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        基于UHPLC-Q-TOF/MS法同時(shí)檢測(cè)豬肉中主要抗生素類獸藥殘留

        2022-05-14 08:25:48蘇安祥楊文建胡秋輝
        食品工業(yè)科技 2022年10期
        關(guān)鍵詞:獸藥乙腈豬肉

        裴 斐,韓 萍,王 杰,馬 寧,蘇安祥,楊文建,胡秋輝

        (南京財(cái)經(jīng)大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,江蘇省糧油品質(zhì)控制及深加工技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇省現(xiàn)代糧食流通與安全協(xié)同創(chuàng)新中心,江蘇南京 210023)

        中國是豬肉生產(chǎn)消費(fèi)大國,獸藥殘留是影響豬肉食品安全的關(guān)鍵。如何提升獸藥殘留檢測(cè)手段、規(guī)范使用獸藥,成為了保證國民食品安全、促進(jìn)我國食品貿(mào)易的關(guān)鍵。其中,獸藥抗生素類藥物具有防治細(xì)菌、真菌感染,提高存活率的作用,常作為飼料添加劑廣泛用于生豬生長養(yǎng)殖[1]。一方面,獸藥抗生素可以通過抑制細(xì)菌細(xì)胞壁的合成或增強(qiáng)細(xì)菌細(xì)胞膜的通透性,抑制腐敗微生物的生長[2];另一方面,它可通過阻斷DNA回旋酶和抑制細(xì)菌DNA復(fù)制來實(shí)現(xiàn)抗菌作用[3]。如大環(huán)內(nèi)酯類和四環(huán)素類抗生素可通過與細(xì)菌核糖體或其反應(yīng)底物(tRNA、mRNA)相互作用,來抑制蛋白質(zhì)合成[4]。β-內(nèi)酰胺類抗生素通過阻礙細(xì)菌細(xì)胞壁的合成,從而導(dǎo)致細(xì)菌在低滲透壓環(huán)境下膨脹破裂死亡。這三類抗生素藥物由于其出色的治理能力,常被作為飼料添加劑促進(jìn)生豬生長養(yǎng)殖。然而,過度使用抗生素會(huì)引起細(xì)菌耐藥性和動(dòng)物體內(nèi)殘留問題。過量的抗生素不僅會(huì)危害人體和生態(tài)環(huán)境,并且農(nóng)產(chǎn)品中獸藥殘留過量會(huì)制約中國的出口貿(mào)易[5?6]。因此,建立快速、高效和可信的檢測(cè)抗生物類獸藥殘留方法具有重要意義。

        動(dòng)物源性食品存在基質(zhì)復(fù)雜、干擾物多等特點(diǎn),目標(biāo)化合物因其理化性質(zhì)差異導(dǎo)致其藥代動(dòng)力學(xué)不同,在動(dòng)物體內(nèi)分布也不同。由于獸藥殘留在樣品中含量極低,國內(nèi)外檢測(cè)標(biāo)準(zhǔn)均在向微量化、痕量化發(fā)展,因此樣品前處理技術(shù)是檢測(cè)獸藥殘留的關(guān)鍵。QuEChERS方法是以提取劑、吸水劑和吸附劑對(duì)樣品進(jìn)行前處理的一種技術(shù)手段。與消除基質(zhì)效果較差和有機(jī)溶劑消耗量大的液液萃取法[7],易堵塞填料和檢測(cè)成本高的固相萃取法[8?10]以及檢測(cè)時(shí)間長和高含水量樣品回收率較低的基質(zhì)固相分散技術(shù)[11?12]相比,QuEChERS方法省時(shí)、操作簡便、提取效果好。獸藥主要由極性或弱極性的小分子化合物組成,動(dòng)物性食品具有基質(zhì)成分復(fù)雜的特點(diǎn),因此儀器的高靈敏和高選擇性是獸藥殘留檢測(cè)技術(shù)發(fā)展的方向。液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法是獸藥檢測(cè)領(lǐng)域應(yīng)用最廣泛的一種技術(shù)。與精密度差和線性范圍窄的酶聯(lián)免疫法[13?15]、專一性強(qiáng)但無法同時(shí)檢測(cè)多種藥物殘留的分子印記技術(shù)[16]和靈敏度低,抗干擾能力差的高效液相色譜[17?18]相比,超高效液相色譜串聯(lián)四級(jí)桿飛行時(shí)間質(zhì)譜技術(shù)(UHPLC-Q-TOF/MS)利用UHPLC的高效分離性和MS檢測(cè)器的高靈敏性、高選擇性相結(jié)合,能夠?qū)ΛF藥殘留進(jìn)行微量、痕量分析[19?22]。朱萬燕等[23]采用QuEChERS結(jié)合UHPLC-Q-TOF/MS的方法,結(jié)果表明該方法簡便、快速、靈敏,適用于豬肉中多類獸藥殘留的同時(shí)檢測(cè)。李瑋等[24]采用QuEChERS結(jié)合UHPLC-Q-TOF/MS測(cè)定辣椒中多種禁用著色劑,結(jié)果表明該方法具有快速、靈敏、準(zhǔn)確和高通量等優(yōu)點(diǎn),可應(yīng)用于實(shí)際辣椒樣品中多種禁用著色劑的日常檢測(cè)。目前,將QuEChERS樣品前處理方法和UHPLC-Q-TOF/MS快速檢測(cè)方法結(jié)合用于抗生素類獸藥檢測(cè)鮮有相關(guān)報(bào)道。

