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        賈第蟲硫氧還蛋白對小鼠腹腔巨噬細(xì)胞炎性細(xì)胞因子分泌的影響

        2022-05-28 07:20:04梁敏趙盼盼王曉岑李新張楠張西臣李建華宮鵬濤張媛媛
        中國生物制品學(xué)雜志 2022年5期
        關(guān)鍵詞:小鼠信號

        梁敏,趙盼盼,王曉岑,李新,張楠,張西臣,李建華,宮鵬濤,張媛媛

        1.吉林大學(xué)動(dòng)物醫(yī)學(xué)學(xué)院,吉林 長春 130062;2.吉林大學(xué)人獸共患病研究所,吉林 長春 130062

        十二指腸賈第蟲(Giardia duodenalis,簡稱賈第蟲)是一種重要的人獸共患寄生性原蟲,通過污染的食物或水經(jīng)口感染人及多種哺乳動(dòng)物導(dǎo)致賈第蟲?。?],引發(fā)腹痛、腹瀉、消化不良等癥狀[2]。由于耐藥性、致畸、致突變等問題的存在[3],至今尚無防治賈第蟲病的藥物。先天免疫是機(jī)體抵御病原入侵的重要屏障,研究賈第蟲與宿主先天免疫的關(guān)系,有利于尋找防治賈第蟲病的新型疫苗和藥物的作用靶點(diǎn),為賈第蟲的防治提供新的思路。

        硫氧還蛋白(thioredoxin,TRX)是一類調(diào)節(jié)活性氧代謝的氧化還原活性蛋白,在抗氧化系統(tǒng)、調(diào)控細(xì)胞激活與增殖、參與免疫反應(yīng)調(diào)節(jié)、維持蛋白功能活性位點(diǎn)狀態(tài)和細(xì)胞存活等方面發(fā)揮重要作用[4-6]。在HEK293 細(xì)胞內(nèi),人TRX1 可抑制由腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor α,TNF-α)引起的核轉(zhuǎn)錄因子-κB(nuclear factor kappa-light-chain-enhancer of activated B cells,NF-κB)、絲裂原活化蛋白激酶(mitogenactivated protein kinase,MAPK)的活化[7],且TRX1對c-Jun 氨基末端激酶信號通路(JNK signaling pathway,JNK)和p38 絲裂原活化蛋白激酶(p38 mitogenactivated protein kinase,p38MAPK)通路的激活與細(xì)胞類型有關(guān)[8-10]。在原蟲、吸蟲等研究中,TRX 作為機(jī)體TRX 系統(tǒng)的組成部分,在抗氧化應(yīng)激方面發(fā)揮重要作用[11-12]。賈第蟲編碼TRX 的基因,且TRX是賈第蟲胞外囊泡蛋白組分之一[13],但關(guān)于賈第蟲硫氧還蛋白(Giardia duodenalis thioredoxin,GdTRX)對先天免疫調(diào)節(jié)的影響尚未見報(bào)道。

        本實(shí)驗(yàn)利用大腸埃希菌原核表達(dá)系統(tǒng)獲得重組賈第蟲硫氧還蛋白(rGdTRX),并對rGdTRX 調(diào)控小鼠腹腔巨噬細(xì)胞(peritoneal macrophages,PMs)中先天免疫調(diào)節(jié)機(jī)制進(jìn)行研究,為GdTRX 免疫功能及其宿主抗賈第蟲免疫機(jī)制的研究奠定基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 蟲株、質(zhì)粒及菌株 十二指腸賈第蟲WB 株、pET28a 空載體為吉林大學(xué)動(dòng)物醫(yī)學(xué)學(xué)院寄生蟲實(shí)驗(yàn)室凍存并提供;大腸埃希菌感受態(tài)DH5α、BL21(DE3)購自北京全式金生物技術(shù)股份有限公司。

        1.2 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 野生型C57BL/6 小鼠,雌性,6 ~ 8周齡,體重15 ~ 18 g,購自遼寧長生實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心,動(dòng)物合格證號:SCXK(遼)2020-0001。所有與動(dòng)物相關(guān)的實(shí)驗(yàn)均按照中華人民共和國動(dòng)物倫理程序和指南進(jìn)行。

