陳露安,楊傳鈞,谷雨倩,劉學(xué)虎,楊自力*

超聲波加濕室內(nèi)微生物氣溶膠濃度與優(yōu)化方法

陳露安1,楊傳鈞1,谷雨倩1,劉學(xué)虎2,楊自力1*

(1.東華大學(xué)環(huán)境科學(xué)與工程學(xué)院,上海 201620；2.中國輕工業(yè)廣州工程有限公司,廣東 廣州 511440)

為明確超聲波加濕對冬季供暖室內(nèi)微生物氣溶膠粒徑與濃度分布的影響,以及降低暴露風(fēng)險(xiǎn)的有效方法,針對典型辦公室環(huán)境,基于模擬實(shí)驗(yàn)法與正交試驗(yàn)法,探究不同相對濕度(RH=40%、55%、70%)、加濕器水質(zhì)(蒸餾水、自來水、涼白開)和窗戶開度(0、1/6、1/3)下,超聲波加濕前后室內(nèi)細(xì)菌、真菌氣溶膠按粒徑分級的濃度變化,并結(jié)合極差分析與層次分析法(AHP)對上述因素的影響權(quán)重排序.結(jié)果表明,超聲波加濕后,細(xì)菌、真菌氣溶膠的濃度增長率分別高達(dá)294%和798%,且分布(0.6～4.7μm)集中在人員可吸入范圍.影響加濕室內(nèi)微生物暴露量的因素權(quán)重排序?yàn)?水質(zhì)(45%)>目標(biāo)濕度(44%)>窗戶開度(11%).為最大限度降低暴露風(fēng)險(xiǎn),建議用戶使用超聲波加濕器時(shí),優(yōu)先選用蒸餾水,調(diào)節(jié)目標(biāo)濕度至中等水平.

超聲波加濕；生物氣溶膠；室內(nèi)空氣；正交試驗(yàn)；使用優(yōu)化

超聲波加濕具有霧化能力強(qiáng)、加濕速度快、低耗低噪等優(yōu)點(diǎn),廣泛用于緩解冬季供暖室內(nèi)空氣干燥的問題.然而,現(xiàn)有研究表明,若使用不當(dāng),超聲波加濕會增大室內(nèi)細(xì)菌、真菌氣溶膠(統(tǒng)稱為微生物氣溶膠)濃度并誘發(fā)人員呼吸疾病[1-6];連續(xù)使用加濕器后室內(nèi)微生物氣溶膠的群落結(jié)構(gòu)也會惡化,空氣中可吸入性致病微生物的占比增加[7],進(jìn)一步加劇了人員在加濕室內(nèi)的微生物氣溶膠暴露風(fēng)險(xiǎn).

影響暴露風(fēng)險(xiǎn)大小的主要因素有:加濕器水質(zhì)、目標(biāo)相對濕度(RH)與通風(fēng)情況.加濕器水里的雜質(zhì)是加濕空氣中氣溶膠顆粒的主要來源.當(dāng)加濕器用水不易孳生微生物時(shí),將緩解微生物氣溶膠散發(fā)[10-11].而降低加濕的目標(biāo)相對濕度(RH)也可顯著降低室內(nèi)微生物氣溶膠暴露風(fēng)險(xiǎn),已有研究表明[8-9]:當(dāng)目標(biāo)RH=80%時(shí),空氣中的細(xì)菌濃度高達(dá)46000CFU/m3[9],而當(dāng)目標(biāo)RH=46%～75%時(shí),可降至23000CFU/m3[8].此外,開窗通風(fēng)也有助于稀釋空氣污染物,避免細(xì)菌、真菌等污染物堆積,減小室內(nèi)微生物氣溶膠吸入風(fēng)險(xiǎn)[12-13].

然而,現(xiàn)有研究未能明確降低加濕室內(nèi)微生物氣溶膠暴露風(fēng)險(xiǎn)的有效方法.在實(shí)際中,用戶由于工藝要求或條件限制,往往難以同時(shí)實(shí)現(xiàn)降低目標(biāo)加濕量、改善加濕水質(zhì)、持續(xù)開窗通風(fēng)等條件,這是因?yàn)檫^低的相對濕度或?qū)⒂绊懯覂?nèi)人員舒適性或工藝生產(chǎn),這與其使用加濕器的目的相悖;用戶在使用過程中,通常由于蒸餾水等優(yōu)質(zhì)水質(zhì)獲取不便,往往貪圖方便而更多地使用簡單易取的自來水或涼白開等作為加濕器填充水;開窗通風(fēng)雖可稀釋污染物,但在供暖季節(jié),持續(xù)通風(fēng)顯然會增加室內(nèi)供暖能耗.

