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        CRISPR/Cas9系統(tǒng)在基因編輯豬生產(chǎn)中的應(yīng)用

        2022-07-09 01:50:24于海穎路永強(qiáng)劉國世
        黑龍江動物繁殖 2022年1期

        于海穎,路永強(qiáng),張 魯,劉國世*

        (1.中國農(nóng)業(yè)大學(xué),北京 100193;2.北京市畜牧總站,北京 100107)

        基因編輯(gene editing or genome editing)是指通過生物技術(shù)手段對生物體的特定基因進(jìn)行精確改造,包括對目的基因進(jìn)行刪除、替換、插入單個(gè)核苷酸或某段DNA序列,以達(dá)到改變生物遺傳信息和性狀的目的。自2015年開始,基因編輯領(lǐng)域迎來高速發(fā)展時(shí)期,廣泛應(yīng)用于畜牧業(yè)生產(chǎn)、醫(yī)藥領(lǐng)域、環(huán)境保護(hù)等方面。目前,基因編輯系統(tǒng)主要有三類,其中包括鋅指核酸酶(Zin-finger nuclease,ZFN)、類轉(zhuǎn)錄激活因子核酸酶(transcription activator-like effector nuclease,TALEN)和成簇的規(guī)律間隔短回文重復(fù)序列(CRISPR)/Cas9。這些基因編輯技術(shù)的廣泛應(yīng)用,使動物基因定點(diǎn)修飾技術(shù)取得突破性進(jìn)展。

        CRISPR由一個(gè)可以“剪開”特定DNA序列的蛋白質(zhì)和一個(gè)可以定位基因的“GPS向?qū)А苯M成,通過單鏈向?qū)NA(single guide RNA,sgRNA)與靶標(biāo)互補(bǔ)配對,招募Cas9蛋白對基因組進(jìn)行切割[1-2]。CRISPR系統(tǒng)最初來自釀膿鏈球菌(Streptococcus pyogenes),即A群鏈球菌(group A Streptococcus,GAS)和嗜熱鏈球菌(Streptococcus thermophilus),本是原核生物用來標(biāo)記和抵御病毒入侵的一種免疫防御機(jī)制。作為第三代人工核酸內(nèi)切酶基因編輯技術(shù),CRISPR/Cas9系統(tǒng)因高效、便捷、適應(yīng)范圍廣泛,具備完全取代ZFN技術(shù)和TALEN技術(shù)的潛力[3]。自2013年首次將CRISPR/Cas9系統(tǒng)應(yīng)用于哺乳動物以來,基因編輯動植物在生物學(xué)研究、農(nóng)業(yè)育種、醫(yī)學(xué)研究、人源化器官生產(chǎn)和臨床疾病治療等多個(gè)領(lǐng)域展現(xiàn)出巨大的應(yīng)用價(jià)值[4-6]。

        豬作為一種重要的農(nóng)業(yè)經(jīng)濟(jì)動物,在解剖學(xué)、生理學(xué)、疾病發(fā)生機(jī)制、基因水平、蛋白質(zhì)功能乃至機(jī)體大小方面均與人類十分相似,是研究人類生命活動基本規(guī)律、重大疾病及新藥研發(fā)的理想模式動物之一[7-8]。同時(shí),隨著人們生活水平的提高,消費(fèi)者對豬肉的瘦肉率、肌內(nèi)脂肪、酸堿度和肉色等品質(zhì)性狀的要求逐步提高。為滿足市場和人們的需求,基因編輯成為潛在的突破性技術(shù)。文章對CRISPR/Cas9系統(tǒng)在豬遺傳育種、人類疾病模型建立和異種器官移植等方面進(jìn)行綜述,以期為我國畜牧業(yè)健康發(fā)展和生物醫(yī)藥研究提供參考。