        1.3 主要試劑 RPMI1640 培養(yǎng)基、胎牛血清、青鏈霉素購自以色列BI 公司;酵母提取物、NaCl、K2HPO4、KH2PO4、葡萄糖、L-cysteine HCl、卡那霉素、IPTG、PCR 產(chǎn)物回收試劑盒購自生工生物工程(上海)股份有限公司;巰基乙酸培養(yǎng)基購自美國BD Biosciences 公司;Primer star Mix、EcoRⅠ和NotⅠ快切酶購自日本TaKaRa 公司;質(zhì)粒提取試劑盒、高效無縫克隆試劑盒(MC40101)購自莫納生物科技有限公司;His 標(biāo)簽蛋白純化試劑盒購自北京康為世紀(jì)生物技術(shù)公司;TritonX-114、p38MAPK/ERK 抑制劑購自美國Sigma 公司;牛膽粉、枸櫞酸鐵銨、酪蛋白、維生素C-Na 購自德國默克公司;兔抗P-p38MAPK、p38MAPK、P-ERK1/2、ERK1/2 以及鼠抗β-actin抗體購自美國Abcam 公司;羊抗兔IgG-HRP 和羊抗鼠IgG-HRP 購自北京Proteintech 公司;小鼠IL-6、IL-12、TNF-α 細(xì)胞因子檢測試劑盒購自美國Thermo Scientific 公司。

        1.4 賈第蟲滋養(yǎng)體的培養(yǎng) 將賈第蟲從液氮罐中取出,迅速在37 ℃水浴鍋中融化,室溫2000 × g 離心5 min,棄上清,加入1 mL 改良TYI-S-33 賈第蟲培養(yǎng)液(每20 mL 培養(yǎng)基含4 g 蛋白胨、2 g 酵母提取物、0.4 g NaCl、0.26 g K2HPO4、0.12 g KH2PO4、2 g 葡萄糖、0.2 g 牛膽粉、0.2 g L-cysteine HCl、0.04 g 維生素C-Na、200 μL 慶大霉素、660 μL 5 mol/L NaOH、2 mL 雙抗、1 mL 枸櫞酸鐵銨、25 mL 胎牛血清)重懸后,轉(zhuǎn)入?yún)捬跖囵B(yǎng)瓶中,加滿賈第蟲培養(yǎng)液,置37 ℃恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng)。

        1.5 PMs 的分離及培養(yǎng) 小鼠腹腔內(nèi)注射2 mL 巰基乙酸培養(yǎng)基,3 ~ 5 d 內(nèi)斷頸處死,浸泡于75%酒精中10 min;打開小鼠腹部暴露腹膜,用PBS 沖洗腹腔,將收集的細(xì)胞懸液1000 × g 離心10 min;計(jì)數(shù)后,按3 × 106個(gè)/ 孔鋪至6 孔細(xì)胞培養(yǎng)板,用含10%胎牛血清、1%雙抗的RPMI1640 培養(yǎng)基于37 ℃,5% CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)6 h,換液繼續(xù)培養(yǎng)備用。

        1.6 目的基因的擴(kuò)增 根據(jù)GdTRX 基因序列(GL-50803_00104250)和原核表達(dá)載體pET28a 的多克隆位點(diǎn)設(shè)計(jì)引物,GdTRX-F:5′-ATGGGTCGCGGATCCGAATTCATGCCCTTCAGCCCCATTT-3′(下劃線部分為EcoRⅠ酶切位點(diǎn)),GdTRX-R:5′-TGGTGGTGCTCGAGTGCGGCCGCCTAGAGCATGGCGGCCACG-3′(下劃線部分為NotⅠ酶切位點(diǎn)),擴(kuò)增片段大小為372 bp。引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。收集對數(shù)生長期的賈第蟲滋養(yǎng)體,提取總RNA 反轉(zhuǎn)錄為cDNA,以其為模板,PCR 擴(kuò)增GdTRX基因。擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳鑒定。

        1.7 重組表達(dá)質(zhì)粒的構(gòu)建 擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)試劑盒回收純化后,用無縫克隆連接酶將GdTRX 基因與經(jīng)EcoRⅠ和NotⅠ酶切的pET28a 空載體于50 ℃,15 min 條件下連接,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化感受態(tài)大腸埃希菌DH5α,用含30 μg/mL 卡那霉素的LB 固體培養(yǎng)基于37 ℃過夜培養(yǎng);提取質(zhì)粒,進(jìn)行雙酶切鑒定,鑒定正確的質(zhì)粒送庫美生物科技有限公司測序。

