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        LAM/ITGα6β1/FAK信號通路在大鼠萎縮腮腺再生過程中的表達及意義

        2022-05-05 08:37:04于成龍薛博元楊勇唐學敏李建衛(wèi)劉郭琦宋嬌嬌左金華
        實用口腔醫(yī)學雜志 2022年2期

        于成龍 薛博元 楊勇 唐學敏 李建衛(wèi) 劉郭琦 宋嬌嬌 左金華

        前期研究已發(fā)現(xiàn),導管結(jié)扎后再通,萎縮的腺體可再生并恢復形態(tài)與功能,但其再生的信號機制尚未明了[1]。細胞基底膜上的層粘連蛋白(laminin,LAM)可與其受體整合素 α6β1(integrinα6β1,ITGα6β1)相互作用,并通過胞內(nèi)的信號傳導中樞黏著斑激酶(focal adhesion kinase,F(xiàn)AK)將細胞外機械力信號傳遞到細胞內(nèi),進而調(diào)控細胞的遷移、粘附、凋亡等多種生物學行為[2-3]。本實驗擬通過檢測 LAM、ITGα6β1、FAK分子在大鼠萎縮腮腺再生過程中表達變化,初步探討腮腺損傷后再生的內(nèi)在機制,為治療唾液腺萎縮性疾病的相關(guān)研究提供實驗基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 主要試劑

        LAMγ1、ITGα6、ITGβ1兔抗大鼠單抗(Abcam公司,英國);FAK兔抗大鼠多抗(CST公司,美國);SABC免疫組化試劑盒(武漢博士德);5X蛋白上樣緩沖液(大連美侖);SDS-PAGE凝膠配置劑(上海碧云天);PCR試劑盒(湖南艾科瑞)。

        1.2 動物實驗

        60只8周齡雌性Wistar大鼠隨機分為實驗組(54只)和對照組(6只)。實驗組隨機分為結(jié)扎組(A組)和再通組(B組)。結(jié)扎組對大鼠腮腺主導管進行結(jié)扎,結(jié)扎7 d后獲取腮腺組織標記為A7組(n=6);再通組于導管結(jié)扎7 d后全部再通,根據(jù)再通后的觀察時間不同(再通第1、3、5、7、10、14、21、28天)隨機分為為 B1、B3、B5、B7、B10、B14、B21、B28組 8個亞組(n=6)。對照組標記為N組。

        1.3 切片制備與HE染色

        固定后的組織進行脫水、透明、包埋、切片。依次置于二甲苯、梯度酒精中脫蠟至水。按照HE染色試劑盒要求進行操作,晾干,中性樹膠封片后顯微鏡下觀察其組織形態(tài)學改變。

        1.4 免疫組織化學染色

        切片以SABC法進行免疫組織化學染色(高壓蒸汽法進行抗原熱修復),嚴格控制顯色反應(yīng)時間。封片,同等光源條件鏡下拍照,Image-Pro Plus6圖像分析軟件對每張圖片進行平均光密度值分析。PBS替代一抗為空白對照。

        1.5 Western blot檢測

        按蛋白試劑盒說明提取各樣本的蛋白質(zhì),采用BCA法進行蛋白濃度測定。根據(jù)濃度配制等質(zhì)量體系,煮樣。40μg蛋白樣品上樣于預先配制好的PAGE凝膠上電泳(恒壓80 V 50 min,恒壓 100 V 50 min),電泳結(jié)束后,恒流250 mA條件下在冰上轉(zhuǎn)膜2 h,牛奶搖床封閉5 h,一抗4℃過夜,二抗室溫下?lián)u床1 h,ChemiDoc XRS+凝膠成像系統(tǒng)(Bio-Rad,美國)進行曝光,拍照,Image J軟件分析數(shù)據(jù)。