        本文從色譜、質(zhì)譜條件和提取條件等參數(shù)進(jìn)行優(yōu)化,以期建立QuEChERS凈化結(jié)合UHPLC-QTOF/MS同步測(cè)定新鮮生豬肉中10種獸藥殘留批量檢測(cè)的分析方法,為今后抗生素類獸藥殘留檢測(cè)方面的研究提供必要的技術(shù)支持。

        1 材料與方法

        1.1 材料與儀器

        50份新鮮生豬肉樣品 采購于不同省市市場;甲酸、乙酸、乙酸銨、乙腈、甲醇均為色譜純 德國Merck公司;磷酸氫二鈉、檸檬酸、氫氧化鈉、氯化鈉、醋酸鈉、無水硫酸鈉、無水硫酸鎂和乙二胺四乙酸二鈉均為分析純 國藥集團(tuán)化學(xué)試劑公司;N-丙基乙二胺(PSA)、石墨化炭黑(GCB)、多點(diǎn)鍵合十八烷基(C18)、C18鍵合鋯膠(Z-SEP+)、佛羅里硅土(Florosil),10種標(biāo)準(zhǔn)品(純度≥98%):吉他霉素(kitasamycin, KTY)、泰樂霉素(Tylosin, TYL)、四環(huán)素(Tetracycline, TC)、土霉素(Oxytetracycline,OTC)、金霉素(Chlorotetracycline, CHTC)、強(qiáng)力霉素(Doxitard, DOX)、青霉素V(Phenoxymethylpenicillin, PEN-V)、阿莫西林(Amoxicillin, AMO)、氨芐西林(Ampicillin, AMP)、頭孢拉定(Cefradine, RAD) 美國Sigma公司。

        Triple TOF 5600+飛行時(shí)間質(zhì)譜儀(配有電噴霧離子源(ESI)及Analyst1.7數(shù)據(jù)處理系統(tǒng)) 美國AB公司;Nexer系列超高效液相色譜儀(包括脫氣機(jī)(DGU-20A5R)、自動(dòng)進(jìn)樣器(SIL-30AC)、紫外檢測(cè)器(SPDM-20A)、柱溫箱(CTO-30A)及溶液輸送單元(LC-30AD)) 日本島津公司;Infinity Lab Poroshell 120 EC-C18色譜柱(2.1 mm×100 mm,2.7 μm) 美國Agilent公司;Accucore Vanquish C18色譜柱(2.1 mm×150 mm,2.7 μm) 美國Thermo公司;Milli-Q超純水儀 美國Millipore公司;DL-5C離心機(jī) 上海安亭科學(xué)儀器廠;T18均質(zhì)機(jī) 德國IKA公司;XW-80A微型旋渦混合儀 上海滬西分析儀器廠;SL1202N型電子天平 上海民橋科學(xué)儀器有限公司。

        1.2 實(shí)驗(yàn)方法

        1.2.1 溶液配制

        1.2.1.1 標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制 分別稱取10 mg標(biāo)準(zhǔn)品于10 mL容量瓶中,用甲醇溶解定容,配置成濃度為1000 mg/L的單標(biāo)儲(chǔ)備液,置于?20 ℃冰箱中避光儲(chǔ)存。根據(jù)需要時(shí)將單標(biāo)儲(chǔ)備液混合配制成不同濃度的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,現(xiàn)配現(xiàn)用。