        1 CRISPR/Cas9技術(shù)在豬育種中的應(yīng)用

        傳統(tǒng)的豬育種手段,如純系選育和配套雜交,需要耗費(fèi)大量的人力和物力,培育理想經(jīng)濟(jì)性狀所需周期長并存在優(yōu)良性狀難以聚合、改良目標(biāo)性狀不確定性較大等問題,極大地限制了豬遺產(chǎn)改良的進(jìn)展。基因編輯技術(shù)能夠?qū)ωi進(jìn)行快速定向的遺傳改良,短時(shí)間內(nèi)就能獲得自然狀態(tài)下經(jīng)過長期選育才能獲得的表型,彌補(bǔ)了傳統(tǒng)育種的不足。2015年,Ruan J.等[9]利用包括CRISPR/Cas9在內(nèi)的多種基因編輯技術(shù)在豬基因組的H11位點(diǎn)插入9.4 kb長的外源DNA片段,證實(shí)CRISPR/Cas9系統(tǒng)編輯效率最高,為后續(xù)制備高效安全的轉(zhuǎn)基因豬奠定了基礎(chǔ)。目前,科學(xué)家們將CRISPR/Cas9技術(shù)和體細(xì)胞核移植技術(shù)(somatic cell nuclear transfer,SCNT)相結(jié)合,實(shí)現(xiàn)了特定性狀的精準(zhǔn)改變,已完全顛覆現(xiàn)有的豬遺傳改良路徑和品種選育效率,為豬育種提供了全新的思路。

        1.1 提高肉品質(zhì)

        我國肉豬地方品種多,普遍具有繁殖力強(qiáng)、肉質(zhì)好、抗病和適應(yīng)性強(qiáng)等優(yōu)點(diǎn),但是飼料利用率和瘦肉率較低,飼養(yǎng)周期長,飼料報(bào)酬低。我國每年都需要從國外進(jìn)口大量優(yōu)良品種種豬和精液。國外豬種的特點(diǎn)是體格大、屠宰率和瘦肉率高,因此,很多農(nóng)戶選擇飼養(yǎng)外國豬種,而我國地方豬種的群體數(shù)量近年來呈顯著下降趨勢。近年來,研究人員利用CRISPR/Cas9技術(shù)對豬的多種生產(chǎn)性能進(jìn)行分子水平的改良,培育出眾多具有優(yōu)良性狀的品種。

        肌肉生長抑制素(myostatin,MSTN)基因是目前發(fā)現(xiàn)的唯一能夠抑制骨骼肌細(xì)胞增殖與分化的基因,該基因突變會導(dǎo)致豬肌肉異常增長或產(chǎn)生雙肌臀表型[10]。2015 年,Wang K.K.等[11]利用CRISPR/Cas9技術(shù)對MSTN基因進(jìn)行定點(diǎn)編輯,獲得肌纖維數(shù)目和肌肉生長速率顯著增加的基因編輯豬,最終表現(xiàn)出特定的雙肌臀表型。在動物上MSTN基因編輯導(dǎo)致的基因失活等同于自然變異,這有利于轉(zhuǎn)基因食用動物商業(yè)化獲得公眾和監(jiān)管機(jī)構(gòu)的更多支持。解偶聯(lián)蛋白1(uncoupling protein 1,UCP1)是一種在棕色脂肪組織中特異表達(dá)的線粒體內(nèi)膜蛋白,能夠參與棕色脂肪的產(chǎn)熱調(diào)節(jié)和能量代謝,以維持機(jī)體的能量代謝平衡。在進(jìn)化過程中現(xiàn)代家豬的祖先在2 000年前丟失該基因,Zheng Q.T.等[12]利用CRISPR/Cas9技術(shù)成功實(shí)現(xiàn)UCP1基因在豬白色脂肪組織中的特異表達(dá),顯著降低了基因編輯豬的脂肪率和背膘厚度,并顯著提高了瘦肉率,這不僅有利于新生仔豬抵御寒冷環(huán)境,更有助于挽救寒冷地區(qū)畜牧業(yè)生產(chǎn)的經(jīng)濟(jì)損失。豬胰島素樣生長因子2(insulin-like growth factor 2,IGF2)是胰島素類激素家族的重要成員之一,廣泛參與機(jī)體眾多生理代謝過程,在肌肉發(fā)育和脂肪沉積等方面發(fā)揮重要作用,另外也參與動物細(xì)胞的增殖、分化等活動[13]。2018年,Xiang G.H.等[14]利用CRISPR/Cas9技術(shù)對IGF2內(nèi)含子3中一個(gè)保守的SNP位點(diǎn)進(jìn)行編輯,得到在體重、胴體率和瘦肉率等方面都顯著高于野生型的新品種,首次證明通過編輯基因組非編碼區(qū)能夠顯著提高牲畜的生產(chǎn)經(jīng)濟(jì)性狀,這為精確育種提供了全新的思路和策略。

