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        核桃種皮多酚的大孔樹脂法分離與液質(zhì)聯(lián)用法鑒定

        2022-06-15 05:18:38孫敬敬楊瑞金楊進(jìn)潔張文斌
        食品與發(fā)酵工業(yè) 2022年11期
        關(guān)鍵詞:質(zhì)量

        孫敬敬,楊瑞金,楊進(jìn)潔,張文斌*

        1(江蘇省食品安全與質(zhì)量控制協(xié)同創(chuàng)新中心,江蘇 無錫,214122)2(江南大學(xué) 食品學(xué)院,江蘇 無錫,214122) 3(煙臺(tái)雙塔食品股份有限公司,山東 招遠(yuǎn),265404)

        核桃(JuglansregiaL.)是胡桃科核桃屬植物,世界四大堅(jiān)果之一,有補(bǔ)腎、益智、固精強(qiáng)腰、溫肺定喘、潤腸通便等功效[1]。核桃仁作為一種高油料作物,含有角鯊烯、維生素及多酚等多種活性物質(zhì),經(jīng)濟(jì)價(jià)值較高。核桃種皮約占核桃仁質(zhì)量的5%~10%,核桃仁中90%以上的多酚類物質(zhì)都集中于種皮中,主要為酚酸、水解鞣質(zhì)及少量黃酮類成分[2]。核桃多酚具有多種生物活性,如抗氧化、清除自由基、預(yù)防心臟病、改善血液循環(huán)、抗動(dòng)脈粥樣硬化、抗炎等[3-4]。然而,種皮中的多酚容易通過氫鍵、疏水相互作用及離子鍵等與蛋白結(jié)合,影響核桃蛋白的功能特性[5]。且因核桃種皮的苦味和澀味,在食品生產(chǎn)加工過程中常被當(dāng)作廢物處理[6]。核桃乳加工中常用濕堿法去皮,導(dǎo)致企業(yè)每生產(chǎn)1 t核桃乳就會(huì)產(chǎn)生數(shù)噸的堿性廢水,在鮮食核桃仁及核桃蛋白粉等食品加工制作過程中也常做脫皮處理,造成了種皮多酚的極大浪費(fèi)。

        目前多酚的純化方法主要有硅膠柱層析法、葡聚糖凝膠色譜法和大孔吸附樹脂法等。大孔樹脂因操作簡單、可回收再生,具有良好的吸附選擇性和穩(wěn)定性及不易受酸堿和雜質(zhì)的影響等優(yōu)點(diǎn)而被國內(nèi)外學(xué)者廣泛應(yīng)用于天然活性物質(zhì)的分離純化[7]。GUO等[8]研究表明獼猴桃果皮多酚經(jīng)NKA-II樹脂純化后純度由33.2%提高到了55.26%。張旭等[9]采用AB-8樹脂對(duì)核桃青皮汁多酚進(jìn)行純化,使得多酚純度提高了4.68倍。徐佳[10]用HZ-801型樹脂對(duì)核桃外果皮多酚提取液進(jìn)行純化,多酚含量由純化前的8.00%提高到了17.68%。國內(nèi)外對(duì)核桃多酚的純化和抗氧化性等方面研究較多,然而,對(duì)核桃種皮多酚大孔吸附樹脂富集分離時(shí),其功效組分的保留情況關(guān)注較少。

        與此同時(shí),國內(nèi)外有少數(shù)關(guān)于核桃多酚的鑒定研究,趙聰[11]采用HPLC方法鑒定出核桃種皮多酚中含有表兒茶素、沒食子酸和槲皮素等8種酚類物質(zhì)。LIU等[12]采用超高效液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜在核桃仁中鑒定出黃酮、單寧和酚酸等27種多酚類物質(zhì)。REGUEIRO等[2]研究結(jié)果表明核桃仁中的主要的酚類物質(zhì)是鞣花單寧、鞣花酸及其衍生物。ZHANG等[13]在核桃種皮中鑒定出鞣花酸、奎寧酸、香豆酸、對(duì)香豆酸、原兒茶酸、咖啡酸、對(duì)羥基苯甲酸和丁香酸等32種酚類物質(zhì)?,F(xiàn)有的研究中大多是直接對(duì)核桃多酚類物質(zhì)鑒定,卻鮮有關(guān)于核桃種皮多酚的純化及鑒定的綜合研究。

