彭夢穎， 馮慧成， 常洪龍， 尋文鵬

（1. 西北工業(yè)大學(xué)機電學(xué)院， 西安 710072； 2.西北工業(yè)大學(xué)無人系統(tǒng)技術(shù)研究院， 西安 710072；3. 深圳邁瑞生物醫(yī)療電子股份有限公司， 深圳 518055）

1 引言

流式細胞術(shù)是一種對高速流動的細胞進行單細胞、多參數(shù)分析的技術(shù)，廣泛應(yīng)用于免疫學(xué)、血液學(xué)、腫瘤學(xué)、細胞生物學(xué)、細胞遺傳學(xué)等領(lǐng)域，可以在短時間內(nèi)完成對不同種類細胞的分類計數(shù)。流式細胞術(shù)的一般步驟是先對樣本進行預(yù)處理，對不同目標細胞進行特異標記；然后將細胞樣本流聚焦，使得細胞成單列依次通過檢測區(qū)域，通過熒光檢測或者電阻抗檢測等方式對樣本細胞進行識別與分類計數(shù)。

傳統(tǒng)的流式細胞儀通常帶有龐大的鞘流聚焦系統(tǒng)，其熒光檢測系統(tǒng)也需要復(fù)雜的光學(xué)組件，對光路對準等技術(shù)要求嚴格，難以適用于大型實驗室之外的場合。 微流控芯片技術(shù)是一種使用微型管道對微小流體系統(tǒng)進行處理或操縱的技術(shù)，具有集成化、微型化的特征，為流式細胞儀開拓了一種新的發(fā)展方向。 二者的結(jié)合為流式細胞儀的低成本化、全自動化、小型便攜化發(fā)展提供了可能。

本文首先對微流控芯片與流式細胞術(shù)的結(jié)合-微流式細胞術(shù)的國內(nèi)外研究進展總結(jié)與回顧。 綜述微流式細胞術(shù)的步驟，預(yù)處理、細胞聚焦、細胞檢測技術(shù)的國內(nèi)外發(fā)展現(xiàn)狀；闡述微流式細胞術(shù)在臨床診斷中的廣泛應(yīng)用，以及航天醫(yī)學(xué)檢測對微流式細胞術(shù)的應(yīng)用需求。 其次，介紹了應(yīng)用于載人航天的微流式細胞儀。 該設(shè)備解決了樣本預(yù)處理、細胞聚焦以及細胞檢測系統(tǒng)在航天環(huán)境中面臨的眾多難題，通過了微重力實驗驗證。

2 微流式細胞術(shù)的研究進展

2.1 樣本預(yù)處理技術(shù)

為了達到對目標細胞的檢測功能，首先要對樣本進行預(yù)處理，提取出所需要的目標細胞，消除其他細胞對后續(xù)檢測流程的干擾。 預(yù)處理方式大致分為2 種，一種是裂解紅細胞并對全血中不同種類的白細胞進行特異性標記，另一種是直接進行細胞分選。

2.1.1 細胞裂解

細胞裂解的預(yù)處理方式是對全血樣本中的紅細胞進行裂解，排除紅細胞對后續(xù)白細胞檢測的干擾；同時對白細胞進行特異性標記，以便在后續(xù)的熒光檢測中對形態(tài)大小區(qū)別不大的白細胞類群進行準確的區(qū)分。

最具有代表性的全血預(yù)處理研究是NASA 于1999 年研制出的一種可以進行全血染色的裝置，完成了世界上首次太空全血樣本預(yù)處理。但是，這種裝置人工參與度高，結(jié)果的一致性難以得到保證。 美國Honeywell 實驗室研制出了一種由聚對苯二甲酸乙二醇酯（PET）制作的微流控芯片，可以對全血樣本自動進行預(yù)處理。 但是該芯片由7 層結(jié)構(gòu)組成，結(jié)構(gòu)太過復(fù)雜，不易實現(xiàn)批量生產(chǎn)，并且不具備微重力適用性。 2015 年，以色列LeukoDx 公司研發(fā)出了可以進行敗血癥診斷的全自動CD64 檢測流式細胞儀Accellix。 該細胞儀的微流控芯片是一次性的，具備對全血樣本的紅細胞裂解功能和細胞聚焦的功能。 但是，它采用大容積的儲液、混合腔室，不能在空間站這種微重力的環(huán)境中完成工作。