        中國生豬出欄量、消費(fèi)量均位于世界各國之首,肉豬養(yǎng)殖在中國畜牧業(yè)中具有重要地位。因此,建立新的技術(shù)策略促進(jìn)我國本土優(yōu)良豬種的選育,一直是肉豬養(yǎng)殖領(lǐng)域關(guān)注的重點(diǎn),具有重要的經(jīng)濟(jì)價(jià)值和社會意義。CRISPR/Cas9技術(shù)在短時(shí)間內(nèi)創(chuàng)造了具備優(yōu)越生產(chǎn)性能的豬群體,在保留我國特有肉豬種系優(yōu)點(diǎn)的基礎(chǔ)上進(jìn)一步提高其生長率和瘦肉率,不僅具有重要的經(jīng)濟(jì)價(jià)值,對于保護(hù)我國地方品系資源也具有重要意義。

        1.2 提高抗病性

        作為一個(gè)養(yǎng)豬大國,我國不僅養(yǎng)殖方式多樣,疫病流行情況也相對復(fù)雜,豬病流行給畜牧業(yè)帶來巨大的經(jīng)濟(jì)損失,人畜共患病和食品安全更嚴(yán)重威脅著人類的健康??蒲腥藛T逐漸意識到單純依靠藥物和疫苗無法徹底控制豬病,因此,從遺傳角度利用CRISPR/Cas9等基因編輯技術(shù)研究培育新的抗病品種成為解決問題的關(guān)鍵。

        豬繁殖與呼吸綜合征(porcine reproduction and respiratory syndrome,PRRS)俗稱“藍(lán)耳病”,會導(dǎo)致母豬出現(xiàn)繁殖障礙及仔豬出現(xiàn)嚴(yán)重的呼吸道疾病。在中國廣泛傳播的豬高熱病是由藍(lán)耳病病毒(Porcine reproduction and respiratory syndrome virus,PRRSV)的高致病性毒株引起的,死亡率在2%~100%之間。清道夫受體CD163蛋白是PRRSV入侵宿主時(shí)的重要識別蛋白,能夠促進(jìn)病毒脫殼并將病毒基因組RNA釋放到細(xì)胞質(zhì)中發(fā)揮作用[15-16]。2013年,Prather團(tuán)隊(duì)首次利用基因編輯技術(shù)治療豬傳染性疾病,發(fā)現(xiàn)CD163的第7外顯子雙等位基因敲除豬具有很好的抗病能力,為后續(xù)研究奠定了重要基礎(chǔ)[17-19]。2014年,K.M.Whitworth等[19]通過顯微注射Cas9 mRNA和sgRNA獲得能夠抵抗藍(lán)耳病病毒的CD163雙等位基因敲除豬,取得豬育種領(lǐng)域的重大突破。隨后的多項(xiàng)研究表明,CD163基因外顯子7上富含半胱氨酸的結(jié)構(gòu)域5(scavenger receptor cysteine-rich domain 5,SRCR5)是PRRSV感染所必需的。2018 年,C.Burkard 等[20]利 用CRISPR/Cas9系統(tǒng)敲除豬CD163蛋白的SRCR5結(jié)構(gòu)域,成功制備了能抵抗PRRSV-1的抗病豬。Guo C.H.等[21]進(jìn)一步特異性刪除SRCR5結(jié)構(gòu)域中的部分序列,培育出可抵抗PRRSV-2的長白豬和兩廣小花豬抗病豬模型。隨后,科研人員發(fā)現(xiàn)只需對SRCR5結(jié)構(gòu)域進(jìn)行單個(gè)堿基編輯,即可獲得抵抗藍(lán)耳病的豬模型[22]。更重要的是,通過此種方法生產(chǎn)的基因編輯豬不導(dǎo)入外源基因且不影響CD163的生物學(xué)功能,因此不存在轉(zhuǎn)基因生物安全問題。除了藍(lán)耳病以外,科研人員可以利用相同手段對偽狂犬、口蹄疫、圓環(huán)病毒病、流行性腹瀉和非洲豬瘟等豬病進(jìn)行了抗病育種研究,這對于提高豬抗病性具有重要推動作用。