        本文為提高核桃種皮多酚的純度,篩選適宜富集核桃種皮多酚的大孔樹脂,優(yōu)化分離工藝條件,并采用液質(zhì)聯(lián)用技術(shù)對(duì)純化后保留的多酚組分進(jìn)行鑒定,為進(jìn)一步開發(fā)利用核桃種皮多酚提供參考。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        核桃仁,云南省臨滄市;沒食子酸、無水乙醇、福林酚、無水Na2CO3、濃鹽酸等均為分析純,國藥集團(tuán);AB-8、D101、NKA-9、HPD 100樹脂,天津市光復(fù)精細(xì)化工研究所。

        LE2002E電子天平、DELTA-320型pH計(jì),梅特勒托利多儀器有限公司;M348834旋渦振蕩器,德國IKA公司;水浴恒溫振蕩器,常州諾基儀器有限公司;酶標(biāo)儀,南京拜爾沃克公司;RV10型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀,廣州儀科實(shí)驗(yàn)技術(shù)有限公司;冷凍干燥機(jī),北京BMH有限公司;HD-3000紫外檢測(cè)儀,上海嘉鵬科技有限公司;玻璃層析柱,上海五相儀器儀表有限公司;超高效液相色譜串聯(lián)四級(jí)桿飛行時(shí)間質(zhì)譜聯(lián)用儀,美國Waters公司。

        1.2 實(shí)驗(yàn)方法

        1.2.1 粗多酚樣品的制備及標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制

        參照文獻(xiàn)[14]制備核桃種皮多酚提取液,旋蒸后冷凍干燥,凍干的粗酚樣品貯存于4 ℃冰箱。

        多酚含量的測(cè)定:精確稱取沒食子酸標(biāo)準(zhǔn)品,蒸餾水溶解定容配制成100 μg/mL的母液。分別吸取0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7 mL的標(biāo)準(zhǔn)溶液于比色管中,加水補(bǔ)足至1 mL,加入1 mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)為10%的Na2CO3溶液和0.5 mL福林酚試劑(稀釋10倍),混勻后,室溫避光反應(yīng)1.5 h,測(cè)定765 nm處的吸光度,以標(biāo)準(zhǔn)溶液濃度為橫坐標(biāo),吸光值為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。以同樣的方法將樣品溶液稀釋至一定濃度后,測(cè)定樣品的吸光值。

        1.2.2 大孔樹脂的預(yù)處理

        大孔樹脂用體積分?jǐn)?shù)95%乙醇溶液浸泡12 h,蒸餾水洗至無醇味,再用質(zhì)量分?jǐn)?shù)4%NaOH溶液浸泡處理4 h,蒸餾水沖洗至中性;最后用質(zhì)量分?jǐn)?shù)4%鹽酸浸泡4 h,蒸餾水洗樹脂至中性,備用。

        1.2.3 樹脂的選型

        分別稱取1.00 g預(yù)處理的4種濕樹脂于100 mL錐形瓶中,加入2 mg/mL核桃種皮多酚溶液20 mL,密封置于25 ℃水浴搖床上,150 r/min持續(xù)振蕩12 h,使樹脂吸附飽和,從上清液中取樣測(cè)定多酚含量。將吸附飽和的樹脂真空抽濾,用蒸餾水潤洗至樹脂表面無酚液殘留,加入20 mL的體積分?jǐn)?shù)為70%乙醇溶液解吸6 h,測(cè)定解吸液中多酚含量。依據(jù)公式(1)~公式(3)計(jì)算樹脂吸附量(mg/g)、吸附率(%)和解吸率(%):

        (1)

        (2)

        (3)

        式中:ρ0,初始多酚質(zhì)量濃度,mg/mL;ρ1,吸附后多酚液質(zhì)量濃度,mg/mL;ρ2,解吸液多酚質(zhì)量濃度,mg/mL;V1,吸附液體積,mL;V2,解吸液體積,mL;m,濕樹脂質(zhì)量,g。