        1.8 rGdTRX 的表達(dá)及純化 將pET28a 空載體及測序正確的pET28a-GdTRX 質(zhì)粒分別轉(zhuǎn)入大腸埃希菌BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞,挑取單菌落至含30 μg/mL卡那霉素的LB 液體培養(yǎng)基中,37 ℃搖床過夜培養(yǎng);將菌液按1 ∶100 的比例轉(zhuǎn)接至含30 μg /mL 卡那霉素的LB液體培養(yǎng)基中,37 ℃搖床培養(yǎng)至A600約0.6~ 0.8 時(shí),加入IPTG 至終濃度為1 mmol/L,37 ℃,140 r/min 誘導(dǎo)表達(dá)6 h;將菌液8000×g 離心10 min,用Binding Buffer 重懸菌體,超聲破碎,再次離心,分離沉淀和上清,進(jìn)行12% SDS-PAGE 鑒定。用His 標(biāo)簽蛋白純化試劑盒對目的蛋白進(jìn)行純化并透析過夜,取部分透析后蛋白進(jìn)行12% SDS-PAGE 及Western blot 鑒定。

        1.9 內(nèi)毒素的去除 將終濃度為1%的TritonX-114加至透析后的rGdTRX 蛋白液中,劇烈振蕩混勻,冰浴10 min,隨后37 ℃水浴10 min;12000 × g 離心10 min,吸取上層水相。將上述過程重復(fù)3 次,收集含有蛋白的上層水相,經(jīng)BCA 法測定濃度后,0.22 μm濾器過濾,-80 ℃冰箱保存。

        1.10 rGdTRX 對PMs 活力影響的檢測 采用CCK-8法。將PMs 以1×105個(gè)/孔的密度鋪至96 孔板,培養(yǎng)6 h;分別用PBS(未處理組)和濃度為5、10、20、50、80 μg/mL 的rGdTRX(實(shí)驗(yàn)組)刺激細(xì)胞24 h;每孔加入10 μL CCK-8 試劑,37 ℃,5% CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱孵育2 h;450 nm 波長處測定吸光度值。按下式計(jì)算不同濃度rGdTRX 的細(xì)胞存活率。

        細(xì)胞存活率(%)=(實(shí)驗(yàn)組吸光度值- 空白對照組吸光度值)/(未處理組吸光度值-空白對照組吸光度值)×100%

        1.11 炎性細(xì)胞因子分泌水平的檢測 采用ELISA 法。將PMs 以3 × 106個(gè)/ 孔的密度鋪至6 孔細(xì)胞培養(yǎng)板,貼壁后,用rGdTRX 孵育細(xì)胞0、0.5、1、2、4、6 h;收集培養(yǎng)上清,用細(xì)胞因子ELISA 檢測試劑盒檢測IL-6、IL-12 和TNF-α 水平。

        1.12 p38MAPK/ERK 信號通路激活情況的檢測 采用Western blot 法。將PMs 以3 × 106個(gè)/ 孔的密度鋪至6 孔細(xì)胞培養(yǎng)板,貼壁后,用PBS、His 標(biāo)簽蛋白、終濃度為50 μg/mL 的rGdTRX 孵育細(xì)胞0.5、1、2、4、6 h;收取全細(xì)胞蛋白后制樣,經(jīng)12% SDSPAGE 分離,濕轉(zhuǎn)法轉(zhuǎn)移至PVDF 膜上,5%脫脂奶粉室溫封閉2 h;分別加入兔抗P-p38MAPK、p38MAPK、P-ERK1/2、ERK1/2 及鼠抗β-actin 抗體(均1 ∶1000稀釋),4 ℃過夜;TBST 洗膜4 次,10 min/次,分別加入羊抗兔IgG-HRP 或羊抗鼠IgG-HRP(均1 ∶5000稀釋),室溫孵育1 h;TBST 洗膜4 次,10 min/次,用增強(qiáng)化學(xué)發(fā)光液(ECL)顯色,Image J 對目的蛋白條帶進(jìn)行灰度分析。

        1.13 p38MAPK/ERK 信號通路對炎性細(xì)胞因子分泌影響的檢測 采用ELISA 法。將小鼠PMs 以3 ×106個(gè)/ 孔的密度鋪至6 孔細(xì)胞培養(yǎng)板,貼壁后,分別用p38MAPK 抑制劑(SB203580,30 mmol/L)、ERK抑制劑(PD98059,40 mmol/L)或DMSO 預(yù)處理1 h,再用rGdTRX 孵育細(xì)胞24 h,設(shè)rGdTRX 單獨(dú)刺激組。分別收集培養(yǎng)上清,用細(xì)胞因子ELISA 檢測試劑盒檢測IL-6、IL-12 和TNF-α 水平。