2.1.2 細胞分選

以往血液以裂解紅細胞的方式進行預(yù)處理，通常具有裂解孵化時間長，裂解液昂貴等缺點。直接對細胞進行分選成為微流控領(lǐng)域越來越重要的一個研究內(nèi)容。 細胞分選分為主動分選和被動分選2 種。

主動細胞分選利用微流控相關(guān)技術(shù)，在微流控芯片上根據(jù)各類細胞的不同性質(zhì)，由外力進行分選。 根據(jù)分選原理又可以分為電學(xué)方法、光學(xué)方法、聲學(xué)方法等。

電學(xué)方法中具有代表意義的是介電泳（Di?electrophoresis， DEP ） 法 和 誘 導(dǎo) 電 荷 電 滲（Induced?Charged Electro?Osmosis， ICEO）法。

介電泳是指極化粒子在非均勻電場中受到電場力作用而發(fā)生的運動。 由DEP 力引起的位移的大小和方向取決于環(huán)境電場和粒子及溶液的性質(zhì)。 大多數(shù)生物細胞都可以被DEP 力操縱，且包裹細胞的液滴也具有這種特性。 因此，細胞或液滴可以通過非均勻電場中的DEP 力來控制。該方法可實現(xiàn)30 000 細胞／秒的高通量液滴分選。 然而，生物細胞在高頻電場中的存活率不能得到保證，并且這種方法的特異性差，對于一些相似細胞難以進行精準分離，高電壓引起的焦耳熱可能會降低細胞的分選效率和生存能力。

ICEO 所需的驅(qū)動電壓低、流動溫和可調(diào)，為粒子分選提供了另一種方法。 在特定的ICEO漩渦中，輕粒子被捕獲并在斯托克斯力的驅(qū)動下繞渦核運動；重粒子從漩渦中逃逸出來，聚集于電極中心的滯留線（圖1），從而實現(xiàn)不同密度微粒的分選。 ICEO 分選芯片同樣可以實現(xiàn)不同大小顆粒的分離，通過優(yōu)化中央電極的結(jié)構(gòu)，分選效率得到進一步提升， 并展現(xiàn)出實用化前景。

圖1 ICEO 分選示意圖［9］Fig.1 Schematic diagram of ICEO sorting［9］

光學(xué)分選方法有3 個特點：①尺寸匹配，典型激光束的直徑可以控制在1 ～20 μm，這與微流控系統(tǒng)完美匹配；②力匹配，光學(xué)驅(qū)動器分別提供溫和或強大的力來控制細胞或流動；③生物兼容性，光束功率和波長的可控性使得其對生物樣品的影響較小。 然而，高光功率的激光設(shè)備可能會阻礙光學(xué)系統(tǒng)的小型化，并且激光設(shè)備的成本一直很高。

在聲學(xué)微芯片中，粒子或細胞的分離可以通過微通道上駐波的輻射力將顆?？刂频綁毫?jié)點或波腹來實現(xiàn)。 移動距離取決于細胞的大小、密度和可壓縮性、周圍介質(zhì)性質(zhì)和聲波的波長。 聲學(xué)方法的一個瓶頸是臨界分離細胞大小由聲波的頻率決定，為了分離小細胞（＜1 μm），這些聲波發(fā)生器需要更高的頻率和功率。 大功率聲波可能導(dǎo)致通道內(nèi)溫度升高，解決發(fā)熱問題是這些器件小型化的一個巨大的挑戰(zhàn)。

被動細胞分選是在微流控芯片上依據(jù)細胞自身差異使得它們在特定的環(huán)境中受到不同程度的作用力而實現(xiàn)細胞分選的一種方法。 主要包括微過濾法、慣性分離法等。

微過濾法是最基本的技術(shù)。 它具有分離效率高、結(jié)構(gòu)簡單、控制精確等優(yōu)點。 根據(jù)微通道中的過濾結(jié)構(gòu)，過濾有4 種分類：堰、柱、橫流和膜（圖2）。 基于過濾的方法無需對細胞進行標記，芯片易于制造，并且能夠提供連續(xù)分離。 然而，微過濾法的高剪切應(yīng)力會影響被困細胞的存活率，此外，這種方法只能分離不同大小的細胞，而且容易遇到耐久性差、堵塞等問題。