        1.2.1.2 Na2EDTA-Mcllvaine緩沖溶液的配制 稱取28.41 g磷酸氫二鈉用水溶解,定容至1000 mL,制成磷酸氫二鈉溶液(0.2 mol/L)。稱取21.01 g檸檬酸用水溶解,定溶至1000 mL,制成檸檬酸溶液(0.1 mol/L)。將1000 mL檸檬酸溶液(0.1 mol/L)與625 mL磷酸氫二鈉溶液(0.2 mol/L)混合,加入1 mol/L NaOH調(diào)節(jié)pH=4,制成Mcllvaine緩沖溶液。稱取62.5 g Na2EDTA于1625 mL Mcllvaine緩沖溶液中均勻混合。

        1.2.2 樣品制備 參考郭海霞等[25]的方法并稍作改動(dòng)。取2.00 g(精確至0.01 g)均質(zhì)后豬肉于50 mL離心管中,加入5 mL Na2EDTA-Mcllvaine緩沖溶液,渦旋5 min。隨后加入15 mL 1%甲酸乙腈,渦旋5 min,超聲10 min,10000 r/min低溫冷凍離心5 min。移取上清液至另一離心管,加入2 g NaCl作為鹽析劑和4 g無水Na2SO4作為吸水劑,渦旋5 min,10000 r/min低溫冷凍離心5 min。移取10 mL上清液至50 mL離心管中,加入300 mg C18作為分散劑,重復(fù)上述步驟,取5 mL上清液氮吹至盡干,加入1 mL 0.1%甲酸乙腈-水溶液(1:9,v/v)復(fù)溶,過0.22 μm濾膜,上機(jī)待測(cè)。

        1.2.3 分析方法

        1.2.3.1 色譜條件 色譜柱:Infinity Lab Poroshell 120 EC-C18色譜柱(2.1 mm×100 mm,2.7 μm);流速:0.2 mL/min;柱溫:40 ℃;進(jìn)樣量:5 μL。流動(dòng)相A:0.1%甲酸水;流動(dòng)相B:0.1%甲酸乙腈;初始濃度:5%B;洗脫梯度:0~1 min,5%B;1~6 min,5%B~55%B;6~12 min,55%B~90%B;12~13 min,90%B;13~14 min;90%B~5%B;14~15 min,5%B。

        1.2.3.2 質(zhì)譜條件 參考朱萬燕等[23]的方法并稍作改動(dòng)。電噴霧離子源(ESI),正離子模式,離子源溫度:550 ℃;電噴霧電壓:5500 V;霧化氣(GS1)流速:40 μL/min;輔助加熱氣(GS2)流速:40 μL/min;氣簾氣(CUR)流速:20 μL/min;去簇電壓(DP):100 V;離子富集時(shí)間:0.05 s;掃描范圍m/z:100~1000。

        1.3 數(shù)據(jù)處理

        采用統(tǒng)計(jì)軟件Excel 2016和PeakViewTM軟件對(duì)檢測(cè)結(jié)果進(jìn)行數(shù)據(jù)處理分析。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 色譜和質(zhì)譜條件優(yōu)化

        2.1.1 色譜柱的篩選 色譜分離優(yōu)化考慮的主要因素有共流出物分離情況和采集時(shí)間。為獲得最佳分離效果及最短分離時(shí)間,比較Infinity Lab Poroshell 120 EC-C18色譜柱(2.1 mm×100 mm,2.7 μm)與Accucore Vanquish C18色譜柱(2.1 mm×150 mm,2.7 μm)。結(jié)果顯示150 mm色譜柱保留時(shí)間較長,分離效果不顯著。同分異構(gòu)體的洗脫分離是色譜條件的優(yōu)化重點(diǎn),經(jīng)優(yōu)化后的兩組同分異構(gòu)體(四環(huán)素/強(qiáng)力霉素,氨芐西林/頭孢拉定)效果較好,均能達(dá)到基線分離(見圖1)。綜合色譜柱保留時(shí)間和分離效果等因素,最終選用Infinity Lab Poroshell 120 ECC18色譜柱。

        圖1 4種抗生素類獸藥的提取離子流圖(Infinity Lab Poroshell 120 EC-C18柱)Fig.1 Extracted ion chromatogram of four kinds of antibiotic veterinary drugs (Infinity Lab Poroshell 120 EC-C18 column)

