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        響應(yīng)面分析法優(yōu)化藜麥花青素提取工藝

        2022-08-01 06:01:56張文剛蘭永麗楊希娟
        青海大學(xué)學(xué)報(bào) 2022年4期
        關(guān)鍵詞:花青素磷酸溶劑

        張文剛,蘭永麗,黨 斌,張 杰,楊希娟

        (青海大學(xué)農(nóng)林科學(xué)院,青海省青藏高原農(nóng)產(chǎn)品加工重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,青藏高原種質(zhì)資源研究與利用實(shí)驗(yàn)室,省部共建三江源生態(tài)與高原農(nóng)牧業(yè)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,青海大學(xué),青海 西寧 810016)

        藜麥(ChenopodiumquinoaWilld.)為一年生雙子葉“假谷物”,亦稱南美藜、奎奴亞藜、藜谷等,在我國(guó)山西、青海、西藏、甘肅、云南、浙江、吉林等地均有分布[1]。藜麥富含蛋白質(zhì)、不飽和脂肪酸、膳食纖維、礦物質(zhì)、維生素、皂苷和多酚等成分,可滿足人體基本的營(yíng)養(yǎng)需求,并在預(yù)防癌癥、心血管疾病、炎癥等方面具有突出優(yōu)勢(shì),被國(guó)際營(yíng)養(yǎng)學(xué)家稱為“超級(jí)谷物”[2]。鑒于其食用和藥用價(jià)值,藜麥活性成分的分離純化及功能特性研究、相關(guān)食品開發(fā)引起了國(guó)內(nèi)外學(xué)者的廣泛關(guān)注[3]?;ㄇ嗨?Anthocyanidins)屬于黃酮醇類化合物,色澤鮮亮,無特殊氣味,食用安全,具有清除自由基、護(hù)肝、降血脂、抗突變等特點(diǎn),是谷物一類重要的天然抗氧化物質(zhì)[4]。藜麥有紅、白、黑等不同粒色,而花青素可能是除甜菜素外賦予籽粒顏色的關(guān)鍵化合物,掌握彩色藜麥花青素的提取與利用對(duì)探究藜麥的保健功能具有重要意義[5]?;ㄇ嗨氐奶崛》椒ㄝ^多,包括溶劑萃取法、酶水解法、樹脂法、超聲萃取法和微波法等[6-8]。其中溶劑萃取法是提取花青素的傳統(tǒng)方法,常選用甲醇、乙醇、石油醚、乙酸乙酯等作為有機(jī)溶劑,鹽酸、磷酸、醋酸、檸檬酸等作為酸化劑。該方法操作簡(jiǎn)單,萃取效率和純度較高,在花青素富集中應(yīng)用廣泛[9-11]。目前,有關(guān)不同粒色藜麥花青素分離提取的研究較少。因此,本研究以青白藜1號(hào)(白藜麥)、青藜2號(hào)(黑藜麥)和貢扎4號(hào)(紅藜麥)為試驗(yàn)材料,采用Box-Behnken設(shè)計(jì)和響應(yīng)面分析法探討溶劑體系、提取參數(shù)等對(duì)不同粒色藜麥花青素提取的影響,為藜麥花青素的制備和開發(fā)提供理論依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 試驗(yàn)材料

        青白藜1號(hào)(白藜麥)、青藜2號(hào)(黑藜麥)和貢扎4號(hào)(紅藜麥)由青海大學(xué)農(nóng)林科學(xué)院作物所提供;矢車菊素-3-O-葡萄糖苷標(biāo)準(zhǔn)品(美國(guó)Sigma公司);醋酸鈉、醋酸、氯化鉀、鹽酸、磷酸、檸檬酸、乳酸、硫酸、乙酸、甲醇、無水乙醇、丙酮等(天津科密歐試劑公司)。

        1.2 試驗(yàn)儀器與設(shè)備

        FW200高速中藥粉碎機(jī)(天津華鑫儀器廠);N4S型紫外可見分光光度計(jì)(上海儀電分析儀器有限公司);TGL-20M型高速冷凍離心機(jī)(湘儀離心機(jī)儀器有限公司);PHS-3C型pH計(jì)(上海雷磁儀器廠);SHA-C型恒溫振蕩器(國(guó)華電器有限公司)。