        1.6 實時熒光定量PCR

        提取總RNA,測定RNA純度及濃度(以A260/A280比值在1.8~2.0為可用)。按照Evo M-MLV試劑盒說明合成cDNA。在冰上配制25μL qPCR反 應(yīng) 體系,每個樣本作3個復孔。在熒光定量PCR儀(Bio-Rad,CFX96TM,美國)上機并設(shè)置反應(yīng)條件:95℃30 s 1 cycle;95℃ 5 s,60℃ 30 s,共40個循環(huán)。讀取并保存結(jié)果,計算 2-△△Ct值。

        1.7 統(tǒng)計學處理

        所有數(shù)據(jù)應(yīng)用統(tǒng)計軟件SPSS 17.0進行處理,實驗組、對照組之間差異的比較采用兩獨立樣本t檢驗,實驗組中不同時間位點取材的組間比較采用單因素方差分析,P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

        2 結(jié) 果

        2.1 HE染色結(jié)果

        正常腮腺組織腺小葉內(nèi)可見腮腺腺泡細胞數(shù)量豐富,排列嚴密。結(jié)扎組腮腺腺泡細胞喪失,炎癥細胞浸潤,腺小葉結(jié)構(gòu)紊亂。再通后腺泡細胞數(shù)量逐漸增多,腺泡之間間隙減小,導管周圍炎癥細胞減少。至B28組整個腺小葉組織形態(tài)與正常組無明顯差異(圖1)。

        圖1 大鼠腮腺萎縮、再生過程HE染色 (×400)Fig 1 HE staining of parotid gland during atrophy and regeneration in rats (×400)

        2.2 免疫組化結(jié)果

        LAM在正常腺體組織中強表達,定位于腺泡細胞的基底膜,線性圍繞細胞表面(圖 2A)。結(jié)扎后腺泡基底膜破壞,A7組可見LAM染色中斷明顯,折疊褶皺、形狀不規(guī)則(圖2B),再通后LAM在腺泡細胞周圍的連續(xù)性逐漸恢復,基底膜逐漸完整(圖2C~2E)。染色強度在結(jié)扎第7天增強,再通后減弱,至B5組到最低值后逐漸增強,于B14組達到峰值隨后降低(P<0.05)。

        ITGα6、β1共定位于腺泡細胞、導管上皮細胞的細胞膜中,染色規(guī)則完整(圖2F,2K)。導管結(jié)扎后整合素α6、β1在腺泡細胞基底部的染色逐漸中斷,寬窄不一(圖2G,2L),再通后連續(xù)性逐漸恢復,至再通B28組,染色模式均與正常腮腺相似(圖2J,2O)。染色強度在再通后減弱,于第3天到達拐點后上升,隨后整合素α6在再通第14天到達峰值后下降,β1以B10組表達量最高而后下調(diào)(P<0.05),至B28組表達量與正常組無統(tǒng)計學意義。

        FAK則強烈且彌漫性表達在腺泡細胞的胞質(zhì)中,導管系統(tǒng)表達不明顯。在結(jié)扎7 d后FAK表達強度有所降低,再通后逐漸增高(P<0.05),至 B28組,F(xiàn)AK在腮腺組織染色與正常組無明顯差異(圖2P~2T)。

        圖2 腮腺組織免疫組織化學染色(×400)Fig 2 Immunohistochemistry of the parotid gland tissue (×400)

        2.3 Western blot檢測與實時熒光定量PCR結(jié)果

        LAM、ITGα6、ITGβ1在該模型中的蛋白變化趨勢與基因水平變化趨勢基本一致,在導管結(jié)扎7 d組(A7),LAM、ITGα6、ITGβ1表達量較正常組有所升高,再通后出現(xiàn)減低趨勢。LAM在再通后第5天(B5)達到最低值后升高,至B14組到達峰值后下調(diào)。整合素α6、β1在再通第3天(B3)達到最低值后上升,隨后ITGα6以B14組到達峰值,ITGβ1以B10組達到最高值,又均逐漸下調(diào),至B28組與正常組無顯著差異。FAK在結(jié)扎后7天時表達量下調(diào),再通后逐漸增高至28組比正常組無統(tǒng)計學意義(圖3~4)。

