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        桑樹桑黃總?cè)铺崛」に噧?yōu)化及其降血脂、抗氧化活性研究

        2021-06-17 12:54:38王婷婷
        食品工業(yè)科技 2021年7期
        關(guān)鍵詞:桑黃三萜吸光

        何 策,王 超,陳 純,王婷婷

        (浙江農(nóng)林大學農(nóng)業(yè)與食品科學學院,浙江省農(nóng)產(chǎn)品品質(zhì)改良技術(shù)研究重點實驗室,浙江杭州 311300)

        桑黃是一種珍貴的食藥用菌,這一名稱最早在唐朝的《藥性論》中出現(xiàn),但這些時期的“桑黃”與現(xiàn)在所稱的有所不同,學者現(xiàn)今將桑黃歸類為一個新屬,且證實正宗的桑樹桑黃生長在桑屬的樹干上,是一種多年生、木栓質(zhì)的纖孔菌,名為桑黃纖孔菌(Inonotus sanghuang)[1-2]。早期對桑黃的研究主要集中在火木針層孔菌(P.igniarius)、裂蹄針層孔菌(P.linteus)和鮑氏針層孔菌(P.baumii)上[3]。這些研究表明桑黃具有降血脂、抗氧化、調(diào)節(jié)免疫和保肝護肝[4]等多種重要生理功能。桑黃含有多種活性成分,熟知的有多糖、黃酮、三萜類、吡喃酮和多酚類等物質(zhì),除此之外還有多種酶類[5]。其中三萜類物質(zhì)的研究是目前非常熱門的研究方向[6],其具有抗腫瘤[7]、抗病毒[8]、抗菌[9]以及消炎鎮(zhèn)痛[10]等生物學特性,可以用于多種疾病的研究和臨床治療。

        目前三萜類化合物的提取工藝有超聲提取、高剪切提取、微波提取和雙水相提取等。梁佳等[11]研究了微波法提取桑黃(P.igniarius)總?cè)频墓に?,得到了微波提取總?cè)频淖罴褩l件,但提取率較低,僅有1.48 mg/g。謝江寧等[12]采用正交試驗設(shè)計優(yōu)化超聲提取桑黃(P.igniarius)總?cè)频墓に?,得到了一種用時少、提取率高的方法,最終獲得了9.40 mg/g的提取率,但由于正交試驗的局限性不能很好地反映整個區(qū)域上因素的最佳組合。而于小鳳等[13]的研究雖然完善了這一點,但是用到的桑黃同為火木針層孔菌(P.igniarius),并非桑黃纖孔菌。研究表明桑樹桑黃中總?cè)频暮勘绕渌N的桑黃要高出許多[14],可見其相較其他種的桑黃具有更好的研究價值,但目前對桑樹桑黃提取總?cè)频墓に嚰捌潴w外活性的研究還少有報道。

        本研究選用超聲波法提取桑樹桑黃子實體中的三萜類化合物,并在單因素實驗的基礎(chǔ)上采用響應(yīng)面法優(yōu)選最佳方案,并對總?cè)七M行體外降血脂和抗氧化實驗,以期為開發(fā)天然有效的降血脂和抗氧化產(chǎn)品提供理論參考。

        1 材料與方法

        1.1 材料與儀器

        桑樹桑黃子實體 由浙江省農(nóng)業(yè)科學研究院提供;甘氨膽酸鈉(批號:Y28F10C81486)、?;悄懰徕c(批號:L1715127)、膽酸鈉(批號:L24F11F108900)、胃蛋白酶(批號:Y27M10J84202)、胰蛋白酶(批號:R11J10D92532)、齊墩果酸(批號:H04J9Z62784)、維生素C(批號:W12J11S115700) 上海源葉生物科技有限公司;考來烯胺散(20141108) 南京厚生藥業(yè)有限公司;1,1-二苯基-2-苦肼基(DPPH)(D9132)、2,2-聯(lián)氮-雙(3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸)(ABTS)(SLBF4684V)、TPTZ(K1319026)Sigma公司;其余試劑 均為分析純。

