景繼月，許夢圓，田永濤，田海龍，王文蜀*

(1.民族地區(qū)生態(tài)環(huán)境國家民委重點實驗室(中央民族大學)，北京 100081；2.中央民族大學 生命與環(huán)境科學學院，北京 100081)

西番蓮屬(PassifloraLinn.)起源于巴西，果實大多香氣濃郁、酸甜可口，富含維生素、氨基酸和礦物質等營養(yǎng)成分[1-3]，受到國內外消費者的喜愛。我國于1901年從日本引入紫皮百香果(PassifloraedulisSims)，現(xiàn)在南方等地廣泛種植[4-5]。以百香果為原料的食品日益豐富，將其作為調味品添加到飲料、甜點以及菜品中可賦予相關產(chǎn)品更多味覺感受，深受大眾尤其是年輕人的青睞，至今我國的相關專利已超過300項。百香果皮含有多糖、生物堿、酚類等活性物質[6-7]，其中的黃酮被報道具有抗炎、抗菌、降血糖、保護神經(jīng)、抗焦慮與鎮(zhèn)靜等生理功能[8-11]，并被證實具有清除DPPH自由基、羥基自由基、超氧陰離子自由基和亞硝酸根離子的抗氧化能力[12-13]，顯示了被開發(fā)為天然抗氧化劑的潛力。

超聲輔助提取法與其他方法相比有適應性廣、溶劑消耗量少等優(yōu)點，但其提取活性物質會受到多種因素影響[14-15]。因此采用響應面實驗設計，全面考察因素與因素之間的相互關系，通過浸膏得率、總黃酮含量和抗氧化能力3個響應值，優(yōu)化百香果皮中總黃酮提取工藝，并評價提取物的抗氧化活性，為百香果開發(fā)為功能性食品以及調味品等相關產(chǎn)業(yè)綠色發(fā)展提供科學數(shù)據(jù)。

1 材料與方法

1.1 原料與試劑

紫皮百香果：廣西壯族自治區(qū)北流市；無水乙醇、無水甲醇、冰醋酸、醋酸鈉、鹽酸(分析純)、過硫酸鉀、氯化鐵、硫酸亞鐵：北京化工廠；無水三氯化鋁：北京偶合科技有限公司；Trolox(6-Hydroxy-2,5,7,8-tetramethylchromane-2-

carboxylic acid)、ABTS[2,2'-azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid)]、BHT(2,6-Di-tert-butyl-4-methylphenol)：上海麥克林公司；蘆丁、TPTZ(tripyridyl triazine)：上海源葉生物科技有限公司；DPPH(1,1-Diphenyl-2-picrylhydrazyl)：日本東京化成工業(yè)株式會社。

1.2 儀器與設備

BT224S電子分析天平 北京賽多利斯儀器系統(tǒng)有限公司；Espire酶標儀 美國PerkinElmer公司；V750紫外分光光度計 日本JASCO株式會社；J-HH-6A精密數(shù)顯恒溫水浴鍋 上海勝衛(wèi)電子科技有限公司；RE-2000旋轉蒸發(fā)器 上海洪旋實驗儀器有限公司；MZX-D循環(huán)水式真空泵 北京精銳澤祥實驗儀器有限公司。

1.3 方法

1.3.1 百香果皮黃酮提取

將完整的百香果的果汁與果皮分開。果皮用蒸餾水洗凈，切成1 cm3大小的方塊，置于通風、干燥處陰干，備用。稱取4 g干燥的百香果皮置于圓底燒瓶中，在對應液料比、乙醇百分含量和超聲時間下，充分振搖，放入水浴鍋中進行充分冷凝回流，對應提取時間，至黃酮類物質基本提取完全，之后用真空泵抽濾，收集濾液，40 ℃真空濃縮直至無乙醇味。分液漏斗過濾，吹干，得浸膏，并稱取質量。按照下列公式計算浸膏得率：