        1.14 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 所有試驗(yàn)重復(fù)3 次。采用Graph-Pad Prism 軟件對組內(nèi)數(shù)據(jù)進(jìn)行單因素方差分析,數(shù)據(jù)使用均數(shù)± 標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,以P < 0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 目的基因擴(kuò)增產(chǎn)物及重組表達(dá)質(zhì)粒的鑒定 1%瓊脂糖凝膠電泳分析顯示,GdTRX 基因擴(kuò)增產(chǎn)物大小為372 bp,與預(yù)期一致,見圖1。質(zhì)粒pET28a-GdTRX經(jīng)雙酶切鑒定證明構(gòu)建正確,測序結(jié)果與GenBank上登錄的序列相符,見圖2。

        2.2 表達(dá)及純化產(chǎn)物的鑒定 12% SDS-PAGE 分析發(fā)現(xiàn),rGdTRX 在上清和沉淀均有表達(dá),見圖3。用His 標(biāo)簽蛋白純化試劑盒純化后,表達(dá)的rGdTRX 相對分子質(zhì)量約20000,見圖4;透析純化后,12% SDSPAGE 及Western blot 分析顯示,純化的rGdTRX 相對分子質(zhì)量約為20000,見圖5 和圖6。

        圖3 rGdTRX 表達(dá)的SDS-PAGE 分析Fig.3 SDS-PAGE profile of expressed rGdTRX

        圖4 His 標(biāo)簽蛋白純化的rGdTRX 的SDS-PAGE 分析Fig.4 SDS-PAGE profile of rGdTRX purified with His tag

        圖5 透析純化的rGdTRX 的SDS-PAGE 分析Fig.5 SDS-PAGE profile of rGdTRX purified by dialysis

        圖6 透析純化的rGdTRX 的Western blot 分析Fig.6 Western blotting of rGdTRX purified by dialysis

        2.3 rGdTRX對PMs 活力的影響 CCK-8 法檢測結(jié)果顯示,與空白對照組相比,rGdTRX 在50 μg /mL濃度下對PMs 活力無影響(F5,12= 3.780,P > 0.05),在80 μg/mL 下,對PMs 活力有輕微抑制(F5,12=3.780,P > 0.05),見圖7。因此,選擇濃度50 μg/mL 的rGdTRX 對PMs 進(jìn)行刺激。

        圖7 rGdTRX 刺激PMs 的安全濃度篩選Fig.7 Screening of safe concentration of rGdTRX for stimulating PMs

        2.4 rGdTRX 調(diào)控MAPK 信號通路對炎性細(xì)胞因子分泌的影響 ELISA 檢測結(jié)果顯示,與空白對照組相比,在6 h 內(nèi),rGdTRX 能夠時(shí)間依賴性地促進(jìn)IL-6、IL-12 和TNF-α 細(xì)胞因子的分泌,且在6 h 時(shí)分泌水平最高(F5,12分別為18.73、54.57 和240.0,P 均< 0.0001),見圖8。表明rGdTRX 可誘導(dǎo)PMs中IL-6、IL-12 和TNF-α 的分泌。

        圖8 rGdTRX 誘導(dǎo)PMs 中IL-6(A)、IL-12(B)和TNF-α(C)細(xì)胞因子的分泌情況Fig.8 Secretions of inflammatory cytokines IL-6(A),IL-12(B)and TNF-α(C)inducted by rGdTRX

        2.5 p38MAPK/ERK 信號通路激活情況 Western blot 分析顯示,與PBS 對照組相比,rGdTRX 刺激PMs可引起p38MAPK 和ERK 的磷酸化(F8,18分別為81.79和158.7,P 均<0.0001);p38MAPK 2 h 和ERK 1 h的磷酸化水平達(dá)到峰值,之后隨時(shí)間延長蛋白磷酸化水平逐漸恢復(fù)。見圖9 和圖10。表明rGdTRX 可激活PMs 的MAPK 信號通路。

        圖9 rGdTRX 對MAPK 信號通路激活的Western blot分析Fig.9 Western blotting of activation of MAPK signaling pathway by rGdTRX

        圖10 p38MAPK(A)和ERK(B)的相對磷酸化水平Fig.10 Relative phosphorylation levels of p38MAPK(A)and ERK(B)