        CRISPR/Cas9技術(shù)的發(fā)展與應(yīng)用為探究病毒致病機(jī)制、新型疫苗研發(fā)及抗病毒藥物研發(fā)等領(lǐng)域提供了強(qiáng)有力的工具。在對疾病發(fā)生機(jī)制研究的基礎(chǔ)上,利用CRISPR/Cas9技術(shù)進(jìn)行有針對性的高效基因編輯,是實(shí)現(xiàn)豬抗病育種突破的關(guān)鍵技術(shù)手段,對推動畜牧業(yè)健康發(fā)展具有重要作用。目前,CRISPR/Cas9技術(shù)還只是局限在宿主與病毒的相互作用方面,過度依賴于復(fù)雜競爭的細(xì)胞過程,在一定程度上限制了基因編輯的效率和精準(zhǔn)度。

        2 CRISPR/Cas9技術(shù)在建立人類疾病豬模型上的應(yīng)用

        目前用于人類疾病研究的基因編輯動物模型主要是以小鼠、大鼠為代表的嚙齒類動物模型和以豬為代表的大動物模型。與嚙齒類動物模型相比,豬的組織和器官在生理學(xué)、營養(yǎng)學(xué)和遺傳學(xué)等方面與人類具有更高的相似性,是人類疾病研究領(lǐng)域的理想模型之一。同時(shí),由于胚胎干細(xì)胞技術(shù)較難、繁殖周期長及基因編輯效率低等,大型哺乳動物模型的構(gòu)建一直都是技術(shù)攻關(guān)的難點(diǎn)。目前,利用CRISPR/Cas9技術(shù)已獲得多種人類疾病的豬模型。

        2.1 心血管疾病模型

        心血管疾病是全球的頭號死因,由于心血管疾病具有高發(fā)病率、高致殘率、高死亡率等特征,目前已成為嚴(yán)重威脅人類生命健康的常見病、多發(fā)病。血管性血友?。╲on willebrand disease,vWD)是一種常見的遺傳性出血性疾病,由常染色體遺傳的血管性血友病因子(von willebrand factor,vWF)的數(shù)量或結(jié)構(gòu)異常所造成的,以出血傾向、出血時(shí)間延長、血小板黏附功能下降等為主要臨床特點(diǎn)[23]。2014年,Hai T.等[24]獲得vWF雙等位基因敲除的小型巴馬豬,該突變體的凝血時(shí)間顯著高于野生型,表現(xiàn)出嚴(yán)重的凝血功能障礙,這是首次利用CRISPR技術(shù)制備出具有特定疾病表型的哺乳動物疾病模型。尼曼-匹克C1型類似蛋白1(niemann-pick type C1 like l,NPC1L1)是一種跨膜蛋白,在外源性膽固醇吸收和代謝過程中發(fā)揮重要的調(diào)節(jié)作用[25]。2015年,Wang Y.等[26]利用CRISPR/Cas9技術(shù)成功制備NPC1L1敲除豬,為深入研究NPC1L1基因在人類膽固醇吸收中的功能提供了新信息。低密度脂蛋白受體(lowdensity lipoprotein receptor,LDLR)是家族性高膽固醇血癥的主要致病因子,該蛋白位于肝細(xì)胞表面,在肝臟低密度脂蛋白膽固醇清除中起關(guān)鍵作用[27]。載脂蛋白E(apolipoprotein E,ApoE)在膽固醇和脂蛋白的轉(zhuǎn)運(yùn)和代謝中發(fā)揮重要作用,是極低密度脂蛋白和乳糜微粒的重要組成部分[28]。Huang L.等[29]利用CRISPR/Cas9技術(shù)成功制備了LDLR和ApoE雙基因敲除豬,該種豬血液中低密度脂蛋白、膽固醇、總膽固醇和載脂蛋白B的水平顯著升高,成為研究代謝紊亂和動脈粥樣硬化疾病的大動物模型。膽固醇的吸收和代謝異常會增加動脈粥樣硬化與早發(fā)冠心病的風(fēng)險(xiǎn),這些疾病模型的建立為探究人類心血管疾病的發(fā)病機(jī)制和治療方法提供了基礎(chǔ),具有巨大的市場潛力和商業(yè)化前景。