        UV-5500紫外可見分光光度計 上海元析儀器有限公司;RE-52旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器 上海亞榮生化儀器公司;SC-04離心機 安徽中科中佳科學儀器有限公司;HH-4數(shù)顯恒溫振蕩器 常州恒德儀器制造有限公司;DS-7510DTH超聲清洗機 小美超聲儀器有限公司;Nicolet6700傅立葉紅外光譜儀 美國ThermoElectron公司。

        1.2 實驗方法

        1.2.1 桑樹桑黃總?cè)频奶崛」に?先將桑樹桑黃子實體置于鼓風干燥箱中烘干至恒重,取出后將其粉碎,過40目篩,密封保存于玻璃罐中。稱取適量桑黃于錐形瓶中,加入75%的乙醇溶解,振蕩均勻后于55 ℃的溫度下進行超聲輔助提取,固定提取功率為300 W,頻率為40 kHz。45 min后取出,在4000 r/min的條件下離心18 min,收集上層清液于旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀中揮去溶劑[15],最后得到桑樹桑黃總?cè)铺崛∥铩?/p>

        1.2.2 單因素實驗

        1.2.2.1 料液比對總?cè)频寐实挠绊?按照提取溫度55 ℃,提取時間45 min,乙醇濃度為75%,分別考察料液比為1:5、1:10、1:15、1:20、1:25(g/mL)時對總?cè)频寐实挠绊憽?/p>

        1.2.2.2 提取溫度對總?cè)频寐实挠绊?按照料液比為1:20 (g/mL),提取時間45 min,乙醇濃度為75%,分別考察提取溫度為25、35、45、55、65 ℃時對總?cè)频寐实挠绊憽?/p>

        1.2.2.3 提取時間對總?cè)频寐实挠绊?按照料液比為1:20 (g/mL),提取溫度55 ℃,乙醇濃度為75%,分別考察提取時間為25、35、45、55、65 min時對總?cè)频寐实挠绊憽?/p>

        1.2.2.4 乙醇濃度對總?cè)频寐实挠绊?按照料液比為1:20 (g/mL),提取時間45 min,提取溫度55 ℃,分別考察乙醇濃度為55%、65%、75%、85%、95%時對總?cè)频寐实挠绊憽?/p>

        1.2.3 響應(yīng)面法優(yōu)化提取工藝 基于單因素實驗的結(jié)果,分別選擇提取時間(A)、乙醇濃度(B)、提取溫度(C)和料液比(D)為自變量,以總?cè)频牡寐首鳛轫憫?yīng)值,優(yōu)化總?cè)频奶崛」に?,試驗設(shè)計見表1。

        表1 響應(yīng)面試驗因素水平表Table 1 Factors and levels table of the response surface experiment

        1.2.4 總?cè)坪康臏y定

        1.2.4.1 齊墩果酸標準曲線的建立 準確稱取20 mg的齊墩果酸樣品溶解于乙醇中,定容至刻度線得到0.2 mg/mL的標準溶液。吸取標準液0、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6 mL于7支試管中,水浴蒸干溶劑。向其中加入0.2 mL 5%的香草醛-冰醋酸溶液(需新鮮配制),再加入0.8 mL高氯酸,振蕩均勻,在75 ℃恒溫水浴加熱18 min后取出快速冷卻,加入乙酸乙酯定容至5 mL,在552 nm處測定吸光值[16]。以吸光值為縱坐標,齊墩果酸的含量為橫坐標,繪制標準曲線,得到回歸方程為:y=10.161x+0.061,R2=0.9986。

        1.2.4.2 總?cè)坪康臏y定 選取20 mg的總?cè)铺崛∥镉谠嚬苤校凑?.2.4.1的方法(香草醛-冰醋酸-高氯酸)測定出吸光值,再根據(jù)標準曲線法計算出總?cè)频暮俊?側(cè)频牡寐拾聪率接嬎恪?/p>