為此,本文通過模擬實(shí)驗(yàn)法與正交試驗(yàn)法,在不同相對濕度(RH=40%、55%、70%)、水質(zhì)(自來水-TW、蒸餾水-DW、涼白開-CW)及窗戶開度(0,1/6, 1/3)等典型工況下,研究超聲加濕前后室內(nèi)微生物氣溶膠的分級濃度變化,分析3種因素對降低室內(nèi)微生物氣溶膠濃度的影響作用大小,明確減小加濕房間內(nèi)微生物暴露風(fēng)險(xiǎn)的最有效組合方式.結(jié)果可為保障超聲波加濕室內(nèi)人員呼吸健康提供借鑒.

1 實(shí)驗(yàn)材料與研究方法

1.1 實(shí)驗(yàn)裝置

圖1 實(shí)驗(yàn)艙設(shè)置

為確保實(shí)驗(yàn)初始微生物氣溶膠濃度等條件的一致性與可控性,本研究采用模擬實(shí)驗(yàn)法,以實(shí)際辦公房間為原型,按1:5等比縮放并依照GB50176- 2016《民用建筑熱工設(shè)計(jì)規(guī)范》[14]搭建3個(gè)模擬實(shí)驗(yàn)艙(長×寬×高:1030mm×825mm×825mm,如圖1).在實(shí)驗(yàn)過程中,實(shí)驗(yàn)艙門常閉,窗戶(300mm×300mm)依據(jù)實(shí)驗(yàn)工況開啟或關(guān)閉.3個(gè)實(shí)驗(yàn)艙平行排列在溫濕度可控的人工氣候?qū)嶒?yàn)室中(如圖2),以保證實(shí)驗(yàn)艙外的溫濕度、本底微生物氣溶膠濃度等條件一致且穩(wěn)定(16～19?C,RH=(35%±5%)).

圖2 實(shí)驗(yàn)艙在人工氣候室內(nèi)布局

經(jīng)預(yù)實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證,實(shí)驗(yàn)艙之間以及對背景實(shí)驗(yàn)室中氣溶膠的影響微弱,因此實(shí)驗(yàn)艙(1)與(2)分別開展不同工況實(shí)驗(yàn)(如表1);各實(shí)驗(yàn)艙內(nèi)平鋪有電熱膜(表面溫度<30℃),加熱艙內(nèi)空氣并恒溫23℃,對照艙內(nèi)僅供暖不加濕.加濕實(shí)驗(yàn)艙內(nèi),于對角線頂點(diǎn)處設(shè)有1臺市面常見的便攜式超聲波加濕器(1.7MHz)進(jìn)行加濕.基于雷諾相似準(zhǔn)則,調(diào)整加濕器噴嘴處流速為0.8m/s,以保證模擬實(shí)驗(yàn)艙內(nèi)加濕器噴霧氣流流動狀態(tài)與實(shí)際原型房間內(nèi)保持一致.

1.2 正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)

表1 實(shí)驗(yàn)工況

采用3因素3水平正交試驗(yàn)研究相對濕度(40%,55%,70%),加濕器水質(zhì)(蒸餾水,自來水,涼白開),窗戶開度(0,1/6,1/3)的影響,實(shí)驗(yàn)用水來源:自來水接自上海市政管網(wǎng),在水龍頭開啟30s后取水;涼白開由相同來源的自來水加熱沸騰3min后在密閉容器中冷卻至室溫獲得;實(shí)驗(yàn)所用蒸餾水為商用滅菌蒸餾水(屈臣氏,密封瓶裝),每次實(shí)驗(yàn)使用新開封的蒸餾水,以避免污染.正交試驗(yàn)工況設(shè)置及實(shí)驗(yàn)方法見表1、圖3.