        1.2.4 AB-8樹脂靜態(tài)吸附動(dòng)力學(xué)曲線

        處理方法同1.2.3,每隔0.5 h取0.5 mL上清液,按1.2.1測(cè)定吸光值,依據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算上清液的多酚含量和吸附率,繪制飽和吸附曲線。

        1.2.5 上樣液濃度對(duì)樹脂吸附率的影響

        稱取1.00 g預(yù)處理好的AB-8樹脂各5份,依次加入20 mL質(zhì)量濃度分別為1、2、3、4、5 mg/mL的核桃種皮多酚溶液,密封置于25 ℃水浴搖床上,150 r/min持續(xù)振蕩3 h,測(cè)定上清液中的多酚含量,按公式(2)計(jì)算吸附率。

        1.2.6 pH值對(duì)樹脂吸附率的影響

        稱取1.00 g預(yù)處理好的AB-8樹脂各7份,依次加入20 mL pH值分別為1、2、3、4、5、6、7 的核桃種皮多酚溶液,密封置于25 ℃水浴搖床上,150 r/min持續(xù)振蕩3 h,測(cè)定上清液中的多酚含量,按公式(2)計(jì)算吸附率。

        1.2.7 乙醇濃度對(duì)解吸率的影響

        稱取1.00 g預(yù)處理好的AB-8樹脂各6份,依次加入20 mL pH 9.0,質(zhì)量濃度為2 mg/mL的核桃種皮多酚溶液,密封置于25 ℃水浴搖床上,150 r/min持續(xù)振蕩吸附3 h后,抽濾后洗滌樹脂,分別加入體積分?jǐn)?shù)為50%、60%、70%、80%、90%、100%的乙醇溶液20 mL,瓶口密封,按1.2.3方法解吸并根據(jù)公式(3)計(jì)算解吸率。

        1.2.8 大孔樹脂動(dòng)態(tài)吸附及解吸

        (1) 泄露曲線:將預(yù)處理好的AB-8樹脂20.00 g濕法裝入Φ1.0 cm×30 cm的層析柱(1 BV=35 mL),用去離子水平衡過夜,將質(zhì)量濃度為2 mg/mL,pH 3.0的核桃種皮多酚粗提液以1 mL/min流速上柱,10 mL每管收集流出液并測(cè)定多酚濃度,直至流出液多酚濃度(Ct)達(dá)到上樣液的多酚濃度(Co)的10%時(shí)停止進(jìn)樣,繪制泄露曲線。

        (2) 洗脫曲線:將質(zhì)量濃度為2 mg/mL、pH 3.0的核桃多酚溶液以1 mL/min的流速上樣14 BV,經(jīng)3 BV去離子水除雜后,用體積分?jǐn)?shù)為70%乙醇溶液洗脫至無紫外吸收,10 mL每管收集洗脫液,測(cè)定多酚濃度,繪制洗脫曲線。

        將洗脫液用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀蒸發(fā)去除乙醇,凍干后測(cè)定多酚純度。多酚類物質(zhì)的純度定義為混合物中多酚類物質(zhì)質(zhì)量與混合物總質(zhì)量的比值,如公式(4)所示:

        (4)

        1.2.9 核桃種皮多酚組分鑒定

        通過超高效液相色譜串聯(lián)四級(jí)桿飛行時(shí)間質(zhì)譜(ultra-performance liquid chromatography coupled with quadrupole time-of-flight tandem mass spetrometry,UPLC-TOF-MS/MS)對(duì)核桃種皮中酚類物質(zhì)進(jìn)行鑒定。

        色譜條件:Waters Acquity BEH C18 色譜柱(2.1 mm×50 mm,1.7 μm);流動(dòng)相A為純乙腈,B為0.1%甲酸(體積分?jǐn)?shù)),梯度洗脫:0~0.1 min,5% A;0.1~5 min,5%~20% A;5~8 min,20%~40% A;8~10 min,40%~80% A;10~15 min,100% A。流速0.3 mL/min,DAD檢測(cè)波長為200~600 nm,進(jìn)樣量5 μL。