        2.2 代謝異常疾病模型

        肥胖是由于機(jī)體長期能量攝入超過消耗而引起能量平衡紊亂,導(dǎo)致機(jī)體生理功能出現(xiàn)異常的一種病理狀態(tài)。肥胖會對機(jī)體多個(gè)器官產(chǎn)生影響,引起代謝紊亂,誘發(fā)2型糖尿病、心血管疾病等慢性病。目前,肥胖和代謝綜合征的人數(shù)在全世界范圍內(nèi)迅速增長,導(dǎo)致高發(fā)病率和死亡率。黑皮質(zhì)素3受體(melanocortin 3 receptor,MC3R)是位于哺乳動物細(xì)胞表面的視紫紅質(zhì)樣G蛋白偶聯(lián)受體,在能量穩(wěn)態(tài)方面發(fā)揮一定的調(diào)節(jié)作用[30]。2019年,Yin Y.J.等[31]利用CRISPR/Cas9技術(shù)并結(jié)合SCNT技術(shù)制備了MC3R敲除豬,該豬的體重和體脂率均顯著高于野生型,成為研究人類肥胖疾病的良好非嚙齒類動物醫(yī)學(xué)模型。糖尿病作為一種代謝紊亂引起的慢性疾病,目前醫(yī)學(xué)界對糖尿病的治療廣泛使用豬源胰島素。但由于豬和人的胰島素蛋白存在一個(gè)氨基酸的差異,使用豬源胰島素效率較低且長期使用易誘發(fā)抗體的產(chǎn)生[32-33]。2016年,Yang Y.等[34]利用基因編輯技術(shù)對豬胰島素基因進(jìn)行定點(diǎn)修飾,成功建立了完全分泌人胰島素的基因修飾豬,為糖尿病治療和臨床異種胰島移植治療提供了研究基礎(chǔ)。目前在研究中已經(jīng)發(fā)現(xiàn)多種與糖尿病等代謝疾病相關(guān)的基因,基于CRISPR的基因編輯系統(tǒng)對這些機(jī)體代謝相關(guān)基因進(jìn)行干預(yù),將有利于在遺傳水平上幫助人類改善肥胖癥及相關(guān)代謝性疾病。

        2.3 神經(jīng)退行性疾病模型

        亨廷頓舞蹈病、阿爾茲海默癥、帕金森病、肌萎縮側(cè)索硬化癥等均因?yàn)榈鞍踪|(zhì)的錯(cuò)誤折疊而導(dǎo)致神經(jīng)細(xì)胞死亡,是當(dāng)今社會嚴(yán)重威脅人類健康的神經(jīng)退行性疾?。?5]。伴隨人年齡的逐漸增長,這些疾病逐漸產(chǎn)生,可遺傳,呈漸進(jìn)性發(fā)展,但由于缺乏合適的動物模型進(jìn)行藥物篩選,目前尚無有效治療方法。2015年,Zhou X.Q.等[36]利用CRISPR/Cas9系統(tǒng)針對豬基因組中PARK2和PINK1基因的外顯子區(qū)域設(shè)計(jì)Cas9打靶質(zhì)粒,成功建立了帕金森綜合征醫(yī)用豬模型,首次實(shí)現(xiàn)了大動物的雙基因等位敲除。亨廷頓舞蹈病是由單基因(Hunting,HTT)突變導(dǎo)致的神經(jīng)退行疾病,是研究蛋白質(zhì)錯(cuò)誤折疊引起選擇性的神經(jīng)退行性病變和多基因突變病癥的基礎(chǔ)[37]。2018年,Yan S.等[38]首次利用CRISPR/Cas9技術(shù)精準(zhǔn)將人的突變亨廷頓舞蹈病基因精確地插入豬HTT內(nèi)源性基因中,在國際上首次建立了與神經(jīng)退行性人突變基因相似的大動物模型。亨廷頓舞蹈病基因敲入豬的建立是神經(jīng)退行性疾病研究領(lǐng)域中的一個(gè)里程碑式的發(fā)現(xiàn),為我國腦科學(xué)與類腦研究提供了最新手段,標(biāo)志著我國大動物模型研究走在了世界前列。更值得關(guān)注的是,這些疾病模型的病理特征及異常行為均可穩(wěn)定遺傳給后代,這為開發(fā)治療神經(jīng)退行性疾病新手段提供了穩(wěn)定、可靠的動物模型,更能夠?yàn)橹苽淦渌窠?jīng)退行性疾病大動物模型提供技術(shù)范本和理論基礎(chǔ)。