        圖 4 LAM/ITGα6β1/FAK相關(guān)分子 mRNA表達變化Fig 4 The mRNA levels of LAM/ITGα6β1/FAK relative factors

        3 討 論

        導管結(jié)扎后再通導管以及腺體內(nèi)壓力變化,最終引起了萎縮性腮腺組織再生。多項研究表明,層粘連蛋白、整合素、FAK均可參與傳遞機械力信號,使細胞對其微環(huán)境作出感知和反應(yīng),從而自適應(yīng)地重塑組織的形態(tài)結(jié)構(gòu)與功能。Di Russo等[4]認為血管內(nèi)皮細胞基底膜上的層粘連蛋白是血管能夠?qū)芮粌?nèi)力學改變作出反應(yīng)的基礎(chǔ)。Ma等[5]發(fā)現(xiàn)整合素 FAK-ERK/PI3K介導了機械刺激對原代髁突軟骨細胞增殖活性和凋亡的重要作用。牽引力下會使間充質(zhì)干細胞(MSCs)整合素受體的數(shù)量增加,并表現(xiàn)出更明顯的分化傾向[6],這種分化傾向是組織再生的基礎(chǔ)。

        本研究發(fā)現(xiàn),在正常組織以及萎縮腮腺再通過程中,LAM與ITGα6β1始終共定位于腺泡細胞基底膜。在導管結(jié)扎后再通過程中,層粘連蛋白、整合素α6β1表達量變化趨勢幾乎同步。LAM與ITGα6β1在腺泡細胞表達的空間相關(guān)性以及表達量變化的同步性均表明,在導管結(jié)扎、釋放過程中,跨膜蛋白整合素α6β1始終受基底膜上的配體層粘連蛋白調(diào)控,并起到信號傳遞的作用。

        前期研究發(fā)現(xiàn),導管結(jié)扎7 d即可引起腮腺嚴重萎縮,再通后腮腺組織再生;而結(jié)扎28 d后再通,腮腺很難再生[7],因此本實驗選擇導管結(jié)扎至7 d后再通。導管結(jié)扎后再通,應(yīng)力改變,層粘連蛋白、整合素α6β1隨之反應(yīng)性降低。隨著壓力進一步釋放,腮腺再生活躍,層粘連蛋白、整合素α6β1表達增高,證實了層粘連蛋白、整合素α6β1的高表達能夠促進腺體組織的增殖、分化與再生。LAM/ITGα6β1/FAK在腺體組織分化中作用現(xiàn)已被較多研究所發(fā)現(xiàn),例如,Baek等[8]發(fā)現(xiàn)整合素α6β1在涎腺組織源性多能干細胞中高表達,并可作為其表面標志物,意味著唾液腺表達整合素α6β1細胞具有干細胞特性。另外,此期間整合素α6β1在導管基底膜的染色增厚,證實了導管系統(tǒng)可能在涎腺再生、發(fā)育過程中發(fā)揮干細胞作用[9-11]。在而FAK在導管結(jié)扎、腮腺萎縮過程中降低,再通后逐漸升高至正常水平,表明與FAK表達量始終與應(yīng)力變化、腮腺活動保持緊密相關(guān)性。

        本研究結(jié)果顯示 LAM/ITGα6β1/FAK作為信號通路能夠?qū)Ч芙Y(jié)扎、再通產(chǎn)生的機械力變化作出反應(yīng),在導管結(jié)扎誘導腮腺萎縮以及再通誘導腺體再生修復的過程中發(fā)揮重要作用,具體的內(nèi)在機制有待于進一步深入的研究。LAM/ITGα6β1/FAK通路可能為唾液腺萎縮性疾病的基因及再生治療提供新的靶點。

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