        質(zhì)譜條件:負(fù)離子模式,電噴霧離子化源,離子源溫度100 ℃,毛細(xì)管電壓3.0 kV,錐孔氣流量50 L/h,脫溶劑溫度400 ℃,脫溶劑氣體流量500 L/h,掃描范圍m/z50~1 500。

        1.2.10 數(shù)據(jù)分析

        所有結(jié)果表示均為平均值±標(biāo)準(zhǔn)偏差,所有樣品均做3次平行實(shí)驗(yàn),分別用SPSS 22做統(tǒng)計(jì)學(xué)分析和Origin Pro 8.5軟件作圖。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 四種大孔樹脂對(duì)核桃種皮多酚的吸附和解吸性能比較分析

        大孔樹脂的吸附是利用樹脂多孔網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)和高比表面積形成的分子篩作用,也與樹脂和目標(biāo)物之間的范德華力或氫鍵締合能力有關(guān)[15]。如表1所示,AB-8樹脂的吸附量和解吸率顯著高于其他幾種樹脂。一般來說,極性化合物在極性樹脂上具有較好的吸附性能,雖然NKA-9樹脂為極性樹脂,但其吸附量和解吸率卻低于AB-8樹脂,可見樹脂的平均孔徑和比表面積等物理特性也能影響多酚類物質(zhì)的吸附效果。綜合考慮,AB-8樹脂是最適合純化核桃種皮多酚的樹脂。

        表1 大孔吸附樹脂的吸附及解吸性能比較Table 1 Comparison of adsorption and desorption properties of resins

        2.2 大孔樹脂的靜態(tài)吸附動(dòng)力學(xué)曲線

        如圖1所示,吸附開始的1 h 內(nèi)核桃種皮多酚快速吸附至樹脂內(nèi)部,多酚的吸附率迅速上升至70%,繼續(xù)振蕩吸附2 h后樹脂達(dá)到吸附飽和狀態(tài),吸附率

        圖1 AB-8樹脂靜態(tài)吸附動(dòng)力學(xué)曲線Fig.1 Adsorption kinetics curve of AB-8 resin

        無明顯變化。故選擇3 h為最佳吸附時(shí)間。

        2.3 上樣液質(zhì)量濃度對(duì)吸附效果的影響

        如圖2所示,核桃種皮多酚上樣液質(zhì)量濃度為2 mg/mL時(shí),樹脂的吸附率最大,可能是核桃種皮多酚上樣液在低濃度時(shí),樹脂仍有吸附位點(diǎn)剩余,多酚可以迅速擴(kuò)散至樹脂內(nèi)部;當(dāng)上樣液質(zhì)量濃度>2 mg/mL時(shí),AB-8樹脂的吸附率隨濃度升高呈下降趨勢(shì),可能是高濃度的上樣液會(huì)使樹脂內(nèi)多酚類物質(zhì)的擴(kuò)散受到抑制,且上樣液濃度越高,雜質(zhì)越多,會(huì)阻塞多酚分子進(jìn)入樹脂,增大傳質(zhì)阻力,從而引起樹脂吸附率下降。因此,核桃種皮多酚上樣液質(zhì)量濃度選擇2 mg/mL為宜。

        圖2 上樣液質(zhì)量濃度對(duì)樹脂吸附率的影響Fig.2 Effect of walnut pellicle polyphenols concentration on adsorption rate

        2.4 pH值對(duì)吸附效果的影響

        如圖3所示,樹脂的吸附率隨核桃種皮多酚上樣液pH值的升高呈先上升后下降趨勢(shì),pH>3.0時(shí),樹脂的吸附率降低,表明酸性條件下能保持多酚的酚羥基結(jié)構(gòu),更有利于AB-8樹脂對(duì)核桃種皮多酚的吸附。因此,核桃種皮多酚上樣液最佳pH值為3.0。