        式中:W表示總?cè)频寐剩?;c表示根據(jù)吸光值計算出的溶液質(zhì)量濃度,mg/mL;D表示溶液稀釋倍數(shù);V表示定容的體積,mL;m表示桑黃的質(zhì)量,mg。

        1.2.5 桑樹桑黃總?cè)企w外降血脂活性試驗

        1.2.5.1 膽酸鹽標準曲線的建立 分別選取0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 μmol/mL的甘氨膽酸鈉2 mL于試管中,加入5 mL質(zhì)量分數(shù)為60%的濃硫酸溶液,在70 ℃的恒溫水浴鍋下反應(yīng)20 min,取出后用冰水冷卻5 min,在387 nm處測定吸光值[17]。以甘氨膽酸鈉含量為橫坐標,吸光值為縱坐標建立標準曲線,求得標準曲線線性方程為:y=1.312x+0.1244,R2=0.9969。

        ?;悄懰徕c和膽酸鈉建立標準曲線的方法同上,求得?;悄懰徕c的標準曲線線性方程為:y=2.677x-0.0702,R2=0.9954。膽酸鈉的標準曲線線性方程為:y=4.013x+0.1287,R2=0.9984。

        1.2.5.2 總?cè)平Y(jié)合膽酸鹽能力的測定 向錐形瓶中分別加入20、40、60、80、100 mg/mL的桑樹桑黃總?cè)? mL,接著依次加入10 mg/mL的胃蛋白酶1 mL和10 μmol/mL的鹽酸溶液3 mL,在37 ℃的條件下恒溫振蕩培養(yǎng)1 h。再用10 μmol/mL的氫氧化鈉溶液將pH調(diào)節(jié)至6.4,然后加入配制好的10 mg/mL胰蛋白酶4 mL,在37 ℃的條件下恒溫振蕩培養(yǎng)1 h。加入1 μmol/mL的膽酸鹽4 mL,在37 ℃的條件下恒溫振蕩培養(yǎng)1 h,將消化物轉(zhuǎn)入離心管,4000 r/min離心18 min,取上清液測定吸光度,根據(jù)標準曲線法計算膽酸鹽結(jié)合量[18]。以80 mg/mL考來烯胺作為陽性對照,評價總?cè)茖δ懰猁}的結(jié)合能力。

        1.2.6 桑樹桑黃總?cè)企w外抗氧化活性試驗

        1.2.6.1 對DPPH自由基清除能力的測定 參考Heleno等[19]的方法,首先制備0.02 mmol/L的DPPH乙醇溶液,分別吸取2 mL于不同的試管中,向其中加入0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、1、1.5 mg/mL的總?cè)铺荻热芤? mL,混勻,在暗室內(nèi)常溫反應(yīng)0.5 h,然后在517 nm處測定其吸光值。以總?cè)频囊掖既芤鹤鳛榭瞻捉M,DPPH的乙醇溶液作為對照組,以VC作為陽性對照品,根據(jù)下式計算DPPH自由基清除率:

        式中:Ao表示對照組的吸光值;As表示總?cè)婆cDPPH溶液的吸光值;A1表示空白組的吸光值。

        1.2.6.2 對ABTS自由基清除能力的測定 參考Singh等[20]的方法制備ABTS工作液:取7 mmol/L的ABTS水溶液0.5 mL和2.45 mmol/L的過硫酸鉀溶液0.5 mL,混勻,在暗室內(nèi)反應(yīng)15 h,得到ABTS母液。將ABTS母液用磷酸緩沖液稀釋至其在734 nm處的吸光值為0.7±0.1,即得ABTS工作液。