圖3 單次實(shí)驗(yàn)工況營造及采樣流程

1.3 實(shí)驗(yàn)步驟

1.3.1 實(shí)驗(yàn)主要流程 為保證各工況初始條件一致,每次實(shí)驗(yàn)開始前都對各實(shí)驗(yàn)艙與背景實(shí)驗(yàn)室充分通風(fēng),將加濕器加水(1L)后放入實(shí)驗(yàn)艙,關(guān)閉實(shí)驗(yàn)艙艙門,依據(jù)工況表1調(diào)整窗戶開度.加濕器運(yùn)行前采集各實(shí)驗(yàn)艙與背景實(shí)驗(yàn)室的初始樣本,采樣過程如下:使用裝有胰蛋白酶大豆瓊脂培養(yǎng)基(TSA)的安德森6級空氣微生物采樣器,在流量28.3L/min下同步采樣實(shí)驗(yàn)組、對照組及背景實(shí)驗(yàn)室中的細(xì)菌氣溶膠初始樣本2min,隨后使用裝有沙氏葡萄糖瓊脂(含氯霉素)培養(yǎng)基(SDA)的空氣采樣器再次同步采樣實(shí)驗(yàn)組、對照組與背景實(shí)驗(yàn)室中真菌氣溶膠初始樣本2min,采樣得到的細(xì)菌與真菌用于后續(xù)培養(yǎng)(通風(fēng)后,背景實(shí)驗(yàn)室、各實(shí)驗(yàn)艙與對照艙內(nèi)細(xì)菌、真菌氣溶膠初始濃度均較低,約80～260CFU/m3).

初始樣本采集完畢后啟動加熱裝置與加濕器對實(shí)驗(yàn)艙供暖加濕,因目標(biāo)相對濕度不同,實(shí)驗(yàn)時(shí)各實(shí)驗(yàn)艙溫濕度達(dá)到目標(biāo)水平所需時(shí)長不等,實(shí)際需1～1.5h,此后在繼電器(設(shè)定有目標(biāo)溫、濕度)的控制下,加濕器與電熱膜間歇啟停以保證室內(nèi)溫濕度條件穩(wěn)定.為確保各實(shí)驗(yàn)組在采樣時(shí)系統(tǒng)運(yùn)行時(shí)長一致、溫濕度充分穩(wěn)定,在開始加濕后2.5h(此時(shí)各實(shí)驗(yàn)組的溫濕度已穩(wěn)定至少1h),采樣各實(shí)驗(yàn)艙內(nèi)的細(xì)菌氣溶膠,待艙內(nèi)空氣溫濕度重新穩(wěn)定1h后再采樣真菌氣溶膠樣品;隨后停止加熱加濕,并采集實(shí)驗(yàn)后加濕器水樣.

1.3.2 采樣培養(yǎng)與濃度增量計(jì)算 所采用的安德森6級采樣器的各級分級粒徑為:第一級>7.0μm,第二級4.7～7.0μm,第三級3.3～4.7μm,第四級2.1～3.3μm,第五級1.1～2.1μm,第六級0.6～1.1μm[15].采集在TSA上的細(xì)菌,經(jīng)37oC培養(yǎng)48h后計(jì)數(shù).采集在SDA上的真菌,經(jīng)28°C培養(yǎng)5d后計(jì)數(shù),計(jì)數(shù)時(shí)引入空白培養(yǎng)皿作為平行對照并重復(fù)計(jì)數(shù),以多次計(jì)數(shù)所得平均值作為結(jié)果.細(xì)菌或真菌氣溶膠濃度增量Δ(CFU/m3).

由式(1)計(jì)算:

ΔC=C-0(1)

式中:C為加濕后的細(xì)菌或真菌氣溶膠濃度,CFU/m3;0為該實(shí)驗(yàn)艙的初始濃度,CFU/m3.

每次實(shí)驗(yàn)前、后,加濕器水樣分別重復(fù)采集3組.水中細(xì)菌采用平板培養(yǎng)法計(jì)算濃度:取1mL水樣,在培養(yǎng)皿中與15mL無菌液態(tài)營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基(NA)均勻混合;待冷卻凝固后,經(jīng)37℃培養(yǎng)48h計(jì)數(shù).水中真菌同樣采用液態(tài)SDA平板培養(yǎng)法,經(jīng)28℃培養(yǎng)5d后計(jì)數(shù).

1.4 分析方法

采用單因素方差分析加濕實(shí)驗(yàn)組與對照組間微生物濃度差異的顯著性.當(dāng)<0.05時(shí),認(rèn)為存在顯著差異.對正交試驗(yàn)所得結(jié)果進(jìn)行極差分析,并基于層次分析法(AHP)[16]得出優(yōu)勢影響因子及其權(quán)重并排序.