浸膏得率(%)=浸膏質量/干燥百香果皮×100%。

1.3.2 百香果皮總黃酮含量測定

百香果總黃酮含量測定采用AlCl3比色法，70%乙醇配制樣品和AlCl3溶液，在10 mL具塞比色管中放入0.8 mL 0.2 mol/L AlCl3溶液與不同濃度蘆丁標準品，超純水定容，反應25 min，將蘆丁換成純水作為空白對照。以蘆丁標準溶液濃度為橫坐標，吸光度值為縱坐標繪制標準曲線：y=0.0481x+0.0965，R2=0.9998(n=3)。實驗表明，在0.8～4.8 μg/mL范圍內，蘆丁濃度與吸光值有良好的線性關系。將樣品所得吸光度值代入標準曲線，計算其總黃酮含量，所得結果用蘆丁當量(rutin equivalent)表示，即為 mg RT/g DW。

1.3.3 百香果皮抗氧化活性測定

1.3.3.1 清除DPPH自由基能力測定

采用Kivrak[16]的方法并作適當調整。用甲醇溶解DPPH，并配制成0.1 mmol/L的工作液，在96孔板中加入100 μL工作液與100 μL不同濃度的待測樣品。陽性對照 BHT 代替待測樣品，同樣按上述方法進行測試，空白對照僅甲醇與工作液，平行3次，充分混合后，避光反應30 min，于517 nm處測定吸光度值。所得清除DPPH自由基能力計算公式為：

DPPH自由基清除率(%)=[1-(A1-A2)/A0]×

100%。

式中： A0為空白對照的吸光度值；A1為樣品與DPPH溶液混合后混合液的吸光度值；A2為樣品溶液與甲醇混合后混合液的吸光度值，通過SPSS計算半數(shù)清除率(half maximal scavenging concentration)，所得結果用SC50(mg/mL)表示。

1.3.3.2 清除ABTS自由基能力測定

實驗方法采用Li等[17]的方法并作適當調整，將 0.2 mL 7.4 mmol/L ABTS溶液與0.2 mL 2.6 mmol/L K2S2O8溶液混合，置于黑暗室溫條件下反應，混合液用無水甲醇稀釋，直至混合液在紫外分光光度計下測得吸光度為0.70±0.02。在96孔板中加入180 μL混合液與20 μL不同濃度的Trolox標準液，于734 nm處測定吸光度值，得標準曲線。以Trolox 標準溶液濃度為橫坐標，吸光度值為縱坐標繪制標準曲線，將樣品所得吸光度值代入標準曲線，計算其抗氧化能力，所得結果用Trolox當量表示，即為mmol/L TE/g。

1.3.3.3 鐵離子還原能力測定

本實驗按照Benzie等[18]的方法并進行適當調整。超純水配制20 mmol/L FeCl3·6H2O溶液，40 mmol/L 鹽酸配制得到10 mmol/L TPTZ溶液，用醋酸鈉、TPTZ溶液和FeCl3·6H2O溶液按照10∶1∶1的比例充分混合后得到FRAP工作液。使用超純水和硫酸亞鐵配制得到100 mmol/L FeSO4·7H2O母液，在96孔板中加入180 μL FRAP工作液與20 μL不同濃度的FeSO4·7H2O 溶液充分混合均勻后，于593 nm處測定吸光度值，樣品的測試方法與上述方法一致。以 Fe2+濃度為橫坐標，吸光度值為縱坐標繪制標準曲線。將樣品所得吸光度值代入標準曲線，計算其還原能力，所得結果用Fe2+當量表示，即為mmol/L Fe2+/g。

1.4 實驗設計

1.4.1 單因素實驗設計

根據(jù)所查文獻，選用液料比、乙醇百分含量、超聲時間和提取時間4個因素設計單因素實驗，液料比分別設置為20∶1、30∶1、40∶1、50∶1、60∶1，乙醇百分含量分別設置為40%、50%、60%、70%、80%，超聲時間分別設置為10，15，20，25，30 min，提取時間分別設置為60，90，120，150，180 min，按照1.3.1步驟進行實驗，以浸膏得率作為考察指標。