圖2 微濾器設(shè)計示意圖［16］Fig.2 Schematic diagram of various micro filter designs［16］

基于流體動力學(xué)分選方法具有單步、高選擇性和無標簽的特點，而且還提供了并行化、高通量細胞分選的潛力。 其典型代表慣性分選技術(shù)在醫(yī)療、生物和化學(xué)等領(lǐng)域得到了廣泛的應(yīng)用，在多種細胞分離和富集過程中發(fā)揮了重要作用。 根據(jù)微通道結(jié)構(gòu)的不同，慣性平臺可分為直線型和曲線型。 學(xué)者們在使用具有不同橫截面結(jié)構(gòu)的大直通道進行基于尺寸的細胞或顆粒分選方面做了大量研究（圖3（a））。 曲線型微通道中，靠近通道中心線的流體微元傾向于繞曲線向外流動，從而在通道的徑向形成壓力梯度。 在封閉的通道中，由于離心力的作用，當(dāng)壁面附近相對靜止的流體重新向內(nèi)循環(huán)時，會產(chǎn)生2 個對稱的渦（迪恩渦流）。 顆粒在彎曲微通道中的位置取決于慣性力和迪恩力的平衡，不同大小的細胞處于彎曲通道截面的不同位置。 在Lin 等的工作中，一個稱為迷宮的彎曲微通道被用于分離循環(huán)腫瘤細胞（Circulating Tumor Cells， CTCs）和白細胞（White Blood Cells， WBCs），該通道使用了銳角和環(huán)的組合（圖3（b））。 此方法分選純度高（WBCs 為 91.4% ± 3.3%， CTCs 為 91.5% ±0.9%），通量高（2.5 mL／min）。 雖然慣性方法具有高通量和結(jié)構(gòu)簡單的優(yōu)點，但是很難分離出大小和密度相似的不同類型的細胞。 作為主要的被動方法之一，這些方法常因堵塞的發(fā)生而發(fā)展受阻。

圖3 分離器設(shè)計及工作原理Fig.3 Separator design and working principle

2.2 細胞聚焦技術(shù)

為了實現(xiàn)流式細胞儀中后續(xù)的檢測功能，通常會對細胞樣本流進行細胞聚焦。 在微流控芯片領(lǐng)域，細胞聚焦方法依據(jù)是否需要外加作用力而分為2 個大類：①是主動聚焦方法，包括水動力聚焦、介電泳聚焦、超聲波聚焦等；②是被動聚焦方法，包括慣性聚焦和基于泊松過程的無鞘流聚焦等。

2.2.1 主動聚焦方法

水動力聚焦利用鞘流液擠壓樣本流，實現(xiàn)樣本流中細胞的高精度聚焦。 其在聚焦維度上可以分為二維聚焦和三維聚焦。 二維聚焦的優(yōu)點是簡單、易用。 三維微流控聚焦系統(tǒng)的芯片設(shè)計要比二維方法復(fù)雜得多，因為樣本流在水平方向和垂直方向上都受到鞘流液擠壓聚焦，所得結(jié)果也將更加準確可靠。

介電泳聚焦法的原理是通過集成在芯片上的微型電極產(chǎn)生的具有特定梯度的誘導(dǎo)電場，電場力使細胞向場強最大的地方移動，進而實現(xiàn)細胞聚焦的功能，并可以對等體積顆粒進行分類，還具有其他優(yōu)點，例如避免了堵塞的可能性，并可調(diào)整外部電壓來滿足不同的分析需求。

超聲波聚焦使用換能器在微通道內(nèi)產(chǎn)生超聲駐波，依靠聲波壓力梯度將細胞聚焦在駐波的波峰或波谷節(jié)點位置，能夠達到與水力聚焦相當(dāng)?shù)木劢剐Ч?美國Life Technologies 公司于2010 年推出了第一款使用超聲波增強聚焦的流式細胞儀Attune，相對于傳統(tǒng)儀器，超聲波聚焦技術(shù)允許其以較常規(guī)儀器更緩慢的速度對目標細胞進行更高精度的分析，但該儀器仍然需要鞘流系統(tǒng)的輔助以保證聚焦效果并避免流動室污染。 Galanzha等開發(fā)了如圖4 所示的諧振器，由2 個半管或1 個半管和1 個帶有附加壓電換能器的平板基板組成，在血管或淋巴管中心生成駐波，利用超聲和光聲波誘發(fā)的梯度聲力，探索了小鼠耳和腸系膜血液和淋巴流中的細胞聚焦。