        2.6 p38MAPK/ERK 信號通路對炎性細(xì)胞因子分泌的影響 ELISA 檢測結(jié)果顯示,與空白對照組、DMSO 組相比,rGdTRX 組IL-6、IL-12 和TNF-α 細(xì)胞因子的分泌量均顯著升高(F4,10分別為23.52、26.82 和54.32,P 均< 0.0001)。與rGdTRX 單獨(dú)刺激組相比,SB203580 預(yù)處理組IL-6 分泌量降低約2.3 倍(t = 3.434,df = 4,P < 0.05),IL-12 分泌量降低約3.5 倍(t = 4.448,df = 4,P < 0.05),TNF-α分泌量降低約1.8 倍(t = 4.124,df = 4,P < 0.05);PD98059 預(yù)處理組IL-6 分泌量降低約2.5 倍(t =3.754,df = 4,P < 0.05),IL-12 分泌量降低約2.9倍(t = 3.978,df = 4,P < 0.05),TNF-α 分泌量降低約1.7 倍(t = 5.267,df = 4,P < 0.01)。見圖11。阻斷p38MAPK/ERK 信號通路后,rGdTRX 介導(dǎo)的細(xì)胞因子分泌降低,表明rGdTRX 通過p38MAPK /ERK 信號通路調(diào)控宿主細(xì)胞炎性細(xì)胞因子IL-6、IL-12 和TNF-α 的分泌。

        圖11 p38MAPK/ERK 信號通路對IL-6(A)、IL-12(B)和TNF-α(C)炎性細(xì)胞因子分泌的影響Fig.11 Effect of p38MAPK/ERK signaling pathway on secretions of inflammatory cytokines IL-6(A),IL-12(B)and TNF-α(C)

        3 討論

        宿主的先天免疫系統(tǒng)在抗寄生蟲感染中發(fā)揮重要作用。賈第蟲感染小鼠能夠引起IL-6、IL-12、TNF-α 等多種細(xì)胞因子水平上調(diào)并發(fā)揮抗賈第蟲感染作用[14-15],賈第蟲分泌的胞外囊泡同樣能夠誘導(dǎo)小鼠PMs 分泌IL-6、TNF-α 等細(xì)胞因子,炎性細(xì)胞因子分泌是宿主抗賈第蟲感染的重要手段之一。TRX是賈第蟲胞外囊泡的重要組分[13,16],在賈第蟲誘導(dǎo)的宿主免疫應(yīng)答中可能扮演重要角色。本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),rGdTRX 能引起PMs 炎性細(xì)胞因子IL-6、IL-12、TNF-α 的分泌,提示rGdTRX 在賈第蟲激活宿主先天免疫應(yīng)答過程中發(fā)揮重要作用。

        TRX 在機(jī)體炎癥反應(yīng)、免疫反應(yīng)、細(xì)胞增殖和存活等過程中發(fā)揮重要作用[17-18]。TRX 能夠促進(jìn)淋巴細(xì)胞增殖及IL-12 分泌,進(jìn)而增強(qiáng)機(jī)體免疫反應(yīng),且能夠通過JNK、p38MAPK 通路參與細(xì)胞凋亡等過程[4,19]。研究表明,MAPK 信號通路有調(diào)節(jié)細(xì)胞增殖、分化以及調(diào)控細(xì)胞因子分泌等作用[20]。本實(shí)驗(yàn)前期研究發(fā)現(xiàn),賈第蟲、賈第蟲胞外囊泡均能激活宿主細(xì)胞p38MAPK 和ERK 信號通路,引起炎癥反應(yīng)的發(fā)生[13,16,21]。本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),rGdTRX 同樣可激活小鼠PMs 的MAPK 信號通路;p38MAPK/ERK 信號通路被抑制后,rGdTRX 引起的炎性細(xì)胞因子分泌顯著降低,表明rGdTRX 誘導(dǎo)炎性細(xì)胞因子分泌能夠通過p38MAPK、ERK 信號通路調(diào)控,本文為賈第蟲激活宿主先天免疫反應(yīng)中關(guān)鍵分子的研究提供了新的理論依據(jù)。另一方面,在陰道毛滴蟲、瘧原蟲、阿米巴原蟲的研究中,TRX 系統(tǒng)是其抗氧化應(yīng)激反應(yīng)的主要防線[22],也是陰道毛滴蟲適應(yīng)微氧生活的可能原因。賈第蟲TRX 系統(tǒng)具有同等功能,然而其機(jī)制仍有待進(jìn)一步研究[23]。

        綜上所述,rGdTRX 能通過p38MAPK、ERK 信號通路調(diào)控小鼠PMs 炎性細(xì)胞因子IL-6、IL-12 和TNF-α 的分泌,本實(shí)驗(yàn)為揭示rGdTRX 在賈第蟲誘導(dǎo)宿主細(xì)胞先天免疫應(yīng)答機(jī)制中起到的關(guān)鍵作用提供了重要理論支撐,rGdTRX 是賈第蟲激活宿主先天免疫的關(guān)鍵分子之一。

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