1.4.2 響應面實驗設計

中心組合設計(CCD) 實驗通過兩兩因素的考察，使點線延伸到面，呈現(xiàn)出三維立體效果，直觀反映因素與因素之間的相互關系。根據(jù)CCD原理，以單因素實驗為基礎，選取液料比(A)、乙醇百分含量(B)、超聲時間(C)3個因素為自變量，而且在保證浸膏得率(R1)較高的同時，增加總黃酮含量(R2)與清除DPPH自由基能力(R3)共3個響應值，建立模型，篩選百香果皮黃酮最佳提取工藝，因素與水平設計見表1。

表1 響應面實驗因素與編碼表Table 1 Factors and codes of response surface experiment

1.5 數(shù)據(jù)處理與分析

采用Excel和Design Expert 8.0.5軟件對實驗數(shù)據(jù)進行分析，所有處理均進行3次重復實驗。

2 結果與討論

2.1 單因素實驗結果

2.1.1 液料比對浸膏得率的影響

圖1 液料比對百香果皮總黃酮浸膏得率的影響Fig.1 Effect of liquid-solid ratio on extraction yield of total flavonoids from P. edulis Sims peel

分別設置液料比為20∶1、30∶1、40∶1、50∶1、60∶1，固定乙醇濃度60%，超聲時間20 min，提取時間120 min，計算浸膏得率。由圖1可知，在一定范圍內，隨著液料比增加，浸膏得率也隨之增加。在液料比為50∶1時，浸膏得率達到最大值。上述現(xiàn)象的原因可能是在液料比為50∶1時，提取物已基本溶出，繼續(xù)增加溶劑的使用量會使較多其他化合物溶出，導致提取液總體黏度增加而抑制原有提取物與溶劑結合，減少其溶出，因此浸膏得率降低[19]。此外，溶劑用量較大時還會造成實驗條件控制成本增加，所以選擇50∶1作為最佳液料比。

2.1.2 乙醇百分含量對浸膏得率的影響

分別設置乙醇百分含量為40%、50%、60%、70%、80%，固定液料比40∶1，超聲時間20 min，提取時間120 min，計算浸膏得率，提取結果見圖2。

圖2 乙醇百分含量對百香果皮總黃酮浸膏得率的影響Fig.2 Effect of ethanol content on extraction yield of total flavonoids from P. edulis Sims peel

由圖2 可知，在實驗所選乙醇百分含量范圍內，隨著乙醇百分含量增加，浸膏得率總體呈先升高后降低的趨勢。這可能是因為乙醇百分含量較低時，百香果皮在溶劑中泡發(fā)，有利于黃酮溶出。當乙醇百分含量為60%時，浸膏得率達到最大值。根據(jù)相似相溶原理，隨著乙醇百分含量繼續(xù)增多，混合提取劑總極性降低，造成極性較大的黃酮難以溶出，最終導致黃酮提取率降低[20]，所以選擇60%作為最佳乙醇百分含量。

2.1.3 超聲時間對浸膏得率的影響

分別設置超聲時間為10，15，20，25，30 min，固定液料比40∶1，乙醇百分含量60%，提取時間120 min，計算黃酮浸膏得率，提取結果見圖3。

圖3 超聲時間對百香果皮總黃酮浸膏得率的影響Fig.3 Effect of ultrasonic time on extraction yield of total flavonoids from P. edulis Sims peel

由圖3可知，在10～25 min內，浸膏得率隨著超聲時間的延長而緩慢增加，這是由于時間較短時，提取物還沒有完全溶出，延長超聲時間有助于增強溶劑對植物基質的滲透，從而提高其得率。但當超過一定時間，可能由于超聲波較強的剪切作用，長時間作用下會破壞提取物分子結構，導致其降解轉化不再溶出，最終觀察到浸膏得率降低[21]，因此選擇25 min作為最佳超聲時間。

