2.6標(biāo)本Ⅱ型膠原免疫組化染色結(jié)果 A組和B組標(biāo)本內(nèi)皆為典型的軟骨細(xì)胞染色后反應(yīng),胞核為藍(lán)色,部分顏色較深,余細(xì)胞及胞外組織有均勻分布的棕色顆粒。而C組可見細(xì)胞核染色外,余未見明顯染色物質(zhì)。見圖5。

        2.7標(biāo)本Ⅱ型膠原mRNA表達(dá)檢測(cè) A組和B組Ⅱ型膠原mRNA的表達(dá)無(wú)明顯差異(P>0.05),A組與B組均顯著高于C組(P<0.05),見表1、圖6。

        圖3 6 w各組肉眼觀察標(biāo)本形態(tài)

        圖4 各組6 w HE染色及甲苯胺藍(lán)染色(×400)

        圖5 各組6 w免疫組化染色(×400)

        圖6 目的基因PCR凝膠電泳

        3 討 論

        關(guān)節(jié)軟骨自身解剖結(jié)構(gòu)特異及成熟軟骨細(xì)胞再分化能力差,因而關(guān)節(jié)軟骨損傷后修復(fù)是一個(gè)極其復(fù)雜且困難的過(guò)程,目前自體軟骨移植技術(shù)在修復(fù)效果上較佳,但其自體軟骨來(lái)源有限,另外傳統(tǒng)的有創(chuàng)手術(shù)如微骨折也是一種方法,但增加創(chuàng)傷的同時(shí)遠(yuǎn)期修復(fù)效果也不理想〔3,4〕。組織工程技術(shù)的出現(xiàn)為組織的修復(fù)再生提供了一種新的可能〔5〕,組織工程中種子細(xì)胞的選擇及體外培養(yǎng)是目前需要攻克的難點(diǎn),也是目前研究的熱點(diǎn)。BMSCs因其取材容易,來(lái)源廣,有良好的多向分化潛能及優(yōu)秀的增殖能力使其成為組織工程中種子細(xì)胞的熱門“選手”,但存在體外定向誘導(dǎo)分化過(guò)程復(fù)雜,誘導(dǎo)生成的軟骨細(xì)胞表型不穩(wěn)定,軟骨組織質(zhì)量不佳等問(wèn)題〔6,7〕。同時(shí)自體軟骨細(xì)胞體外擴(kuò)增后再回植修復(fù)缺損軟骨已取得較好效果〔8〕,但其自體軟骨來(lái)源有限,限制了其進(jìn)一步的研究?;谏鲜鰡?wèn)題,本實(shí)驗(yàn)將少量的軟骨細(xì)胞與BMSCs體外共培養(yǎng)作為種子細(xì)胞,以希望優(yōu)勢(shì)互補(bǔ),克服單一種子細(xì)胞來(lái)源不足、易去分化、難于精確誘導(dǎo)等缺點(diǎn)。Liu等〔9〕將BMSCs注入股骨頭壞死關(guān)節(jié)軟骨缺損的動(dòng)物模型中在軟骨缺損部位檢測(cè)到有透明軟骨形成,這可能是由于關(guān)節(jié)軟骨組織能提供BMSCs向軟骨細(xì)胞方向分化的微環(huán)境〔10〕,且骨關(guān)節(jié)炎軟骨細(xì)胞較正常軟骨誘導(dǎo)BMSCs成軟骨分化能力弱〔11〕。Acharya等〔12〕研究表明BMSCs和軟骨細(xì)胞體外非接觸共培養(yǎng)后,一定比例的軟骨細(xì)胞可分泌類似成軟骨誘導(dǎo)培養(yǎng)基的細(xì)胞液,提供成軟骨誘導(dǎo)微環(huán)境,誘導(dǎo)BMSCs向軟骨細(xì)胞分化,并能形成類似新生軟骨組織。且軟骨細(xì)胞和干細(xì)胞隔離共培養(yǎng)較混合共培養(yǎng)有更多的蛋白聚糖的積累〔13〕。至于共培養(yǎng)細(xì)胞最好比例目前無(wú)一致結(jié)論〔14〕,謝鵬等〔15〕通過(guò)關(guān)節(jié)軟骨細(xì)胞和BMSCs按1∶2比例共培養(yǎng)后發(fā)現(xiàn)該比例能更好地表達(dá)Ⅰ型和Ⅱ型膠原蛋白基因,能更好維持軟骨細(xì)胞表型,故本實(shí)驗(yàn)采用關(guān)節(jié)軟骨細(xì)胞和BMSCs按1∶2比例非接觸共培養(yǎng)進(jìn)行研究。