        1.3 試驗(yàn)方法

        1.3.1 花青素的提取 藜麥籽粒除雜、清洗后45 ℃烘干,粉碎過60目篩。稱取1.000 g藜麥粉置于50 mL離心管,加入酸化乙醇,混合均勻后在一定溫度下浸提,12 000 r/min、4 ℃ 離心10 min,收集上清液。

        1.3.2 單因素試驗(yàn) 以花青素提取量為指標(biāo),探討溶劑(水、60%甲醇、60%乙醇、60%丙酮,V/V)、溶劑體積分?jǐn)?shù)(20%、30%、40%、50%、60%、70%、80%)、酸化劑(鹽酸、磷酸、檸檬酸、乳酸、硫酸、乙酸,4 mol/L)、pH(3.0、4.0、5.0、6.0、7.0)、料液比(1∶2、1∶4、1∶6、1∶9、1∶12、1∶15、1∶18、1∶21、1∶24 g/mL)、浸提溫度(20、30、40、50、60、70、80 ℃)及浸提時(shí)間(20、40、60、90、120、150、180 min)對(duì)提取藜麥花青素的影響。各因素固定條件:60%乙醇,鹽酸,pH 4.0,料液比1∶4 g/mL、浸提溫度50 ℃,浸提時(shí)間60 min。

        1.3.3 響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì) 在單因素試驗(yàn)基礎(chǔ)上,以藜麥花青素提取量為響應(yīng)值,選擇料液比、浸提溫度、浸提時(shí)間為因素,采用Design-Expert 11軟件進(jìn)行Box-Behnken三因素三水平響應(yīng)面設(shè)計(jì)(表1)。

        表1 響應(yīng)面試驗(yàn)因素與水平設(shè)計(jì)Tab.1 Design of factors and levels of response surface test

        1.3.4 藜麥花青素含量的測(cè)定 利用雙波長(zhǎng)pH示差法[12]測(cè)定花青素含量。取1 mL花青素提取液,加入9 mL 0.4 mol/L、pH 4.5的NaAc-HAc緩沖液或0.25 mol/L、pH 1.0的KCl-HCl緩沖液,混合均勻后倒入1 mL比色皿,以蒸餾水替代樣品作空白對(duì)照,分別在510 nm和700 nm下測(cè)定光密度(optical density,OD)。

        花青素提取量(μg/g)=A×Mw×DF×V/(ε×1×W)

        式中:A=(OD510 nm,pH 1.0-OD700 nm,pH1.0)-(OD510 nm,pH 4.5-OD700 nm,pH 4.5),Mw為矢車菊素-3-O-葡萄糖苷摩爾質(zhì)量 449.2 g/mol,DF為待測(cè)液稀釋倍數(shù),V是提取液體積(mL),ε為矢車菊素-3-O-葡萄糖苷摩爾消光系數(shù)26 900 L/(mol·cm),W為藜麥粉干重(g)。

        1.3.5 紅外光譜分析 采用KBr壓片法[10]測(cè)試藜麥花青素紅外光譜。取藜麥花青素提取物粉末與干燥KBr混合均勻,壓片后在4 000~400 cm-1范圍內(nèi)、分辨率4 cm-1條件下掃描紅外光譜。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 單因素試驗(yàn)

        2.1.1 提取溶劑的影響 由圖1a可知,藜麥粒色不同,所適宜的酸化劑也有差異。白藜麥提取量為乙酸>硫酸>磷酸,黑藜麥提取量為磷酸>檸檬酸>乳酸,紅藜麥提取量為檸檬酸>乳酸>磷酸。為便于操作,選擇對(duì)三種粒色藜麥花青素提取量均較高的磷酸作為優(yōu)選酸化劑。由圖1b看出,不同溶劑對(duì)藜麥花青素提取效果均表現(xiàn)為乙醇>甲醇>丙酮>水,乙醇顯著高于其他溶劑(P<0.05)。因此,選擇乙醇溶液作為最適提取溶劑。

