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        miR-1285通過YAP對慢性粒細(xì)胞白血病K562細(xì)胞增殖、凋亡的影響及其作用機(jī)制

        2022-05-12 09:04:38張紅霞吳廣勝
        關(guān)鍵詞:差異檢測研究

        張紅霞,吳廣勝

        慢性粒細(xì)胞性白血病(chronic myeloid leukemia, CML)是一種骨髓增生性腫瘤,酪氨酸激酶抑制劑(tyrosine kinase inhibitors, TKI)作為CML治療的臨床一線用藥,仍有許多患者對TKIs發(fā)生耐藥[1]。CML與Wnt、Notch、Hippo等信號通路的失調(diào)相關(guān)[2]。轉(zhuǎn)錄共激活因子Yes相關(guān)蛋白1(Yes-associated protein 1, YAP1)是Hippo信號通路中的癌基因,在腫瘤發(fā)生中起著重要的作用[3]。YAP參與了癌癥惡性行為的維持[4-6],有研究[7]顯示抑制YAP的表達(dá),CML細(xì)胞生長減慢增加藥物的敏感性,另有研究[8]表明YAP的磷酸化水平與CML細(xì)胞生長成正比。

        近年來微小RNA(microRNA,miRNA)在調(diào)控基因表達(dá)、腫瘤發(fā)生及發(fā)展發(fā)揮了重要作用[9]。miR-1285,也稱為miR-1285-1,miR-1285-3p,位于7q21-q22中[10]。miR-1285在多種癌癥中發(fā)揮抑癌作用[11],而在CML中的作用尚不清楚。CML中許多microRNA處于失衡狀態(tài),多項研究[12]證明這些microRNA在調(diào)節(jié)白血病細(xì)胞的增殖、侵襲和轉(zhuǎn)移方面發(fā)揮了重要作用,但是否會作用于YAP這條通路尚無有力證據(jù)。因此該研究主要側(cè)重于miR-1285通過靶向YAP對慢性粒細(xì)胞白血病K562細(xì)胞的增殖、凋亡以及對其作用機(jī)制的初步探討。

        1 材料與方法

        1.1 主要試劑RNA提取試劑盒、反轉(zhuǎn)錄試劑盒、SYBR Green試劑盒(Thermo Fisher公司),CCK8檢測試劑盒、細(xì)胞凋亡檢測試劑盒(Abcam公司),RIPA細(xì)胞裂液(BOSTER公司),1%青鏈霉素、10%胎牛血清(Gibco公司),質(zhì)粒(上海Genepharma公司),具體序列見表1。

        表1 質(zhì)粒序列

        1.2 K562細(xì)胞的制備慢性粒細(xì)胞白血病K562細(xì)胞購于武漢普諾賽公司,使用含1%青鏈霉素10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng),于37 ℃含有5%CO2的細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng),每隔24 h進(jìn)行更換培養(yǎng)基處理并1 ∶2傳代。選擇對數(shù)期生長的細(xì)胞進(jìn)行下一步實驗細(xì)胞。質(zhì)粒的轉(zhuǎn)染使用Lippofectamine 3000作為載體。

        1.3 CCK-8法檢測K562細(xì)胞增殖情況按5×105/ml密度將K562細(xì)胞種植在24孔板中并設(shè)置空白組,培養(yǎng)12 h后,每組設(shè)置3個對照組,將質(zhì)粒與K562細(xì)胞共培養(yǎng)48 h與72 h后,每孔加入25 μl CCK-8試劑,避光,37 ℃條件中孵育1.5 h,測定酶標(biāo)儀在450 nm吸光度時的吸光度(A)值,以此來計算細(xì)胞的增殖率。計算方法:增殖率=(A實驗組-A空白組)/(A對照組-A空白組)×100%。

        1.4 流式細(xì)胞儀檢測K562細(xì)胞凋亡情況按5×105/ml密度將K562細(xì)胞種植在6孔板中,按照1.3項處理后的K562細(xì)胞使用預(yù)冷的PBS沖洗干凈后,加入胰酶消化后收集細(xì)胞,離心獲得沉淀,使用PBS重懸細(xì)胞后分裝,分別加入PI和Annexin V-FITC抗體后,設(shè)置對照組,避光情況下上機(jī)檢測。

        1.5 實時熒光定量PCR檢測K562細(xì)胞中miR-1285的表達(dá)水平按照1.3項處理后的K562細(xì)胞,TRIzol法提取細(xì)胞中總RNA,調(diào)平后逆轉(zhuǎn)錄成cDNA,反應(yīng)條件:37 ℃ 2 min,42 ℃ 60 min,70 ℃ 5 min,4 ℃ 保存。將所得cDNA進(jìn)行實時熒光定量PCR,所用PCR引物序列見表1。擴(kuò)增條件為:95 ℃ 10 min,95 ℃ 15 s,60 ℃ 30 s,循環(huán)次數(shù)40次。使用2-ΔΔCt計算公式得出mRNA的表達(dá)量。