2.1.4 提取時間對浸膏得率的影響

分別設置提取時間為60，90，120，150，180 min，固定液料比40∶1，乙醇百分含量60%，超聲時間20 min，計算黃酮浸膏得率，提取結果見圖4。

圖4 提取時間對百香果總黃酮浸膏得率的影響Fig.4 Effect of extraction time on extraction yield of total flavonoids from P. edulis Sims peel

由圖4可知,提取時間對浸膏得率的影響較小。在90 min時，浸膏得率較高，當超過90 min后，浸膏得率降低，可能是由于提取時間過長，熱效應使部分提取物分解反而不再溶解于溶劑中，提取率下降[22]。綜合考慮能源成本，選擇90 min作為最佳提取時間。

2.2 百香果皮黃酮提取物響應面優(yōu)化

2.2.1 響應面結果與交互作用分析

在單因素實驗的基礎上，應用Design Expert 8.0.5軟件對數(shù)據(jù)進行分析，實驗設計與結果見表2。

表2 百香果皮總黃酮響應面分析實驗設計與結果Table 2 Experimental design and results of response surface analysis of total flavonoids from P. edulis Sims peel

通過分析20組實驗數(shù)據(jù)可知，浸膏得率、總黃酮含量和抗氧化能力三者之間無明顯線性關系，僅僅考察單一響應值是片面的。因此，通過考察多個響應值，篩選出最優(yōu)提取工藝，可制備出浸膏得率高、總黃酮含量高以及抗氧化能力良好的百香果皮黃酮提取物。

表3 響應面模型的二次多項回歸方程和統(tǒng)計參數(shù)Table 3 Quadratic polynomial regression equations and statistical parameters of response surface model

由表3可知，模型(R1)的p=0.0031<0.01且失擬項的p=0.8016>0.05，說明該模型極顯著并且模型失擬度不顯著，由此可見該模型可用來分析和預測各因素對百香果皮總黃酮浸膏得率的影響。由F值可判斷出3個因素中，超聲時間對浸膏得率的影響最大，其次是乙醇百分含量和液料比。對于兩兩因素的交互作用見圖5中a，當液料比最小(40∶1)，乙醇百分含量在63%～68%范圍內時，浸膏得率達到最大值。圖5中b顯示乙醇百分含量在60%～65%范圍內，超聲時間最長(30 min)時，浸膏得率達到最大值。圖5中c顯示在液料比最小(40∶1)、超聲時間最長(30 min)時，浸膏得率達到最大值。

由表3可知，模型(R2)的p=0.0128<0.05且失擬項的p=0.7584>0.05，說明該模型達到了顯著水平并且模型失擬度不顯著，該模型可用來分析和預測各因素對百香果皮黃酮含量的影響。由F值可判斷出3個因素的影響程度大小，乙醇百分含量對總黃酮含量的影響最大，其次是超聲時間和液料比。其中交互項AB在p<0.05水平上顯著，BC、AC項不顯著，表明僅液料比與乙醇百分含量的交互作用顯著。超聲時間(25 min)恒定，液料比和乙醇百分含量交互作用見圖6中a，在液料比最小(40∶1)，乙醇百分含量最大(70%)時，總黃酮含量達到最大值。

由表3可知，模型(R3)的p=0.0407<0.05且失擬項的p=0.8089>0.05，說明該模型達到了顯著水平并且模型失擬度不顯著，該模型可用來分析和預測各因素對百香果皮總黃酮清除DPPH自由基能力的影響。由F值可判斷出3個因素的影響程度大小，乙醇百分含量對清除DPPH自由基能力的影響最大，其次是超聲時間和液料比。其中交互項AB在p<0.05水平上顯著，BC、AC項不顯著。由于總黃酮含量與清除DPPH自由基能力存在一定的線性關系[23]，因而提取條件對清除DPPH自由基能力的影響與提取條件對總黃酮含量的影響有相似性。對于兩兩因素的交互作用見圖7中a，在較高的乙醇百分含量(70%)和較低的液料比時，SC50值最小即抗氧化能力最強。