        3 CRISPR/Cas9技術(shù)在生產(chǎn)異種器官上的應(yīng)用

        自20世紀(jì)80年代免疫抑制藥物應(yīng)用以來,臨床器官移植成為晚期器官功能衰竭的首選治療手段。目前在全世界范圍內(nèi)器官來源嚴(yán)重短缺的問題尚未解決,異種器官移植和異種細(xì)胞移植是解決人供體器官短缺的重要途徑。豬的生理和解剖結(jié)構(gòu)與人類高度類似,被認(rèn)為是人體異種器官來源及異種細(xì)胞再生的首選動物。

        目前,豬器官植入人體存在的一個(gè)最大障礙是超急性排斥反應(yīng)。非靈長類動物的細(xì)胞表面存在一種稱為α-1,3半乳糖(α-1,3 galactosidase,αgal)的抗原,在長期自然進(jìn)化過程中α-gal在靈長類中已經(jīng)消失,但卻存在針對該抗原決定簇的天然抗體。因此,只有培育出完全不含α-1,3-半乳糖轉(zhuǎn)移酶(α-1,3-galactosyltransferase,GGTA1)基因的轉(zhuǎn)基因豬,才能徹底消除這種免疫排斥反應(yīng)。2014年,M.Sato等[39]利用CRISPR/Cas9系統(tǒng)成功敲除了豬的GGTA1基因,消除了豬和人的異種器官移植排斥問題,為人類器官移植探究提供了良好模型。此外,豬自身攜帶有內(nèi)源性逆轉(zhuǎn)錄病毒(Porcine endogenous retrovirus,PERVs),該病毒對豬不具備毒性,但在體外不僅能感染人細(xì)胞,還可在人細(xì)胞之間傳播,一旦侵入人體可能會引起免疫缺陷、腫瘤發(fā)生等健康隱患。因此,作為器官移植的供體必須清除豬體內(nèi)的所有PERVs。2015年,Yang L.H.等[40]利用CRISPR/Cas9技術(shù)在全基因組范圍內(nèi)從PK15豬腎細(xì)胞和成纖維細(xì)胞中敲除PERV的所有拷貝,成為迄今為止最廣泛的CRISPR編輯壯舉。2017年,Niu D.等[41]成功在豬原代細(xì)胞系中滅活了所有的PERVs,并通過體細(xì)胞核移植獲得世界首批PERVs滅活豬模型,第一次從根本上解決了異種器官病毒傳染的風(fēng)險(xiǎn),是異種器官移植科學(xué)研究進(jìn)程的標(biāo)志性里程碑。盡管敲除GGTA1基因后能夠逃避超級性免疫排斥反應(yīng),但是引起超急性免疫排斥反應(yīng)的靶點(diǎn)卻不只有GGTA1基因,還有胞苷酸-N-乙酰神經(jīng)氨酸羥化酶(cytidine monophosphate-N-acetylneuraminic acid hydroxylase,CMAH)基因、β-1,4-N-乙酰半乳糖胺轉(zhuǎn)移酶(β-1,4-N acetylgalactosaminyl transferase 2,β4GalNT2)基因和去唾液酸糖蛋白受體1(asialoglycoprotein receptor 1,ASGR1)基因等。因此,2020年,F(xiàn)u R.等[42]成功敲除豬體內(nèi)的GGTA1、β-微球蛋白(β-microglobulin,β2M)和主要組織相容性復(fù)合體Ⅱ類興奮劑(major histocompatibility complex classⅡtransactivator,CIITA)基因,有效緩解了異種免疫反應(yīng)并延長了異種發(fā)生過程中豬的存活時(shí)間。2021年,Yue Y.N.等[43]進(jìn)一步在PERVs敲除豬體內(nèi)移除3個(gè)激活免疫反應(yīng)的基因,插入6個(gè)移植人體免疫反應(yīng)的基因和3個(gè)調(diào)節(jié)免疫反應(yīng)的基因,大大減輕了人體免疫排斥反應(yīng)。