        圖1 提取溶劑對(duì)花青素提取量的影響Fig.1 Effects of extraction solvent on anthocyanins extraction

        2.1.2 不同提取條件的影響 由圖2a可知,藜麥花青素提取量隨乙醇體積分?jǐn)?shù)的增大先增大后減小,乙醇體積分?jǐn)?shù)為70%時(shí)藜麥花青素提取量達(dá)到最大值。圖2b表明,藜麥花青素提取量隨著溶劑pH的升高而降低,pH為3.0時(shí)花青素提取量最大。圖2c表明,藜麥花青素提取量隨料液比的減小先增大后減小,料液比為1∶6 g/mL時(shí)效果最佳。圖2d表明,藜麥花青素提取量隨溫度的升高先增大后減小,50 ℃時(shí)提取量最大。圖2e表明,藜麥花青素提取量隨浸提時(shí)間的延長(zhǎng)先增大后減小,浸提時(shí)間為120 min時(shí)提取量最大。

        圖2 提取參數(shù)對(duì)花青素提取量的影響Fig.2 Effects of extraction parameters on anthocyanins extraction

        2.2 響應(yīng)面分析

        2.2.1 試驗(yàn)結(jié)果 響應(yīng)面試驗(yàn)結(jié)果見表2。經(jīng)二次多項(xiàng)式回歸擬合并在α=0.05水平剔除不顯著項(xiàng),得出藜麥花青素提取量與各編碼因素間的方程:

        表2 響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果Tab.2 Design and results of response surface test

        白藜麥:YW=49.61-1.51X2+2.93X1X2-3.00X2X3-4.82X12-2.41X22-3.92X32

        黑藜麥:YB=51.82+1.26X1-2.03X2+1.63X3-2.08X1X3-2.75X12-3.72X22-3.27X32

        紅藜麥:YR=49.73+1.76X1-1.05X2+1.51X2X3-3.98X12-3.06X22-1.71X32

        由表3可知,不同粒色藜麥花青素提取擬合模型的P<0.01,表明建立的模型極顯著。失擬項(xiàng)均不顯著(P>0.05),方程擬合度高。模型R2為0.954 1~0.964 4,說明響應(yīng)值的95.41%~96.44%來自所選變量。RAdj2為0.871 5~0.900 3,說明模型可解釋87.15%~90.03%的響應(yīng)值變化。C.V.值為2.50%~3.46%,表明試驗(yàn)受外界因素影響較小。根據(jù)一次項(xiàng)P值可知,各因素影響主次順序具體為X2>X3>X1(白藜麥)、X2>X3>X1(黑藜麥)、X1>X2>X3(紅藜麥)。

        表3 二次模型方差分析Tab.3 Variance analysis of quadratic model

        表3(續(xù))

        2.2.2 交互作用分析 由圖3可知,藜麥花青素提取量隨料液比、浸提溫度和時(shí)間的增大先增大后減小,效應(yīng)曲面均較陡。由圖3A、圖3B、圖3C可知,溫度對(duì)效應(yīng)曲面的影響更明顯,依次為浸提溫度>浸提時(shí)間>料液比,與表3結(jié)果一致。由圖3D、圖3E、圖3F浸提溫度對(duì)效應(yīng)曲面彎曲程度的影響最大,控制好浸提溫度對(duì)黑藜麥花青素提取較為關(guān)鍵。從圖3G、圖3H、圖3I看出,料液比對(duì)紅藜麥花青素提取量的影響最大,表現(xiàn)為圖3G和圖3H曲面陡峭,圖3C較為平緩,各因素影響順序?yàn)榱弦罕?浸提溫度>浸提時(shí)間。此外,由圖3A~圖3I的等高線形狀和密集度可知,白藜麥X1X2交互作用明顯,X2X3次之;圖E中橢圓明顯,表明黑藜麥X1X3交互作用顯著;紅藜麥X2X3交互作用顯著。

        圖3 各因素交互作用對(duì)三種粒色藜麥花青素提取量的影響Fig.3 Effects of interaction of various factors on anthocyanins extraction from three colors of Chenopodium quinoa Willd.