2 結(jié)果與討論

2.1 超聲波加濕對細(xì)菌、真菌分級濃度的影響

超聲波加濕前后艙內(nèi)細(xì)菌、真菌氣溶膠分級濃度變化分別如圖4所示.相比于對照艙中空氣微生物由于沉降等產(chǎn)生的濃度降低趨勢,超聲波加濕組中細(xì)菌、真菌濃度顯著增大(表2,<0.01,單因素方差分析).其中,細(xì)菌在短時(shí)(2.5h)加濕后濃度增量最高達(dá)366CFU/m3(實(shí)驗(yàn)組2),相比于對照組增幅達(dá)294%;而真菌在加濕后增量最大,可達(dá)599CFU/ m3(實(shí)驗(yàn)組8),相比對照組增幅達(dá)798%.

表2 空氣細(xì)菌、真菌濃度增量的方差分析

注:*<0.05 **<0.01.

(a) 細(xì)菌

(b) 真菌

圖4 微生物氣溶膠分級濃度變化

Fig.4 Comparison of bioaerosol concentrations and size-distributions before and after humidification

實(shí)驗(yàn)組與對照組細(xì)菌、真菌氣溶膠的分級濃度增量方差分析結(jié)果如表3所示.加濕后,0.6～1.1μm粒徑范圍的細(xì)菌濃度大多顯著增大(圖4(a)中白色部分);而增加的空氣真菌中,粒徑范圍為3.3～4.7μm與1.1～2.1μm的小粒徑顆粒占據(jù)主導(dǎo)(圖4(b)).已有研究指出[17],粒徑小于4.7μm的顆粒物可到達(dá)人的氣管,而粒徑為0.6～1.1μm的細(xì)微顆粒甚至可進(jìn)入人體肺泡.Hung等[18]研究表明,超聲波加濕器散發(fā)的水霧粒徑范圍為0.2～1.25μm,Sain等[10]對超聲波加濕器散發(fā)顆粒物的研究也證明加濕器散發(fā)的顆粒物粒徑集中在亞微米級.Yang等[7]實(shí)驗(yàn)結(jié)果同樣表明,超聲波加濕器散發(fā)的細(xì)菌集中在小粒徑范圍(0.6～1.1μm).Kooij等[19]研究指出,這與超聲波的頻率等特性有關(guān).由于常見真菌孢子粒徑為1～10μm[20],而超聲波霧化特性所釋放的主要為亞微米顆粒,因此在超聲波加濕下室內(nèi)空氣中0.6～1.1μm粒徑段的細(xì)菌濃度顯著增大,而真菌增量較少,表現(xiàn)了與細(xì)菌不同的規(guī)律.

表3 加濕促進(jìn)細(xì)菌、真菌濃度的增長及其粒徑范圍

注:*<0.05 **<0.01(增長不顯著部分未顯示).

而實(shí)驗(yàn)4(蒸餾水、RH55%、窗戶開度1/6)中0.6～1.1μm粒徑段細(xì)菌減少的可能原因是:一方面, 蒸餾水所含養(yǎng)分極少(表4)、菌體不易增殖,且在室內(nèi)RH=55%的中等空氣相對濕度下微生物不宜存活[21],此時(shí)實(shí)驗(yàn)艙內(nèi)微生物氣溶膠增量最少;另一方面,超聲波加濕器通過水霧促進(jìn)氣溶膠凝并沉降,對空氣顆粒具備一定的凈化效應(yīng)[22],且對小粒徑顆粒的沉降作用更為顯著[23].

上述結(jié)果表明:超聲波加濕不僅會增大室內(nèi)細(xì)菌、真菌氣溶膠濃度暴露風(fēng)險(xiǎn),而且主要集中在0.6～4.7μm粒徑范圍,加劇了室內(nèi)人員的吸入風(fēng)險(xiǎn).

2.2 加濕條件的影響敏感性

正交實(shí)驗(yàn)極差分析結(jié)果(圖5)顯示,目標(biāo)相對濕度及水質(zhì)對加濕室內(nèi)細(xì)菌、真菌氣溶膠暴露量的影響較大,窗戶開度的影響相對較小.本文中,3種因素的最優(yōu)組合為“RH=55%,蒸餾水,窗戶開度1/3”.