圖4 聲學(xué)聚焦示意圖（左）和石英毛細管（右）的實驗裝置［26］Fig.4 Acoustic focusing diagram （left） and quartz capillary （right） of the experimental appara?tus［26］

2.2.2 被動聚焦方法

慣性聚焦屬于被動聚焦方法，不依賴外界輸入，通道中的細胞在剪切力和拖曳力等慣性力的共同作用下會發(fā)生橫向移動，而通過合理設(shè)計通道結(jié)構(gòu)能夠產(chǎn)生特定方向的二次流，從而可以控制細胞向受力平衡位置移動實現(xiàn)聚焦。 由于具有高通量、簡單、操作精確和低成本等優(yōu)點，慣性微流體技術(shù)在細胞樣品處理中具有廣闊的應(yīng)用前景，特別是對于低豐度樣品。

基于泊松過程的無鞘流聚焦使用小尺寸的微通道形成低至數(shù)十皮升的檢測區(qū)體積，針對濃度一定的細胞樣本，根據(jù)泊松過程可以保證幾乎所有的細胞依次單個通過檢測區(qū)，從而實現(xiàn)單細胞聚焦的效果。 相對于其他細胞聚焦方法，無鞘流通道聚焦只能保證細胞單個通過檢測區(qū)，而無法使細胞聚焦在一條直線上并通過檢測區(qū)的某一固定位置，這會在一定程度上降低檢測性能。 但得益于其簡單的通道結(jié)構(gòu)和良好的適用性，該技術(shù)仍然廣泛地應(yīng)用包括上述儀器在內(nèi)的多臺流式細胞儀中，充分證明了其實用性和可靠性。

2.3 細胞檢測技術(shù)

微流式細胞術(shù)中的微粒檢測技術(shù)主要分為光學(xué)檢測和電學(xué)檢測。 光學(xué)檢測包括熒光檢測和散射光檢測，檢測精度較高。 電學(xué)檢測結(jié)構(gòu)簡單、制作方便，便于小型化，但是其在分析精度、特異性以及分析參數(shù)上與光學(xué)檢測有些差距。

2.3.1 光學(xué)檢測

光學(xué)檢測分為傳統(tǒng)的外置光路檢測與將光學(xué)元件集成在芯片上的光流控芯片檢測。

1） 外置光路檢測。 根據(jù)熒光收集與激發(fā)光照射的光路布局不同，芯片外置的傳統(tǒng)熒光檢測光路可分為透射式和反射式2 種。 加州理工研制的微流式細胞儀和LeukoDx 公司推出的Accellix平臺采用了如圖5（a）所示的透射式檢測光路，激發(fā)光由芯片底面射入，前向散射光（FSC）和熒光從芯片頂面收集檢測。 這種光路結(jié)構(gòu)簡潔，所需元件數(shù)量也較少，但只能檢測熒光和前向散射光。 南安普頓大學(xué)等單位采用如圖5（b）所示的反射式檢測光路，通過使用二向色分光鏡從芯片的一面同時完成激光入射和熒光收集。 這種布局比較緊湊，有利于縮小整機體積。

圖5 外置傳統(tǒng)光路方案［28，31］Fig.5 Conventional external optical path scheme［28，31］

2） 光流控芯片檢測方案。 光流控芯片能夠集成光纖、聚焦透鏡等光學(xué)元件，從而可以顯著地減小整個光學(xué)系統(tǒng)的體積。 微芯片電泳激光誘導(dǎo)熒光檢測技術(shù)是一種在單細胞水平上進行代謝產(chǎn)物分析的理想方法，但難以同時檢測多種代謝產(chǎn)物。

2.3.2 電阻抗檢測

光學(xué)采集和檢測系統(tǒng)價格昂貴，制作復(fù)雜，檢測前通常需要額外的生化標記，這大大限制了光學(xué)微流式細胞儀的低成本發(fā)展。 電阻抗流式細胞儀用簡單的電極代替復(fù)雜的光學(xué)元件，可以通過電阻抗測量來提取細胞的生物物理特性。 在微通道底部制作共面微電極是一種常規(guī)的電阻抗檢測方式，其主要缺點是檢測區(qū)域電場不均勻，檢測精度低。 為了解決這一問題，學(xué)者們開發(fā)了平行對稱的微電極來生成均勻電場并提高檢測精度。