        1.6 Western blot法測定蛋白表達(dá)量按照1.3項處理后的K562細(xì)胞加入RIPA細(xì)胞裂解液,獲取K562細(xì)胞中總蛋白樣品,用BCA法檢測上樣蛋白濃度,調(diào)整蛋白濃度后使各組濃度一致,然后使用SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳的方法分離蛋白并轉(zhuǎn)移至PVDF膜,加入兔抗鼠單克隆抗體YAP、P-EGFR、EGFR、BAX、Bcl-2、GAPDH(稀釋比1 ∶800)于4 ℃條件下孵育24 h后,充分去除一抗并于常溫條件下加入山羊抗兔二抗(稀釋比1 ∶20 000)孵育2 h,化學(xué)發(fā)光法檢測各分子的蛋白表達(dá)情況,使用Image J軟件處理灰度值并計算相對蛋白表達(dá)量。

        2 結(jié)果

        2.1 轉(zhuǎn)染質(zhì)粒后K562細(xì)胞內(nèi)miR-1285 mRNA的表達(dá)量在轉(zhuǎn)染后48 h檢測細(xì)胞內(nèi)miR-1285的表達(dá)量,與mimics control組比較,miR-1285 mimics組表達(dá)升高,與inhibitor control組比較,miR-1285 inhibitor組表達(dá)下降(P<0.05)。而mimics control組與inhibitor control組比較,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),見圖1。

        圖1 不同處理組miR-1285表達(dá)情況A:mimics組;B:mimics control組;C:inhibitor組;D:inhibitor control組;與mimics control組比較:*P<0.05;與inhibitor control組比較:#P<0.05

        2.2 過表達(dá)miR-1285后抑制K562細(xì)胞增殖轉(zhuǎn)染質(zhì)粒48 h,與miR-1285 inhibitor組比較,miR-1285 inhibitor組、mimics control組、inhibitor control組均可促進(jìn)K562細(xì)胞增殖(P<0.05);而通過過表達(dá)miR-1285,miR-1285 mimics組較mimics control組增殖減弱,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。在相同的培養(yǎng)環(huán)境下,miR-1285 inhibitor組細(xì)胞增殖明顯高于inhibitor control組(P<0.05),見圖2。

        圖2 不同處理組K562細(xì)胞增殖情況A:mimics組;B:mimics control組;C:inhibitor組;D:inhibitor control組;與mimics control組比較:*P<0.05;與inhibitor control組比較:#P<0.05

        圖3 不同處理組K562細(xì)胞凋亡情況A:mimics組;B:mimics control組;C:inhibitor組;D:inhibitor control組;與mimics control組比較:*P<0.05;與inhibitor control組比較:#P<0.05

        2.4 凋亡相關(guān)分子BAX、Bcl-2的蛋白表達(dá)Western blot結(jié)果顯示,與mimics control組比較,mimics組BAX升高,而Bcl-2降低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);而與inhibitor control組比較,miR-1285 inhibitor組的BAX表達(dá)降低,而Bcl-2表達(dá)升高,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見圖4。

        圖4 不同處理組K562凋亡相關(guān)蛋白BAX、Bcl-2表達(dá)情況A:mimics組;B:mimics control組;C:inhibitor組;D:inhibitor control組;與mimics control組比較:*P<0.05;與inhibitor control組比較:#P<0.05

        2.5 YAP及EGFR下游相關(guān)分子的蛋白表達(dá)Western blot結(jié)果顯示,過表達(dá)miR-1285后,YAP的表達(dá)下降,而敲低miR-1285會使YAP的表達(dá)上升;與mimics control組比較,miR-1285 mimics組的YAP、P-EGFR表達(dá)量下降,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。與inhibitor control組比較,miR-1285 inhibitor組的YAP、P-EGFR表達(dá)量升高,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。各組之間EGFR未見明顯變化,見圖5。

        圖5 不同處理組K562細(xì)胞中YAP、EGFR、P-EGFR的表達(dá)情況A:mimics組;B:mimics control組;C:inhibitor組;D:inhibitor control組;與mimics control組比較:*P<0.05;與inhibitor control組比較:#P<0.05

        3 討論

        近年來關(guān)于microRNA的研究逐漸增多,其中在抑制腫瘤方面有較多發(fā)現(xiàn)。有研究[13]顯示在CML中使用YAP抑制劑維替泊芬可抑制其凋亡,促進(jìn)增殖。本研究顯示使用miR-1285質(zhì)粒后,使miR-1285表達(dá)增加時,K562細(xì)胞增殖減弱,而凋亡增加;相同條件下使miR-1285下調(diào)后,K562細(xì)胞出現(xiàn)增殖明顯而抑制凋亡。這與Huang et al[14]在胰腺癌中發(fā)現(xiàn)miR-1285過表達(dá)后其抑制惡性生物學(xué)行為,可能是抑制了YAP的表達(dá);而使miR-1285降低時,可得到相反的結(jié)果。