        圖3 pH值對(duì)樹脂吸附率的影響Fig.3 Effect of pH value on the adsorption rate

        2.5 乙醇濃度對(duì)解吸率的影響

        多酚類物質(zhì)一般具有一定的極性和親水性,一般使用甲醇、乙醇及丙酮等作為樹脂的解吸溶劑,實(shí)際加工利用中乙醇的安全性較高且成本低,因而選擇乙醇溶液作為AB-8樹脂的解吸液。如圖4所示,AB-8樹脂的解吸率隨乙醇濃度的升高呈先上升后下降趨勢(shì),當(dāng)乙醇溶液體積分?jǐn)?shù)為70%時(shí),核桃種皮多酚的解吸率最大。當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)>70%時(shí),樹脂解吸率

        圖4 乙醇濃度對(duì)樹脂解吸率的影響Fig.4 Effect of ethanol concentration on desorption rate

        下降,可能是因?yàn)楦邼舛纫掖既芤旱臉O性與多酚的極性相差較大,核桃種皮多酚在乙醇溶液中的溶解度變低。在工業(yè)生產(chǎn)中,乙醇濃度過高容易使其揮發(fā)加快,在實(shí)際生產(chǎn)中也很難控制,因此選擇70%的乙醇溶液作為最適解吸溶液。

        2.6 AB-8樹脂動(dòng)態(tài)吸附泄露曲線及洗脫曲線

        樹脂對(duì)目標(biāo)物的吸附能力有限,當(dāng)樹脂吸附的目標(biāo)物濃度到達(dá)一定量時(shí),樹脂對(duì)目標(biāo)物的吸附作用會(huì)降低,進(jìn)樣液便從樹脂柱上泄露。如圖5所示,以pH值為3.0,質(zhì)量濃度為2 mg/mL的核桃種皮多酚溶液進(jìn)行動(dòng)態(tài)吸附,上樣14 BV時(shí),流出液的多酚濃度可達(dá)到上樣液濃度的10%,繼續(xù)增加上樣體積,流出液的多酚濃度快速升高,樹脂的吸附能力降低,因此核桃種皮多酚的最大上樣量為14 BV;如圖6所示,用70%的乙醇溶液洗脫時(shí),在1.5 BV時(shí)洗脫液多酚濃度達(dá)到最大,繼續(xù)洗脫至流出液在280 nm下無紫外吸收,此時(shí)洗脫液用量為4 BV。綜上可知,AB-8樹脂在動(dòng)態(tài)吸附條件下,最大上樣量為14 BV,洗脫液用量為4 BV。

        圖5 核桃種皮多酚在AB-8樹脂上的泄露曲線Fig.5 Breakthrough curves of walnut pellicle polyphenols on AB-8 resins

        圖6 核桃種皮多酚在AB-8樹脂上的洗脫曲線Fig.6 Desorption curves of walnut pellicle polyphenols on AB-8 resins

        2.7 核桃種皮多酚的組分鑒定

        UPLC-TOF-MS/MS的分析表明,二級(jí)質(zhì)譜比一級(jí)質(zhì)譜專屬性更強(qiáng),對(duì)物質(zhì)的鑒定更準(zhǔn)確,在含有甲酸的流動(dòng)相中,有利于核桃種皮中多酚類物質(zhì)的鑒定。對(duì)核桃種皮多酚組分的鑒定結(jié)果如表2所示,主要是鞣花酸及其衍生物,其中包括含有六羥基聯(lián)苯二甲酰基即鞣花?;?hexahydroxydiphenoyl,HHDP)的鞣花單寧含量最豐富。