3 微流式細胞術(shù)在航天免疫評估的應(yīng)用

微流式細胞術(shù)在分子生物學(xué)、生物標志物發(fā)現(xiàn)、疾病診斷、病理學(xué)和治療等領(lǐng)域都有著普遍的應(yīng)用，而在航天方面，針對航天員身體健康開展的航天醫(yī)學(xué)監(jiān)測與醫(yī)學(xué)保障工作是保證載人航天任務(wù)順利實施的重要保障。 多項研究表明，航天飛行的極端環(huán)境會導(dǎo)致人體免疫功能異化。 血液中的白細胞幾乎參與人體所有的免疫反應(yīng)，不同種類白細胞的濃度能夠直接反映人體免疫功能狀況，因此檢測白細胞及其亞群的濃度也自然成為免疫功能診斷的必要手段。

國內(nèi)外已有多家研究機構(gòu)開展了用于流式細胞術(shù)的微流控芯片技術(shù)研究，而專門針對航天需求開展相關(guān)工作的單位較少，具有代表性的單位有NASA、加州理工學(xué)院和加拿大航天局。 NASA研制的Guava 流式細胞儀和加拿大航天局的Microflow1使用常規(guī)的固定式流路和流動室，需要定期沖洗和維護，一旦發(fā)生污染或堵塞問題將很難由航天員在軌解決。 加州理工的微流式細胞儀和LeukoDx 公司的Accellix采用一次性微流控芯片方案避免了這種問題，但仍需要解決芯片對準和側(cè)向散射光（Side Scatter， SSC）檢測的問題，以實現(xiàn)一次性芯片的實用化和淋巴細胞亞群的分類。 因此目前仍未有能完全滿足航天使用需求的流式細胞儀。

4 一款面向載人航天的微流式細胞儀

針對載人航天中的在軌免疫檢測需求，本課題組對航天微流式細胞術(shù)中的樣品預(yù)處理、細胞聚焦和熒光檢測3 個環(huán)節(jié)中的微流控芯片技術(shù)進行了研究，研制了全血自動預(yù)處理芯片和無鞘流細胞聚焦芯片2 種聚合物基微流控芯片以及高容錯熒光檢測光路方案，解決流式細胞術(shù)的在軌應(yīng)用難題，開發(fā)了一款航天用全自動微流式細胞儀樣機（ACC Microflow Cytometer 1.0）。

4.1 適應(yīng)微重力的自動預(yù)處理微流控芯片

自動預(yù)處理微流控芯片能夠適應(yīng)微重力環(huán)境，確定淋巴細胞亞群計數(shù)所需的全血與試劑用量，對基于延時截止閥的自動定量取樣技術(shù)和適應(yīng)微重力的多通道流體混合技術(shù)進行了研究，并對比驗證了全血的自動預(yù)處理效果。

4.1.1 自動預(yù)處理芯片設(shè)計

樣本預(yù)處理模塊的目的是對白細胞進行染色以及裂解紅細胞。 需要完成微重力環(huán)境下對液體試劑的加注、混勻以及孵育。 因此該芯片需要具有以下特性：全血樣本定量進樣，樣本與試劑混合孵育，操作可自動進行。 按照上述要求設(shè)計如圖6 所示的具備微重力適應(yīng)性的全血自動預(yù)處理芯片，尺寸為50.5 mm×28.0 mm×5.0 mm。 抗體試劑和裂解液存儲于儲液通道內(nèi)，芯片通過底面的4 個驅(qū)動口與預(yù)處理模塊內(nèi)的4 個注射泵連接。

圖6 自動預(yù)處理芯片設(shè)計［49］Fig.6 Design of automatic pretreatment chip［49］

4.1.2 自動定量取樣技術(shù)

為解決微重力環(huán)境下全血定量加樣的問題，遂提出一種基于高吸水樹脂吸水溶脹的延時截止閥，實現(xiàn)了微流控芯片上的全血自動定量取樣。利用該閥門自動延時關(guān)斷的特性可以實現(xiàn)原理如圖7 所示的自動定量取樣。 取樣通道一端的A口連接預(yù)處理芯片的驅(qū)動口，另一端B 口連接后續(xù)混合通道，C 和D 兩口通過延時截止閥分別與全血加樣口和排氣口相連。 由C 口加入血樣時，首先經(jīng)過閥1，由于A 和B 兩口被芯片底面的密封膠帶封閉，血樣只能沿定量通道段流動并由D口經(jīng)閥2 流出至溢樣通道。 2 個延時截止閥在血樣流過后分別開始逐漸關(guān)斷，并最終將血樣截取在定量通道段內(nèi)。