        2.2.3 試驗(yàn)驗(yàn)證 由回歸方程預(yù)測(cè)的白藜麥、黑藜麥、紅藜麥花青素最佳提取參數(shù)分別為料液比6.25∶1、6.69∶1、7.11∶1 mL/g,浸提溫度46.10、47.40、47.66 ℃,浸提時(shí)間90.78、98.92、86.29 min,預(yù)測(cè)提取量49.88、52.34、49.47 μg/g。為便于操作,將各參數(shù)修正為料液比6.3∶1、6.7∶1、7.0∶1 g/mL,浸提溫度49.0、47.0、48.0 ℃,提取時(shí)間90、100、85 min,得到3種粒色藜麥花青素平均提取量為49.15、52.27、49.06 μg/g,與響應(yīng)預(yù)測(cè)值基本接近,表明建立的模型可行。

        2.3 紅外光譜分析

        由圖4可知,藜麥花青素提取物的紅外光譜特征峰基本一致,集中在800~500 cm-1指紋區(qū)和1 700~1 000 cm-1高頻區(qū)。3 376 cm-1的強(qiáng)吸收由花青素分子中締合態(tài)酚羥基產(chǎn)生,2 926 cm-1處為飽和—C—H的反對(duì)稱伸縮,對(duì)應(yīng)烷基—CH3,而2 855 cm-1處是飽和—C—H的對(duì)稱伸縮,對(duì)應(yīng)結(jié)構(gòu)為—CH2;1 680~1 450 cm-1是芳香環(huán)的飽和骨架振動(dòng),1 728 cm-1的吸收峰由C=O 引起,1 300~1 000 cm-1屬于醇、酚等C—O的伸縮振動(dòng),其中1 055 cm-1和1 236 cm-1可能是花青素分子中C—O—C的伸縮振動(dòng)980~650 cm-1的吸收峰由O—H的面內(nèi)外彎曲振動(dòng)引起[10,13]。綜上所述,藜麥花青素是具有醇羥基和酚羥基的芳環(huán)結(jié)構(gòu)化合物。

        圖4 藜麥花青素提取物的紅外光譜圖Fig.4 Infrared spectrogram of anthocyanins extract from Chenopodium quinoa Willd.

        3 討論與結(jié)論

        研究藜麥花青素的提取可為藜麥資源的功能化開發(fā)與利用提供一定的理論依據(jù),前人主要對(duì)藜麥中甜菜素類色素成分做了初步探究。Escribano等[14]發(fā)現(xiàn)4種甜菜黃素是橙黃色藜麥籽粒顏色形成的重要原因。Laqui-Vilca等[15]優(yōu)化了藜麥殼中甜菜花青素和甜菜黃素的超聲輔助提取工藝。除甜菜素外,花青素也是賦予籽粒顏色特征的關(guān)鍵成分,但目前有關(guān)藜麥花青素的提取和分析鮮有研究。因此,本文以青白藜1號(hào)(白藜麥)、青藜2號(hào)(黑藜麥)和貢扎4號(hào)(紅藜麥)為試驗(yàn)材料,采用Box-Behnken設(shè)計(jì)和響應(yīng)面分析探討溶劑體系、提取參數(shù)等對(duì)藜麥花青素提取影響,并得到如下結(jié)論:

        (1)三種不同粒色藜麥中,黑藜麥花青素更為豐富。影響白藜麥和黑藜麥花青素提取量的因素主次順序?yàn)榻釡囟取⒔釙r(shí)間和料液比,而影響紅藜麥花青素提取量的因素主次順序?yàn)榱弦罕?、浸提溫度和浸提時(shí)間。

        (2)優(yōu)化得到的藜麥花青素提取條件為磷酸作酸化劑、70% pH 3.0的乙醇作溶劑、料液比6.3~7.0 g/mL、浸提溫度47~49 ℃、浸提時(shí)間85~100 min,花青素提取量達(dá)到49.06~52.27 μg/g,與模型預(yù)測(cè)結(jié)果較為一致。

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