        細(xì)胞復(fù)合支架后能很好地模擬體內(nèi)軟骨細(xì)胞三維的空間分布,更有利于軟骨細(xì)胞表型的維持,有利于軟骨細(xì)胞外基質(zhì)的分泌與分布〔16〕。種子細(xì)胞體外培養(yǎng)其支架的選擇也是組織工程中不可或缺的部分,所以本研究將BMSCs先與支架復(fù)合后,讓細(xì)胞分布在三維空間的支架中,再放入Transwell共培養(yǎng)系統(tǒng)與自體軟骨細(xì)胞共培養(yǎng),更好的模擬軟骨自身修復(fù)過(guò)程。黃亮節(jié)等〔17〕研究表明纖維蛋白凝膠支架內(nèi)的三維結(jié)構(gòu)對(duì)于干細(xì)胞的成軟骨分化的能力是優(yōu)于Pellet培養(yǎng)體系的,可能由于纖維蛋白凝膠的三維孔隙結(jié)構(gòu)更接近于正常的軟骨組織,細(xì)胞因子之間交互更充分〔18〕,同時(shí)纖維蛋白可釋放血小板生成因子及轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子(TGF)-β〔19〕,進(jìn)一步促進(jìn)軟骨組織的形成。Komárek等〔20〕將組織工程軟骨以纖維蛋白凝膠固定于軟骨下骨,修復(fù)關(guān)節(jié)軟骨缺損,92.3%獲得了滿意效果。但一般的纖維蛋白凝膠降解時(shí)間相對(duì)較快,不能較好地匹配軟骨細(xì)胞外基質(zhì)的形成速度,影響最終形成的軟骨組織。故本實(shí)驗(yàn)采用的改良纖維蛋白凝膠支架,其降解速度和新生軟骨形成速度基本匹配,從而形成的新生軟骨組織特性更接近正常軟骨組織〔21〕。同時(shí)該支架在形成階段為凝膠狀態(tài),可以通過(guò)關(guān)節(jié)鏡微創(chuàng)技術(shù)體外注入需要行軟骨修復(fù)的地方,為微創(chuàng)治療軟骨缺損提供了新的思路。

        本研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),A組和B組的標(biāo)本外觀形態(tài)維持較好,而C組隨著支架的分解不能維持較好形態(tài),且A組和B組標(biāo)本內(nèi)可看見類似軟骨組織樣的膠凍狀半透明物質(zhì)沉積,組織學(xué)切片染色同樣顯示A組和B組標(biāo)本中皆為軟骨形態(tài)樣細(xì)胞及軟骨組織特有的陷窩樣改變,其中值得注意的是B組標(biāo)本中未見到梭形的BMSCs,可能是實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞不僅通過(guò)共培養(yǎng)后成功被誘導(dǎo)形成軟骨細(xì)胞,原有的BMSCs全部消失〔22〕,同時(shí)也分泌了細(xì)胞外基質(zhì)維持了標(biāo)本形態(tài)。此外細(xì)胞外蛋白聚糖和Ⅱ型膠原蛋白的分泌對(duì)新生軟骨組織的形成亦十分重要。陳剛等〔23〕研究表明共培養(yǎng)組的Ⅱ型膠原表達(dá)及糖胺聚糖含量均優(yōu)于對(duì)照組。本研究結(jié)果說(shuō)明BMSCs復(fù)合支架與軟骨細(xì)胞共培養(yǎng)后能向軟骨細(xì)胞分化和分泌細(xì)胞外基質(zhì),同時(shí)可能誘導(dǎo)生成的軟骨細(xì)胞活性較分化成熟的軟骨細(xì)胞高。標(biāo)本Ⅱ型膠原蛋白免疫組化染色及RT-PCR測(cè)定Ⅱ型膠原mRNA的結(jié)果也與上述推斷吻合。

        綜上,將BMSCs和少量的軟骨細(xì)胞共培養(yǎng)后可以作為一種更為優(yōu)秀的組織工程種子細(xì)胞,且纖維蛋白凝膠支架的可塑性,為以后可注射式微創(chuàng)軟骨修復(fù)組織工程提供可能方法。不足之處,兩種細(xì)胞共培養(yǎng)的最優(yōu)比例、該方法的體內(nèi)研究及最終軟骨修復(fù)的效果還需進(jìn)一步研究。

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