圖7 自動取樣工作原理［49］Fig.7 Working principle of the automatic sampling［49］

4.1.3 預(yù)處理芯片的微重力適應(yīng)性

全血預(yù)處理中需要驅(qū)動全血樣本、抗體試劑和裂解液3 路液體進行混合。 針對微重力環(huán)境下的液體混合需求，設(shè)計了一種4 路聯(lián)動的液路驅(qū)動系統(tǒng)。 全血預(yù)處理芯片中的所有液體操作均在細長微通道內(nèi)進行，借助段塞流特性使各部分液體保持整體連續(xù)。 使用差動驅(qū)動方式保證液體驅(qū)動精度以使參與混合的2 路液體同時到達通道交叉口以防止混入氣泡，通過彎曲通道內(nèi)的往復(fù)流動實現(xiàn)血樣與試劑的混勻。對經(jīng)由手動處理和預(yù)處理芯片處理后的血樣進行檢測，得到散點圖如圖8 所示，2 種處理方式得到的散點圖相似度高，該預(yù)處理芯片可以代替?zhèn)鹘y(tǒng)手動預(yù)處理。

圖8 手動處理（a?c）與芯片處理（d?f）的檢測結(jié)果散點圖［48］Fig.8 Manual processing and chip processing test results with the scatter plot［48］

4.2 無鞘流聚焦微流控芯片技術(shù)

無鞘流聚焦微流控芯片研究了基于泊松過程的無鞘流聚焦原理，針對淋巴細胞亞群檢測設(shè)計了聚焦微流控芯片（圖9）。 基于泊松過程的無鞘流聚焦僅依靠微通道的尺寸將細胞樣本流聚焦，結(jié)構(gòu)和驅(qū)動液路最為簡潔。 設(shè)計的集成血樣和廢液儲液通道的無鞘流聚焦芯片如圖10 所示，外形尺寸為80 mm×22 mm×7.5 mm。

圖9 聚焦通道結(jié)構(gòu)圖［48］Fig.9 Schematic diagram of focus channel［48］

圖10 無鞘流聚焦芯片［48］Fig.10 Sheathless flow focusing chip［48］

4.3 高容錯單光四色熒光檢測技術(shù)

熒光檢測光路采用正交光路方案識別SSC淋巴細胞。 為了提高熒光檢測的靈敏度，需要選用數(shù)值孔徑較大的鏡頭以獲得較高的熒光收集效率。 從與聚焦微通道距離較近的芯片頂面（厚1.5 mm）收集熒光信號，從靠近微通道的一側(cè)（厚3 mm）入射激光，如圖11 所示。

圖11 熒光檢測光路方案［48］Fig.11 Optical path scheme of fluorescence detection［48］

在無鞘流聚焦微流控芯片中，樣本流尺寸即為聚焦微通道尺寸，為50 μm×50 μm，且聚焦微通道存在±15 μm 的位置誤差，細胞可能出現(xiàn)的區(qū)域尺寸為80 μm×80 μm，超出了傳統(tǒng)熒光檢測光路的檢測范圍。 因此針對無鞘流聚焦微流控芯片的特點設(shè)計了一種檢測區(qū)域大于80 μm×80 μm的高容錯熒光檢測光路，以實現(xiàn)對所有細胞的一致性熒光檢測。

4.4 性能及微重力適應(yīng)性驗證

整套航天用自動微流式細胞儀樣機（ACC Microflow Cytometer 1.0）如圖12 所示，由全血預(yù)處理芯片與無鞘流聚焦芯片2 種即插即用的一次性微流控芯片，以及全血預(yù)處理模塊和流式細胞術(shù)檢測模塊2 個儀器模塊組成。

圖12 航天用自動流式細胞儀（ACC microflow cy?tometer 1.0）［51］Fig.12 Automated flow cytometry for aerospace ap?plications［51］

對同一份血樣，分別使用ACC Microflow Cy?tometer 1.0 檢測10 份實驗組樣本，使用傳統(tǒng)手段檢測的4 份對照組樣本。 檢測結(jié)果如圖13 所示。和對照組結(jié)果對比可知，雖有差異但符合臨床要求。