        配制0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、1、1.5 mg/mL的總?cè)铺荻热芤杭尤氲紸BTS工作液中,混勻后在734 nm處測定吸光值。以磷酸緩沖液與總?cè)频奈庵底鳛榭瞻捉M吸光值,蒸餾水與ABTS的吸光值作為對照組吸光值。以VC作為陽性對照品,根據(jù)下式計算ABTS自由基清除率:

        式中:Ao表示對照組的吸光值;As表示總?cè)婆cABTS溶液的吸光值;A1表示空白組的吸光值。

        1.2.6.3 鐵離子還原法測定 參考Benzie等[21]的方法用10 mmol/L的TPTZ、0.3 mol/L的乙酸和20 mmol/L的三氯化鐵溶液以1:10:1的體積比制備FRAP溶液。

        建立硫酸亞鐵標準曲線[22]:分別選取0.5、1.5、2.5、3.5、4.5 mmol/L的硫酸亞鐵標準溶液0.08 mL于試管中,加入4 mL的FRAP溶液,混合均勻后置于37 ℃的恒溫水浴中反應(yīng)10 min,在593 nm處測定其吸光值,以硫酸亞鐵的濃度為橫坐標,吸光值為縱坐標,得到的標準曲線方程為:y=0.267x-0.0266,R2=0.9919。

        精確吸取0.5、1、2、3、4 mg/mL的總?cè)迫芤河谠嚬苤?,加?.5 mL的FRAP溶液,振蕩均勻后在37 ℃的水浴鍋中反應(yīng)10 min,于593 nm處測定吸光度值。分別以0.1、0.2、0.3、0.4、0.5 mg/mL的VC作為陽性對照品,各物質(zhì)的抗氧化值以FRAP值表示:以標準曲線法計算出硫酸亞鐵的濃度即為FRAP值[23]。

        1.3 數(shù)據(jù)處理

        試驗數(shù)據(jù)使用SPSS 21.0軟件進行統(tǒng)計學分析,試驗圖表均采用Origin 2017軟件進行繪制,響應(yīng)面試驗使用Design-Expert 8.0.6進行實驗設(shè)計和數(shù)據(jù)分析,每組試驗均重復3次,試驗結(jié)果以平均值±標準差來表示。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 單因素實驗

        2.1.1 料液比對總?cè)频寐实挠绊?由圖1可知,在料液比為1:5~1:20(g/mL)時,總?cè)频牡寐孰S著料液比的增大而增大,這是因為適當高濃度的料液比加快了傳質(zhì)過程[24]。但當料液比超過1:20 (g/mL)時,總?cè)频牡寐史炊陆?,由于乙醇的體積過少使得與溶劑的接觸面積減小,受到的超聲波作用也減少,使得總?cè)频寐氏陆担赃x擇料液比為1:20(g/mL)。

        圖1 料液比對總?cè)频寐实挠绊慒ig.1 Effect of solvent-to-solid ratio on extraction of total triterpenoids

        2.1.2 提取時間對總?cè)频寐实挠绊?如圖2所示,總?cè)频牡寐孰S超聲時間的延長呈現(xiàn)先升高再降低的趨勢,當時間為45 min時達到最大值。分析其原因,超聲波形成大量空化氣泡,增加了溶劑與溶質(zhì)之間的傳質(zhì)和相互作用[15]。但當超聲時間逐漸延長時,長時間的加熱會使三萜物質(zhì)的結(jié)構(gòu)遭到破壞,影響了提取效率[25]。因此45 min的提取時間為最佳選擇。

        圖2 提取時間對總?cè)频寐实挠绊慒ig.2 Effect of reaction time on extraction of total triterpenoids

        2.1.3 提取溫度對總?cè)频寐实挠绊?圖3表明,溫度為25~55 ℃時總?cè)频牡寐试谥饾u遞增,但溫度在55~65 ℃區(qū)間時,總?cè)频寐史炊陆?。其原因是當溫度適當升高時,可以加快物質(zhì)分子之間的運動速度,使總?cè)苹衔镏g傳導性增加,溶質(zhì)可以充分溶解在其中。但當溫度過高時可能會使桑黃總?cè)频慕Y(jié)構(gòu)遭到破壞、氧化、分解[26-27],因此選擇55 ℃為最佳提取溫度。