由圖5可知,微生物氣溶膠增量在RH=55%時(shí)達(dá)到最低,此結(jié)果與Sterling等[24]所得結(jié)論一致:在室溫、中等濕度(RH=40%～60%)條件下,微生物氣溶膠的暴露風(fēng)險(xiǎn)最低.這是因?yàn)?微生物多依附于液滴等漂浮;而Dunklin等[21]指出,在中等相對濕度下,空氣中的載菌液滴易部分蒸發(fā),使液滴中的溶質(zhì)濃度不斷增大而對菌體產(chǎn)生毒性,加劇其衰亡.處于低濕狀態(tài)的液滴雖容易更快蒸發(fā),但所載細(xì)菌自身將因此脫水進(jìn)入干燥休眠狀態(tài),并對外部不利因素(如載菌液滴濃縮后的毒性)產(chǎn)生抵御[25];而在適宜生長的基體(如培養(yǎng)基)上,休眠的細(xì)菌將復(fù)蘇,并表現(xiàn)出更強(qiáng)的增殖力.

圖5 3種因素影響的極差分析

DW-蒸餾水;TW-自來水;CW-涼白開

水質(zhì)對微生物氣溶膠濃度的影響較大,為此,對實(shí)驗(yàn)所用3種水質(zhì)的化學(xué)需氧量(COD)、總氮(TN)、總磷(TP)及游離氯含量進(jìn)行了檢測,結(jié)果如表4所示.

表4 水中COD、TN、TP及游離氯含量

由表4可見,3種水的養(yǎng)分含量均較低,不利于微生物繁殖.但多項(xiàng)究表明低強(qiáng)(<2W/cm2)[26]高頻超聲波(>580kHz)[27]可有效促進(jìn)液體中微生物繁殖.其中,高頻聲波因聲學(xué)振蕩周期更短,形成空化氣泡的耗時(shí)短、氣泡小、氣泡空化破裂時(shí)能量也更低,僅能夠“打散”水中菌體微團(tuán),增大了與液體的有效接觸及繁殖空間,反而促進(jìn)微生物繁殖[27-28].本實(shí)驗(yàn)使用的是常見超聲波加濕器,配備1.7MHz的高頻低強(qiáng)超聲霧化片,產(chǎn)生的超聲波應(yīng)以對微生物活性的促進(jìn)作用為主;Yang等[7]也發(fā)現(xiàn)經(jīng)超聲波作用后,加濕器水中細(xì)菌濃度迅速增大.而3種水中,由于蒸餾水純凈無菌,且所含氮、磷等元素最少,即便超聲波作用,細(xì)菌與真菌依然不易在蒸餾水中繁殖,因此使用蒸餾水加濕時(shí)微生物氣溶膠濃度增量最少(圖5);自來水通常含有少量余氯,雖然氯能抑制水中細(xì)菌與真菌的繁殖[29],但經(jīng)超聲波振蕩后將快速揮發(fā)而不再具備抑制作用,此時(shí)細(xì)菌與真菌在超聲波作用下憑借水中的氮、磷等養(yǎng)分快速繁殖[30],因此,使用自來水加濕時(shí)室內(nèi)細(xì)菌與真菌增量最大;涼白開的增量僅次于自來水,這是因?yàn)闆霭组_所含養(yǎng)分與自來水類似,雖經(jīng)高溫煮沸后其初始含菌量較少,但使用時(shí)環(huán)境菌體落入(如背景空氣)難以避免,也在超聲波作用下憑借少量養(yǎng)分快速繁殖,最終向室內(nèi)釋放較高濃度的微生物氣溶膠.

而與相對濕度、水質(zhì)的影響相比,不同窗戶開度下的微生物濃度變化最小,不開窗與開窗1/3的差異不明顯(>0.05,單因素方差分析).而在實(shí)際的冬季供暖房間內(nèi),用戶由于節(jié)能、舒適性等因素,往往很少或較小地開窗(特別是在長江三角洲等冬季具有”陰冷感”的地區(qū)),且開啟時(shí)間短,對室內(nèi)空氣中微生物的稀釋作用弱.

進(jìn)一步使用層次分析法(AHP)定量評價(jià)相對濕度、水質(zhì)、窗戶開度等3種因素對空氣中細(xì)菌、真菌增量的影響大小,比較矩陣如表5所示.重要性標(biāo)度由對應(yīng)因素的極差值兩兩比較得出.