        2.1.2 質(zhì)譜條件優(yōu)化 采用針泵進(jìn)樣方式分別將1 mol/L單標(biāo)直接進(jìn)樣,在正離子模式下,母離子為[M+H]+,質(zhì)量偏差窗口為3 ppm,時(shí)間偏差為±0.1 min。通過測(cè)定各單標(biāo)精確質(zhì)量數(shù)后,優(yōu)化二級(jí)質(zhì)譜去簇電壓及碰撞能量(表1),使定性定量離子豐度達(dá)到最高。在優(yōu)化后的色譜及質(zhì)譜下,分別進(jìn)樣1 mol/L單標(biāo),以所得數(shù)據(jù)建立篩查譜庫。

        表1 10種抗生素類的質(zhì)譜采集參數(shù)Table 1 Parameters for UHPLC-Q-TOF/MS analysis of the ten antibiotics

        PeakViewTM軟件是Q-TOF通過精確質(zhì)量數(shù)及數(shù)據(jù)庫定性篩查識(shí)別目標(biāo)化合物的重要手段[26]。置信因子判斷條件包括質(zhì)量數(shù)誤差、保留時(shí)間誤差、同位素豐度比誤差、譜庫匹配誤差和分子式計(jì)算誤差[27]。為提高篩查準(zhǔn)確性,減少假陽性和假陰性結(jié)果,本研究通過數(shù)據(jù)庫與基質(zhì)加標(biāo)溶液比對(duì)(表2)實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證置信因子窗口參數(shù)。結(jié)果表明,10種獸藥均能被正確識(shí)別。

        表2 空白樣品中10種抗生素定性篩查結(jié)果Table 2 Qualitative screening results of ten antibiotics in blank samples

        2.2 提取條件優(yōu)化

        由于豬肉中含有大量脂肪和蛋白質(zhì),因此減少基質(zhì)干擾是提取溶劑選擇的重點(diǎn)。四環(huán)素類藥物含有四個(gè)并聯(lián)環(huán),容易與金屬離子如:鈣、鎂離子螯合影響回收率,因此本實(shí)驗(yàn)應(yīng)保證在避光、低溫恒溫條件下進(jìn)行,通過加入Na2EDTA-Mcllvaine緩沖溶液可以競爭基質(zhì)中的金屬離子,調(diào)節(jié)緩沖液pH至4.0可以減小四環(huán)素類藥物溶解性,使其能夠更好地被分配至有機(jī)相中,提高提取效率[28]。乙腈作為常用有機(jī)溶劑具有良好的沉淀蛋白能力,提取溶劑的pH會(huì)影響酸堿兩性物質(zhì)的電離[29]。本實(shí)驗(yàn)分別研究了不同酸度乙腈對(duì)回收率的影響,結(jié)果如圖2所示,由于β-內(nèi)酰胺類藥物在酸堿兩性下不穩(wěn)定,極易發(fā)生開環(huán)反應(yīng),其回收率隨著酸度增加而降低[30]。與此同時(shí),大環(huán)內(nèi)酯隨著酸度的增加而增加,0.5%甲酸乙腈回收率最高。綜合考慮化合物在不同酸度下的平均回收率,選擇0.1%甲酸乙腈與Na2EDTA-Mcllvaine緩沖溶液組合作為本實(shí)驗(yàn)的提取溶劑。

        圖2 不同酸度提取溶劑回收率Fig.2 Recoveries of extraction solvents with different acidities

        2.3 基質(zhì)效應(yīng)評(píng)價(jià)及消除

        基質(zhì)效應(yīng)是指基質(zhì)共提物與目標(biāo)分析物競爭電離所產(chǎn)生的影響[31]。本實(shí)驗(yàn)分別配制基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線與對(duì)應(yīng)濃度的溶劑標(biāo)準(zhǔn)曲線(加標(biāo)量:1、5、10、20、50、100 μg/kg),根據(jù)其比值來評(píng)價(jià)基質(zhì)效應(yīng)當(dāng)比值在0.8~1.2時(shí),表明基質(zhì)效應(yīng)不明顯;當(dāng)比值大于1.2時(shí),表明有基質(zhì)增強(qiáng)效應(yīng);當(dāng)比值小于0.8時(shí),表明有基質(zhì)抑制效應(yīng)。從表3中可以看出,10種抗生素基質(zhì)效應(yīng)均在0.8~1.2范圍內(nèi)。然而,為了獲得更好的定量效果,本實(shí)驗(yàn)仍使用空白基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)曲線來抵消基質(zhì)效應(yīng)[32]。