        2.1.4 乙醇濃度對總?cè)频寐实挠绊?乙醇濃度為55%~75%時,總?cè)频牡寐孰m然沒有大幅度的增加,但當濃度超過75%時,總?cè)频牡寐书_始下降??赡苁且驗楫斠掖紳舛冗^大時,其他醇溶性雜質(zhì)溶出,導致三萜類組分的溶出量相對減少[28],因此選擇乙醇濃度75%為最佳提取濃度。

        圖3 提取溫度對總?cè)频寐实挠绊慒ig.3 Effect of reaction temperature on extraction of total triterpenoids

        圖4 乙醇濃度對總?cè)频寐实挠绊慒ig.4 Effect of reaction ethanol concentration on extraction of total triterpenoids

        2.2 響應(yīng)面法優(yōu)化

        2.2.1 響應(yīng)面模型建立與結(jié)果 應(yīng)用Design-Expert軟件對實驗結(jié)果進行多元回歸擬合分析,試驗結(jié)果見表2,得到桑樹桑黃總?cè)频寐逝c超聲提取各因素變量間的二次方程模型為 Y=11.94+0.45A+0.28B+0.5C+0.37D+0.24AB+0.18AC+0.28AD+0.38BC-0.13BD+0.33CD-0.94A2-0.6B2-0.74C2-0.68D2。

        由表3可知,此模型P<0.0001,說明該回歸模型的差異性極顯著,配合失擬項的值0.1771>0.05,這表明在上述區(qū)間內(nèi)整個模型擬合度佳;該模型的R2=0.9686,表面該模型的線性關(guān)系顯著,調(diào)整后的Radj2=0.9372,表明模型可以解釋93.72%的響應(yīng)變異性。

        從試驗的方差分析中得出方程中的A、B、C、D項對總?cè)频牡寐视绊懢鶚O顯著(P<0.01),其中C項F值最大,說明對總?cè)频寐视绊戄^大的因素是提取溫度,即各因素對試驗結(jié)果的影響程度分別是:提取溫度>提取時間>料液比>乙醇濃度,因此在試驗中應(yīng)嚴格控制提取溫度。在交互項中,AC與BD的交互作用不顯著(P>0.05),AB與AD的交互作用顯著(P<0.05),BC與CD的交互作用極顯著(P<0.01)。由此可得,乙醇濃度與提取溫度、提取溫度與料液比兩兩因素之間的交互作用對總?cè)频寐实挠绊戄^大。二次項A2、B2、C2、D2影響均極顯著(P<0.01)。

        響應(yīng)面圖能較為直觀地反映出各因素間交互作用對響應(yīng)值的影響,曲面越陡峭、傾斜程度越高說明影響越大[29]。由圖5可知,AB、AD、BC、CD的曲面較為陡峭,說明這些因素之間的交互作用顯著,而AC與BD的曲面彎曲程度較小,表明交互作用不顯著,這與方差分析的結(jié)果基本一致。

        表2 響應(yīng)面設(shè)計與試驗結(jié)果Table 2 Design and results of response surface experiment

        2.2.2 最優(yōu)提取條件 對模型進行最優(yōu)工藝的分析,得到最佳提取條件為:提取時間49.35 min、乙醇濃度79.66%、提取溫度61.22 ℃,料液比為1:22.35(g/mL),預測桑樹桑黃總?cè)频淖罡叩寐士蛇_到12.35%。為了便于操作,將此四因素的水平分別調(diào)整為提取時間49 min、乙醇濃度為80%、提取溫度為61 ℃,料液比為1:22 (g/mL)。調(diào)整后的驗證試驗表明,總?cè)频寐士蛇_12.32%±0.17%,非常接近預測值,表明此模型可以用于分析桑樹桑黃總?cè)铺崛」に嚨膬?yōu)化。