表5 AHP評價(jià)3種因素的比較矩陣

層次分析結(jié)果顯示(表6),本文中目標(biāo)相對濕度對室內(nèi)細(xì)菌、真菌暴露風(fēng)險(xiǎn)的影響權(quán)重為43.63%,加濕水質(zhì)的權(quán)重為45.30%,窗戶開度權(quán)重僅為11.07%.因此,所研究的3種因素對減小加濕室內(nèi)細(xì)菌、真菌暴露量的影響大小排序?yàn)?水質(zhì)>目標(biāo)相對濕度>窗戶度.這一結(jié)果表明,使用蒸餾水等純凈水源作為加濕器用水是改善加濕空氣品質(zhì)的最有效方法.當(dāng)難以獲取蒸餾水時(shí),加濕目標(biāo)設(shè)為中等相對濕度也能降低微生物氣溶膠濃度;而開窗的改善作用則相對最弱.

表6 各因素影響大小權(quán)重

注:一致性比率CR=CI/RI=0.00<0.1(查得:隨機(jī)一致性指標(biāo)RI=0.52),滿足一致性檢驗(yàn).

本文研究成果對在加濕房間感到不適的用戶具有積極借鑒,建議首先改善加濕水質(zhì),選用潔凈且不易孳生微生物的水,如蒸餾水;或調(diào)節(jié)目標(biāo)相對濕度至中等水平,例如55%左右,以同時(shí)保證室內(nèi)人員的舒適與健康;而僅調(diào)節(jié)窗戶開度對加濕空氣中微生物污染的改善作用相對較小,且會引起熱量耗散而增加供熱能耗.

3 結(jié)論

3.1 使用超聲波加濕器后,室內(nèi)微生物氣溶膠濃度顯著增大,且集中在可吸入(細(xì)菌:0.6～1.1μm;真菌: 1.1～2.1μm、3.3～4.7μm)粒徑范圍內(nèi).本文研究中,加濕后細(xì)菌最大增幅達(dá)294%,真菌最大增幅為798%.

3.2 改善加濕室內(nèi)細(xì)菌、真菌暴露量因素的影響大小按其權(quán)重排序?yàn)?水質(zhì)(45%)>目標(biāo)相對濕度(44%)>窗戶度(11%).

3.3 為最大程度地降低供暖加濕室內(nèi)細(xì)菌、真菌暴露風(fēng)險(xiǎn),超聲波加濕器的最佳使用工況為:優(yōu)先使用蒸餾水、設(shè)置中等加濕濕度(如RH=55%),開窗的改善效果相對較弱.

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Impacts of ultrasonic humification on size-distribution and concentration variations of indoor bioaerosol and its optimization strategy.

CHEN Lu-an1, YANG Chuan-jun1, GU Yu-qian1, LIU Xue-hu2, YANG Zi-li1*

(1.College of Environmental Science and Engineering, Donghua University, Shanghai 201620, China；2.China GDE Engineering CO., LTD., Guangzhou 511440, China)., 2022,42(4)：1594～1600

This work experimentally investigated the size-distribution and concentration changes of indoor bioaerosol before and after ultrasonic humidification via the orthogonal experiment methods in three heated experimental chambers (23°C) to clarify the exposure risk of indoor airborne bacteria and fungi during ultrasonic humidification. Effectiveness of three well-recognized influencing factors, i.e., target relative humidity (RH=40%, 55%, 70%), humidifier water type (distilled water, tap water, cooled boiled water), and window opening degree (0, 1/6, 1/3) on mitigating the exposure risks was also rated according to Range Analysis and Analytical Hierarchy Process (AHP). The results showed a substantial increase of indoor bacterial and fungal aerosol concentrations, by 294% and 798%, respectively, after ultrasonic humidification; the surged microbes were concentrated in the inhalable ranges. The three factors varied in their effectiveness in mitigating the bioaerosol exposure during humidification, which was ranked by AHP as: humidifier water quality (45%)> target relative humidity (44%)>window opening (11%). To minimize the exposure risks, distilled water and a medium humidification level (such as RH=55%) should be prioritized for ultrasonic humidification, while the effect of window opening degrees is relatively insensitive.

ultrasonic humidification；bioaerosol；indoor air；orthogonal experiment；optimization

X513,X172

A

1000-6923(2022)04-1594-07

陳露安(1996-),女,浙江臺州人,東華大學(xué)碩士研究生,主要從事室內(nèi)空氣品質(zhì)研究.發(fā)表論文2篇.

2021-09-22

國家自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(52008078);上海市科技英才揚(yáng)帆計(jì)劃項(xiàng)目(19YF1401800)

*責(zé)任作者, 副教授, ziliy@dhu.edu.cn