圖5 三因素交互作用對浸膏得率的響應面圖Fig.5 Response surface diagrams of the interaction of three factors on the extraction yield

圖6 三因素交互作用對總黃酮含量的響應面圖Fig.6 Response surface diagrams of the interaction of three factors on the content of total flavonoids

圖7 三因素交互作用對清除DPPH自由基能力的響應面圖Fig.7 Response surface diagrams of the interaction of three factors on the DPPH free radical scavenging ability

2.2.2 響應面優(yōu)化驗證實驗

綜合響應值浸膏得率(R1)、總黃酮含量(R2)和清除DPPH自由基能力(R3)，得到百香果皮總黃酮最優(yōu)提取條件為液料比40∶1，乙醇百分含量67%，超聲時間30 min。在該條件下進行3次實驗驗證，取其平均值，得到總黃酮浸膏得率為12.58%，總黃酮含量為11.56 mg RT/g DW，清除DPPH自由基能力SC50值為0.19 mg/mL。驗證實驗響應值與理論響應值(R1 12.61%、R2 11.91 mg RT/g DW、R3 0.07 mg/mL)基本一致，表明回歸模型與實際情況擬合較好，可以有效反映各因素對百香果皮總黃酮提取的影響。因此，通過響應面法綜合優(yōu)化得到的最佳工藝條件的回歸模型符合實際，對今后黃酮提取工藝參數(shù)選擇具有一定指導意義。

2.3 百香果皮總黃酮抗氧化實驗結果與分析

采用DPPH自由基清除能力和ABTS自由基清除能力以及鐵離子還原能力3個實驗綜合評判響應面優(yōu)化后所得百香果皮總黃酮體外抗氧化能力。

表4 百香果皮總黃酮體外抗氧化活性Table 4 Antioxidant activity of total flavonoids from P. edulis Sims peel in vitro

由表4可知，百香果皮總黃酮對脂溶性DPPH自由基具有較好清除作用，半抑制率清除濃度(SC50)為(0.18±0.02) mg/mL。總黃酮也顯示了對水溶性ABTS自由基的清除能力((0.17±0.01) mmol/L TE/g)。在鐵離子還原能力實驗中，總黃酮顯示了抗氧化活性((2.35±0.03 ) mmol/L Fe2+/g)。由上述實驗數(shù)據(jù)可知，百香果皮總黃酮抗氧化活性良好，與合成抗氧化劑相比有制備過程簡易、毒副作用小的優(yōu)勢，可開發(fā)為食品天然抗氧化劑[24]。

3 結論

應用響應面法優(yōu)化百香果皮提取總黃酮的最優(yōu)工藝參數(shù)為:液料比40∶1，乙醇百分含量67%，超聲時間30 min。在此條件下總黃酮浸膏得率為12.58%，總黃酮含量為11.56 mg RT/g DW，清除DPPH自由基SC50值為0.19 mg/mL。本實驗建立的回歸模型有效可行，可用來預測百香果皮總黃酮的3個響應值。進一步抗氧化實驗結果顯示：總黃酮提取物具有較好的DPPH自由基清除能力、ABTS自由基清除能力和良好鐵離子還原能力。綜上，響應面法多指標優(yōu)化提取工藝，可高效制備抗氧化活性良好的百香果皮總黃酮。實驗結果為百香果皮開發(fā)為抗氧化能力良好的食品及調味品提供了基礎數(shù)據(jù)，有助于我國百香果資源經(jīng)濟效益、生態(tài)效益和社會效益的二次增值。