        表3 方差分析Table 3 Analysis of variances

        2.3 桑樹桑黃總?cè)企w外結(jié)合膽酸鹽研究結(jié)果

        2.3.1 桑樹桑黃總?cè)茖δ懰猁}的結(jié)合量 桑樹桑黃總?cè)婆c膽酸鹽的結(jié)合能力如圖6所示,在特定范圍內(nèi),總?cè)频馁|(zhì)量濃度與膽酸鹽的結(jié)合量呈正相關(guān),當質(zhì)量濃度為20~60 mg/mL時,總?cè)茖Ω拾蹦懰徕c、?;悄懰徕c和膽酸鈉的結(jié)合量均顯著性升高(P<0.05),在質(zhì)量濃度為80~100 mg/mL時,總?cè)婆c膽酸鹽的結(jié)合接近飽和狀態(tài),其與?;悄懰徕c、膽酸鈉的結(jié)合量無顯著性變化(P>0.05),對甘氨膽酸鈉的結(jié)合量顯著下降(P<0.05)。在質(zhì)量濃度為80 mg/mL時對膽酸鹽的結(jié)合量最大。

        2.3.2 桑樹桑黃總?cè)频捏w外降血脂活性 考來烯胺(Colestyramine)是一種常見的降血脂藥物,主要作用于體內(nèi)的膽酸或膽固醇,能有效改善高血脂癥患者的血脂水平,具有較好的臨床療效[30]。實驗以80 mg/mL考來烯胺結(jié)合膽酸鹽的能力作為對照[31],測定同質(zhì)量濃度下桑樹桑黃總?cè)婆c膽酸鹽的結(jié)合量,并將結(jié)果作為數(shù)值比率進行比較。結(jié)果如表4所示,總?cè)茖Ω拾蹦懰徕c、?;悄懰徕c和膽酸鈉的結(jié)合能力相當于同劑量考來烯胺的50.93%、52.14%和43.06%,說明桑樹桑黃總?cè)凭哂休^好的結(jié)合膽酸鹽的能力。膽酸鹽被結(jié)合后含量減少,會促使肝臟中的膽固醇降解生成膽酸鹽以維持動態(tài)平衡,從而使膽固醇降低達到降血脂的目的[17]。因此可以表明桑樹桑黃總?cè)凭哂辛己玫捏w外降血脂活性。

        圖5 各因素交互作用的響應(yīng)面圖和等高線圖Fig.5 Response surface and contour plots of the interaction of various factors

        圖6 桑樹桑黃總?cè)茖δ懰猁}的結(jié)合量Fig.6 The binding amount of total triterpenoids to cholic acid salt in Inonotue sanghuang

        2.4 桑樹桑黃總?cè)企w外抗氧化結(jié)果

        2.4.1 清除DPPH自由基的能力 VC和桑樹桑黃總?cè)茖PPH自由基的清除能力如圖7所示,在試驗范圍內(nèi),兩種物質(zhì)的質(zhì)量濃度越大,清除率越高。當VC的質(zhì)量濃度達到1.0 mg/mL時,其清除作用逐漸平穩(wěn),但總體的清除能力均大于桑樹桑黃總?cè)?。在質(zhì)量濃度為0.1~1.5 mg/mL范圍內(nèi),桑樹桑黃總?cè)魄宄鼶PPH自由基的IC50為0.304 mg/mL,VC的IC50為0.060 mg/mL。當質(zhì)量濃度達到1.5 mg/mL時,總?cè)频那宄饔眠_到了86.45%±2.16%,相當于同質(zhì)量濃度VC的93%,證明桑樹桑黃總?cè)凭哂辛己玫那宄鼶PPH自由基的能力。