圖13 淋巴細胞亞群檢測結(jié)果對比［48］Fig.13 Comparison of lymphocyte subsets detection［48］

為了進一步驗證淋巴細胞亞群檢測功能，樣機參加了綠航星際4 人180 天受控生態(tài)生保系統(tǒng)集成試驗。 試驗共成功進行了4 次淋巴細胞亞群檢測，其中2 名參試者的淋巴細胞亞群數(shù)據(jù)如圖14 所示。 2 名參試者的淋巴細胞亞群比例在試驗期間略有波動，但整體比較平穩(wěn)且均處于正常參考范圍內(nèi)，說明2 人免疫功能水平正常。整個試驗過程中使用了300 多支芯片，用于操作手冊編寫、參試志愿者前期培訓(xùn)和正式進艙試驗。

圖14 綠航星際試驗中兩名參試者的淋巴細胞亞群數(shù)據(jù)［48］Fig.14 Data of lymphocyte subsets from two volunteers in 180 CELSS integration experiment［48］

其后，樣機在法國國家太空研究中心的拋物線飛行飛機ZERO?G 上進行了微重力適用性測試。 每次失重約20 s。 表1 結(jié)果表明，微重力和超重力階段的CV 性能略有下降。 這是由于該拋物線操縱是加速度在±0.05 G 內(nèi)，而不是精確的0 G。 這種加速度的變化可能會干擾微通道內(nèi)的流動，導(dǎo)致CV 的增加。 使用處理熒光分辨率數(shù)據(jù)的方法將飛行實驗組數(shù)據(jù)劃分為3 個不同的重力階段進行統(tǒng)計，通過熒光MESF 校準曲線計算得到FITC 通道熒光靈敏度，結(jié)果如表1 所示。 其中3 種飛行階段的FITC 通道MESF值略高于地面對照組，但并無顯著差別。 因此失重和超重環(huán)境對微流式細胞儀的熒光靈敏度性能無顯著影響。

表1 熒光分辨率與熒光靈敏度指標對比［48］Table 1 Comparison of fluorescence resolution and fluo?rescence sensitivity indexes［48］

該樣機能夠滿足淋巴細胞亞群檢測需求，且具備良好的微重力適應(yīng)性。 表2 列舉了國內(nèi)外最具代表性的若干小型流式細胞儀及其關(guān)鍵性能指標。

表2 部分小型流式細胞儀的性能指標對比［51］Table 2 Comparison of performance indicators of some small flow cytometers［51］

5 總結(jié)與展望

本文首先對微流式細胞術(shù)的發(fā)展現(xiàn)狀進行了概述，包括預(yù)處理技術(shù)、細胞聚焦技術(shù)、細胞檢測技術(shù)；其次，著重介紹了其在航天醫(yī)學(xué)領(lǐng)域中的應(yīng)用，即實現(xiàn)對航天員免疫狀態(tài)的實時、在軌監(jiān)測；最后，針對載人航天中的在軌免疫檢測需求，介紹了航天微流式細胞術(shù)中的樣品預(yù)處理、細胞聚焦和熒光檢測3 個環(huán)節(jié)中的微流控芯片技術(shù)的研究，包括開發(fā)了全血自動預(yù)處理芯片和無鞘流細胞聚焦芯片兩種聚合物基微流控芯片以及高容錯熒光檢測光路方案，研制了航天用全自動微流式細胞儀樣機（ACC Microflow Cytometer 1.0）。

流式細胞術(shù)仍然具有很大的發(fā)展空間。 目前，流式細胞儀的其中一個發(fā)展趨勢是從實驗用大型儀器向便攜式、高質(zhì)量分選、高分辨率檢測的研究用流式細胞儀發(fā)展。 流式細胞術(shù)的應(yīng)用對象也不僅局限于常規(guī)的血細胞，一些非細胞體，如病毒、細胞核、染色體、原生質(zhì)體等也是流式細胞儀的檢測對象。 實際上，用顆粒而不僅僅是細胞來定義流式細胞儀的檢測對象，顯然更有代表意義。這樣，也帶來了擴大檢測范圍的考驗。 可以預(yù)見，具有更強的專業(yè)性和臨床型的流式細胞儀在之后的研究中將帶來更多的成果，最終實現(xiàn)全自動流式檢測。