        通過過表達(dá)或敲低miR-1285,可以觀察到K562細(xì)胞中miR-1285表達(dá)升高及降低,與對照組相比,差異有統(tǒng)計學(xué)意義,證明可有效建立細(xì)胞模型。當(dāng)過表達(dá)miR-1285后,與inhibitor組相比,K562細(xì)胞凋亡增加,而使miR-1285表達(dá)降低時,細(xì)胞凋亡降低,可能是由于過表達(dá)miR-1285后可抑制YAP的表達(dá)從而使K562細(xì)胞增殖減弱,進(jìn)而凋亡增加,當(dāng)使miR-1285表達(dá)降低后對YAP的抑制作用減弱,YAP表達(dá)增加,促進(jìn)K562細(xì)胞的增殖,抑制凋亡。這與相關(guān)研究[13]結(jié)果一致。CCK-8法檢測結(jié)果顯示,過表達(dá)miR-1285后,K562細(xì)胞增殖減弱,而敲低miR-1285后,可促進(jìn)miR-1285的增殖,增殖結(jié)果與流式結(jié)果相一致;其原因也與上述一致,可能是由于抑制或促進(jìn)YAP的表達(dá)進(jìn)而影響了K562細(xì)胞的增殖。

        對凋亡相關(guān)分子BAX與Bcl-2進(jìn)行測定,結(jié)果顯示mimics組BAX表達(dá)量升高,且明顯高于其余三組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義;當(dāng)抑制miR-1285后,BAX的表達(dá)量較對照組下降,明顯低于mimics組;而與之對應(yīng)的促增殖因子Bcl-2在mimics組中表達(dá)明顯低于三組,而在inhibitor組中Bcl-2表達(dá)高于其余三組,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義;說明miR-1286可通過一系列信號通路作用于K562細(xì)胞的線粒體通路從而影響增殖與凋亡,過表達(dá)miR-1285后,細(xì)胞增殖能力減弱,可能是因為抑制了Bcl-2而促進(jìn)BAX的表達(dá),通過線粒體通路來影響細(xì)胞增殖情況。而敲低miR-1285后,這種抑制作用減弱,對線粒體凋亡通路影響較小,因此促進(jìn)細(xì)胞增殖。然而這種是通過何種機(jī)制來發(fā)揮作用的不得而知。

        有研究[15]顯示miR-1285可通過YAP信號通路可調(diào)控卵巢癌的增殖、侵襲及轉(zhuǎn)移。而另有一項研究[7]證明YAP抑制劑可作用于K562細(xì)胞介導(dǎo)Hippo信號通路抑制增殖、促進(jìn)凋亡。miRNA在CML中的研究較少,但YAP對CML的作用已有大量研究[16]證實,因此筆者猜想miR-1285是否也能作用于YAP進(jìn)而影響K562細(xì)胞的生物學(xué)行為,對增殖、凋亡有何影響。本研究結(jié)果顯示使miR-1285過表達(dá)后可抑制YAP的表達(dá),通過對下游分子檢測P-EGFR表達(dá)也下降,而非磷酸化的EGFR未見明顯變化;當(dāng)使miR-1285敲低后,這種抑制作用會減弱,相比對照組YAP的表達(dá)升高,下游分子P-EGFR的表達(dá)隨之升高,而相應(yīng)的非磷酸化EGFR表達(dá)不變,發(fā)生這種情況的原因可能是由于miR-1285作用于YAP使表達(dá)降低,進(jìn)而抑制對下游分子的激活作用,使下游分子呈現(xiàn)出非磷酸化,而使miR-1285表達(dá)降低后,這種抑制作用會降低,影響其他分子對YAP的抑制作用,使YAP表達(dá)升高,再通過一系列信號通路影響K562細(xì)胞的線粒體凋亡通路,抑制BAX的表達(dá),使Bcl-2的表達(dá)升高,促進(jìn)增殖,抑制凋亡。

        綜上所述,YAP的表達(dá)異常參與了多種腫瘤細(xì)胞及血液系統(tǒng)疾病的生物學(xué)行為進(jìn)程,與疾病的預(yù)后和轉(zhuǎn)歸均密切相關(guān)。miR-1285又可以通過作用于YAP使YAP表達(dá)異常,在CML細(xì)胞的增殖、凋亡方面發(fā)揮了重要作用。為后期研究microRNA在CML的作用機(jī)制提供思路,為后期靶向治療提供新方向,可設(shè)計針對于CML的microRNA,為該病后期治療提供一種新的靶向藥物。

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