        表3 10種抗生素的線性方程、相關(guān)系數(shù)(r)、基質(zhì)效應(yīng)、檢出限和定量限Table 3 linear equations, correlation coefficients (r), matrix effect, LODs and LOQs of the 10 antibiotics

        2.4 線性度、線性范圍、檢出限和定量限

        將豬肉樣品按1.4方法,配制5個(gè)梯度水平(5、10、20、50、100 μg/kg)的基質(zhì)匹配混合標(biāo)準(zhǔn)溶液上機(jī)測(cè)定。以定量離子峰面積(y)為縱坐標(biāo)軸,質(zhì)量濃度(x,μg/L)為橫坐標(biāo)軸做定量工作曲線,得到線性回歸方程的相關(guān)系數(shù)r為0.99031~0.99932,在5.0~100.0 μg/kg范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。以3倍信噪比(S/N)計(jì)算得到檢出限(LOD)為0.25~1.0 μg/kg,10倍信噪比算得定量限(LOQ)為0.5~5.0 μg/kg。

        2.5 準(zhǔn)確度和精密度

        本實(shí)驗(yàn)在空白豬肉樣品中添加10種獸藥的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液(加標(biāo)量:5、10、20 μg/kg),分別進(jìn)行日內(nèi)實(shí)驗(yàn)(重復(fù)6次)和日間實(shí)驗(yàn)(連續(xù)3 d,每天重復(fù)3次)。如表4所示,各化合物回收率72.3%~117.3%,日內(nèi)RSD為0.9%~10.4%,日間RSD為1.1%~13.4%,結(jié)果滿足方法學(xué)要求。

        表4 豬肉中10種抗生素的回收率和精密度Table 4 Recovery and RSD for 10 antibiotics spiked into pork

        2.6 實(shí)際樣品檢測(cè)

        為了驗(yàn)證本方法在實(shí)際樣品中的應(yīng)用效果,對(duì)采購自不同省市的50份新鮮生豬肉樣品進(jìn)行篩查分析,結(jié)果顯示有1份豬肉樣品中四環(huán)素呈陽性,含量為75.4±1.8 μg/kg。同時(shí)采用國標(biāo)GB/T 21317-2007進(jìn)行驗(yàn)證,檢測(cè)結(jié)果為77.8±2.3 μg/kg,經(jīng)t檢驗(yàn)法分析,P>0.05,兩種方法所測(cè)結(jié)果無顯著性差異,表明本方法可以作為豬肉中抗生素類獸藥殘留的定性定量測(cè)定。

        3 結(jié)論

        本文建立了QuEChERS凈化結(jié)合UHPLC-QTOF/MS法同時(shí)篩查豬肉中10種抗生素類獸藥殘留量的分析方法。采用Na2EDTA-Mcllvaine緩沖溶液-0.1%甲酸乙腈-NaCl-無水Na2SO4-C18的提取凈化組合,通過Infinity Lab Poroshell 120 EC-C18色譜柱對(duì)10種抗生素類獸藥進(jìn)行分離,并利用高分辨質(zhì)譜建立了篩查譜庫,縮小了確證誤差。從方法學(xué)驗(yàn)證所得結(jié)果來看,本方法基質(zhì)效應(yīng)為0.80~1.15,相關(guān)系數(shù)r為0.99031~0.99932,LOD為0.25~1.0 μg/kg,LOQ為0.5~5.0 μg/kg。在不同加標(biāo)濃度下,平均回收率為72.3%~117.3%,日內(nèi)RSD為0.9%~10.4%,日間RSD為1.1%~13.4%。與現(xiàn)行國家標(biāo)準(zhǔn)相比,本方法對(duì)于實(shí)際陽性樣品檢測(cè)結(jié)果與國標(biāo)相近,且操作簡便縮短檢測(cè)時(shí)間,準(zhǔn)確度與精密度均滿足方法學(xué)要求,為抗生素類獸藥殘留檢測(cè)提供了切實(shí)有效的篩查方法,也為食品安全提供了技術(shù)保障。同時(shí)也為其他動(dòng)物源性食品中抗生素類獸藥殘留的檢測(cè)提供方法參考,以期實(shí)現(xiàn)在待測(cè)樣品物理化性質(zhì)差異較大的條件下快速篩查和測(cè)定。

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