        表2 核桃種皮多酚組分鑒定表

        如圖7所示,峰1和峰2給出準(zhǔn)分子離子m/z為481[M-H]-和碎片離子m/z300.99(M-H-180,葡萄糖丟失),m/z300.99為鞣花酸的分子離子峰與文獻(xiàn)[16]報(bào)道一致,初步鑒定為鞣花?;咸烟钱悩?gòu)體。峰3和峰8給出準(zhǔn)分子離子m/z為783,在m/z481(M-H-302,HHDP丟失)和m/z301(M-H-481,HHDP-葡萄糖丟失)處產(chǎn)生主要片段離子,這種碎裂方式可能是二鞣花?;咸烟?,已被報(bào)道為核桃中主要的鞣花單寧之一[17]。在一級(jí)質(zhì)譜中,峰4、峰5、峰6等多個(gè)出峰位置均鑒定出m/z為951準(zhǔn)分子離子,二級(jí)質(zhì)譜中還檢測(cè)到m/z907、783(M-H-168,沒食子酸損失)、481(M-H-469,三沒食子?;鶃G失)、301和275的碎片,該物質(zhì)可能是三沒食子?;坊;咸烟荹2]。峰12給出準(zhǔn)分子離子m/z為935和碎片離子m/z301和275,該物質(zhì)可能為木麻黃素或木麻黃鞣亭異構(gòu)體,與文獻(xiàn)[18]鑒定結(jié)果一致。在m/z為933處的物質(zhì)被鑒定為Glansrin C異構(gòu)體,在m/z631(M-H-301,HHDP丟失)、m/z481(M-452,三沒食子酰基團(tuán)丟失)、m/z451(M-482,HHDP-葡萄糖丟失)和m/z301處可鑒定出主要的MS2片段。

        圖7 核桃種皮多酚負(fù)離子模式總離子流圖Fig.7 Total ion current diagram of walnut pellicle polyphenol in negative ion mode

        峰24可能為鞣花酸,因鞣花酸在負(fù)離子模式掃描時(shí)失去1個(gè)H,產(chǎn)生m/z300.99分子離子峰,在m/z257(M-44,CO2丟失)、229(M-44-28,CO2和CO丟失)和185(丟失2個(gè)CO2和1個(gè)CO)處產(chǎn)生碎片離子,與文獻(xiàn)[19]報(bào)道一致。此外,m/z分別為463和433的物質(zhì)分別可能為鞣花酸己糖異構(gòu)體和鞣花酸戊糖異構(gòu)體,二者均在m/z300.99處產(chǎn)生離子碎片[13]。

        在MS2質(zhì)譜的基礎(chǔ)上,[M-H]-在m/z592處,MS2片段在403、343、241和197處的化合物可能為Glansreginins A,與文獻(xiàn)[19-20]報(bào)道一致。峰20給出準(zhǔn)分子離子m/z為785,在m/z301和275處產(chǎn)生主要碎片離子,這種碎裂模式可能是二沒食子?;?鞣花?;?葡萄糖[19]。峰25給出準(zhǔn)分子離子m/z為787,在m/z617、169和125處產(chǎn)生主要碎片離子,這種碎裂模式可能是四沒食子?;咸烟荹19]。此外,大量文獻(xiàn)報(bào)道核桃中還含有綠原酸、丁香酸、沒食子酸、咖啡酸、阿魏酸、槲皮素和兒茶素等多種單體酚酸及其衍生物,可能是由于核桃原料的來源和基因存在差異,致使本文鑒定出的核桃種皮多酚種類與相關(guān)文獻(xiàn)報(bào)道存在差異[21]。

        3 結(jié)論

        試驗(yàn)篩選出AB-8樹脂是最適合富集核桃種皮多酚的樹脂,靜態(tài)吸附的最佳工藝為:上樣液質(zhì)量濃度2 mg/mL,pH 3.0,吸附時(shí)間3 h,解吸液為體積分?jǐn)?shù)70%的乙醇溶液,動(dòng)態(tài)吸附最大上樣量為14 BV,洗脫液用量為4 BV,此工藝可使核桃種皮多酚純度提高至純化前的2.91倍。UPLC-TOF-MS/MS鑒定出核桃種皮多酚組分主要為鞣花酸、鞣花?;咸烟钱悩?gòu)體、二鞣花?;咸烟?、三沒食子酰基鞣花?;咸烟恰⑺臎]食子?;咸烟恰⒛韭辄S素/木麻黃鞣亭異構(gòu)體、Glansrin C 異構(gòu)體、鞣花酸己糖異構(gòu)體、鞣花酸戊糖異構(gòu)體及Glansreginin A等30種多酚組分。本文對(duì)酸性乙醇超聲提取的核桃內(nèi)種皮多酚進(jìn)行了大孔吸附樹脂富集探索,篩選出能保留鞣花酸及其衍生物等主要功效成分的初步分離方法,可為核桃種皮多酚的開發(fā)提供新的指引。

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