        近日,世界首例基因編輯豬腎臟成功植入人體,成為豬異種器官移植探索的重要里程碑。移植后該器官不僅能正常發(fā)揮功能,且短時(shí)間內(nèi)未發(fā)生免疫排斥反應(yīng)。更重要的是,全球首次豬心臟移植人體手術(shù)也順利開展,首次證明基因編輯動物心臟可以在人體內(nèi)正常工作。這標(biāo)志著科學(xué)家們向利用動物器官拯救人類生命邁出重要一步。

        隨著基因編輯技術(shù)的迅猛發(fā)展,各種異種器官移植難題逐漸被克服,利用基因編輯技術(shù)改造豬器官并結(jié)合克隆動物技術(shù),培育能為人類提供器官的基因修飾豬,將為更多器官功能衰竭晚期病人帶來新生。

        4 問題與展望

        近年來,CRISPR基因編輯技術(shù)的多樣性、模塊性和高效性正在掀起一場生物技術(shù)革命。從純粹的技術(shù)角度來看,CRISPR/Cas9技術(shù)的基因編輯效率和準(zhǔn)確性都較高,但也存在嚴(yán)重的脫靶問題。由于基因組的復(fù)雜性極高,sgRNA可能會與非靶向序列局部配對,激活Cas9內(nèi)切酶活性發(fā)生非特異性切割,從而干擾細(xì)胞的正常功能,甚至誘發(fā)諸如癌癥等多種疾病。目前,主要通過改造Cas9蛋白和優(yōu)化sgRNA兩方面降低脫靶效率。此外,有研究人員還指出,CRISPR技術(shù)會造成編輯位點(diǎn)附近出現(xiàn)大量DNA缺失和重排,從而增加基于CRISPR治療的復(fù)雜性[44]。

        2018年11月份,我國的一個(gè)研究團(tuán)隊(duì)秘密將CRISPR/Cas9技術(shù)應(yīng)用于人類胚胎的修飾,在國際上引起軒然大波[45]。CRISPR/Cas9技術(shù)能夠通過編輯成年動物的胚胎或生殖細(xì)胞來修飾基因,控制和改變生物的遺傳特征并傳遞給后代。目前,將Cas9和sgRNA導(dǎo)入受精卵多采用電轉(zhuǎn)化或顯微注射的方式,但在受精卵分裂過程中Cas9蛋白對不同卵裂球的編輯能力和修復(fù)方式可能不同,出現(xiàn)帶有不同編輯類型細(xì)胞的嵌合體[46-48]。因此,如何正確利用CRISPR/Cas9技術(shù)提升人類的健康和福祉,是值得人們關(guān)注的焦點(diǎn)。

        盡管目前還有許多技術(shù)難題有待解決,但CRISPR/Cas9技術(shù)仍在不斷發(fā)展,基因編輯豬在農(nóng)業(yè)育種、醫(yī)學(xué)研究、人源化器官生產(chǎn)和臨床疾病治療等多個(gè)領(lǐng)域均取得突破性進(jìn)展。這不僅為豬育種提供了全新的思路,也為生物醫(yī)學(xué)研究提供了重要參考。采用基因編輯技術(shù)進(jìn)行基因治療必將成為21世紀(jì)人類攻克疑難病癥的一種常規(guī)治療手段,它必將為維護(hù)人類健康和畜牧業(yè)發(fā)展做出重要貢獻(xiàn)。

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