        2.4.2 清除ABTS自由基的能力 VC和桑樹桑黃總?cè)茖BTS自由基的清除能力如圖8所示,在試驗范圍內(nèi),兩種物質(zhì)呈現(xiàn)出良好的劑量-效應(yīng)關(guān)系,但VC的清除能力總體大于總?cè)啤8鶕?jù)線性回歸方程分析,總?cè)魄宄鼳BTS的自由基的IC50值為0.520 mg/mL,VC的IC50為0.197 mg/mL。當質(zhì)量濃度為1.5 mg/mL時,總?cè)频那宄饔眠_到了80.34%±2.21%,相當于同質(zhì)量濃度VC的87%,證明桑樹桑黃總?cè)凭哂辛己玫那宄鼳BTS自由基的能力。

        表4 桑樹桑黃總?cè)茖δ懰猁}的結(jié)合能力Table 4 The binding capacity of total triterpenoids from Inonotus sanghuang to bile salts in vitro

        圖7 桑樹桑黃總?cè)频腄PPH自由基清除能力Fig.7 DPPH free radical scavenging ability of total triterpenoids from Inonotus sanghuang

        圖8 桑樹桑黃總?cè)频腁BTS自由基清除能力Fig.8 ABTS free radical scavenging ability of total triterpenoids from Inonotus sanghuang

        2.4.3 鐵離子的還原能力 Fe3+-TPTZ在抗氧化物質(zhì)的作用下時會轉(zhuǎn)變成Fe2+-TPTZ,溶液的顏色也會由黃綠色變成藍色,在597 nm處有最大吸光值[32]。當質(zhì)量濃度為0.5 mg/mL時,VC和總?cè)频牡腇RAP值分別為8.01和2.49 mmol/L,VC的還原能力大于總?cè)?。但當總?cè)频馁|(zhì)量濃度為4.0 mg/mL時,其FRAP值可達7.54 mmol/L。由此可見桑樹桑黃總?cè)频倪€原能力雖小于VC,但當達到足夠大的質(zhì)量濃度時,其還原能力也會提高。

        3 結(jié)論

        選用超聲波法提取桑樹桑黃子實體中的三萜類化合物,在單因素試實驗的基礎(chǔ)上采用響應(yīng)面法優(yōu)化了提取桑樹桑黃總?cè)频墓に?,結(jié)果表明,提取時間49 min、乙醇濃度為80%、提取溫度為61 ℃,料液比為1:22 (g/mL),總?cè)频寐士蛇_12.32%±0.17%,與模型預測值非常接近,說明此工藝參數(shù)可行,且總?cè)频牡寐矢哂谥暗难芯拷Y(jié)果[11-13]。

        桑樹桑黃總?cè)凭哂休^好的體外降血脂活性,且在一定范圍內(nèi),總?cè)频馁|(zhì)量濃度越大結(jié)合膽酸鹽的能力越強,在質(zhì)量濃度為80 mg/mL時結(jié)合量最大。其體外結(jié)合甘氨膽酸鈉、?;悄懰徕c、膽酸鈉的能力為同等劑量考來烯胺的50.93%、52.14%和43.06%。桑樹桑黃總?cè)七€具有較好的還原能力和抗氧化活性,其清除DPPH和ABTS自由基的IC50值分別為0.304和0.520 mg/mL,其FRAP值可達7.54 mmol/L,雖然低于陽性對照品VC,但具有一定的參考價值。

        圖9 VC和桑樹桑黃總?cè)频倪€原能力Fig.9 The reduction capacity of VC and total triterpenoids from Inonotus sanghuang

        本文對桑樹桑黃的降血脂和抗氧化活性進行了初步的探索,為開發(fā)桑樹桑黃提供了一定的理論參考。但桑樹桑黃生長周期長,數(shù)量少,對其有效組分的分離純化亟待進一步探討,以提高利用率;且桑樹桑黃總?cè)瞥煞謴碗s,對其構(gòu)效關(guān)系及體內(nèi)降血脂抗氧化活性也需要進行深入研究。

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