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        香菇多酚超聲波提取工藝及抗氧化性分析

        2022-03-18 02:22:46劉馥源黃占旺沈勇根程宏楨盧劍青李曉明安兆祥徐弦
        中國調(diào)味品 2022年3期
        關(guān)鍵詞:乙醇溶液粗提物香菇

        劉馥源,黃占旺,沈勇根,程宏楨,盧劍青,李曉明,安兆祥,徐弦

        (江西農(nóng)業(yè)大學(xué) 食品科學(xué)與工程學(xué)院江西省發(fā)展與改革委員會農(nóng)產(chǎn)品加工與安全控制工程實驗室,南昌 330045)

        香菇(Lentinusedodes(Berk.) Sing)是白蘑科真菌香菇的子實體,又稱香菌、香蕈和平莊菇等。香菇風(fēng)味獨特,質(zhì)地優(yōu)良,在我國被用作傳統(tǒng)食品和藥物。香菇是近年來我國發(fā)展最快的食用兼藥用農(nóng)產(chǎn)品,并且已成為食品行業(yè)和制藥行業(yè)的重要資源[1]。香菇富含蛋白質(zhì)、維生素、多糖、纖維素、多酚等多種營養(yǎng)成分[2]。

        植物多酚是一類廣泛存在于植物的皮、根、木、葉和果中的具有多元酚結(jié)構(gòu)的重要次生代謝產(chǎn)物,常以酚酸和黃酮類化合物形式存在[3-4],研究表明,植物多酚具有抗氧化、抑菌、抗病毒和防癌抗癌等多種生理和藥理活性[5-6]。目前植物多酚提取已成為研究熱點,如牛肝菌多酚[7]、蜂蜜多酚[8]、茶多酚[9]、陳醋多酚等[10]。其中超聲輔助提取技術(shù),利用超聲波在溶劑中產(chǎn)生的機械和空化作用,加速有效成分的溶出和擴散,簡單方便,更有利于提取[11-12]。

        目前國內(nèi)外對香菇活性物質(zhì)的研究主要集中在香菇多糖[13]、含氮物質(zhì)[14]等成分的提取及應(yīng)用上,而魏倩婷[15]采用溶劑提取法提取香菇多酚,得率為3.07 mg/mL,提取效果不佳。本試驗以香菇為原料,采用超聲波輔助技術(shù)提取香菇多酚,通過單因素試驗,結(jié)合響應(yīng)面法優(yōu)化提取工藝,再用大孔樹脂對香菇多酚進行分離純化。另外,以香菇多酚清除DPPH、ABTS+、·OH自由基能力和還原能力考察了香菇多酚的抗氧化活性,從而拓寬了植物多酚的來源,為開發(fā)天然的抗氧化產(chǎn)品和對香菇產(chǎn)業(yè)化發(fā)展有一定的指導(dǎo)意義。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        香菇:山西省呂梁市;沒食子酸、福林酚(1 mol/L)、DPPH(1,1-二苯基-2-三硝基苯肼)、ABTS(2,2′-聯(lián)氮-雙-3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸):北京索萊寶科技有限公司;無水碳酸鈉;無水乙醇;NKA-9大孔樹脂;磷酸氫二鈉、磷酸二氫鉀、氯化鉀、過硫酸鉀、鐵氰化鉀、三氯乙酸、三氯化鐵、硫酸亞鐵、雙氧水、水楊酸、抗壞血酸:分析純,南昌市蕪錦生物科技有限公司。

        1.2 儀器與設(shè)備

        BYXX-50烘箱 杭州艾博科技工程有限公司;Q500B高速多功能粉碎機 上海冰都電器有限公司;SF-TGL-16G臺式高速離心機 上海菲恰爾分析儀器有限公司;LXJ-ⅡB離心機 上海安壽科學(xué)儀器廠;WFJ 2100可見分光光度計 尤尼科(上海)科學(xué)儀器有限公司;SB-3200DTD超聲波清洗儀、Scientz-10N冷凍干燥機 寧波新芝生物科技股份有限公司;RE-52AA旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器 上海亞榮生化儀器廠。

        1.3 試驗方法

        1.3.1 樣品預(yù)處理

        將新鮮的香菇置于60 ℃的烘箱中12 h,粉碎后過100目篩備用。

        1.3.2 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制

        參照程宏楨等[16]的總酚提取方法,以沒食子酸為標(biāo)準(zhǔn)品,采用Folin-Ciocalteu法[17]進行測定。精確稱取10 mg沒食子酸標(biāo)準(zhǔn)品,待完全溶解后定容至50 mL,得到濃度為0.2 mg/mL的沒食子酸標(biāo)準(zhǔn)溶液。依次吸取上述濃度的標(biāo)準(zhǔn)溶液0,0.2,0.4,0.6,0.8,1.0 mL,并用蒸餾水加至1 mL后加入1 mL福林酚試劑,搖勻后避光靜置6 min,再加入5 mL 5%碳酸鈉溶液,充分混合后定容至25 mL避光放置1 h,在760 nm處測定各溶液的吸光度值。

        1.3.3 香菇中多酚含量的測定

        準(zhǔn)確稱取1 g香菇粉末于50 mL離心管中,按照料液比,加入一定體積的乙醇溶液進行超聲波提取,4000 r/min離心10 min,取上清液于50 mL容量瓶中,殘渣重復(fù)提取2次,定容至刻度,再根據(jù)1.3.2中的顯色方法,計算香菇多酚溶液的得率。

        多酚得率(mg/mL)=(c×n×v)/(m×1000)。

        式中:c為經(jīng)提取后的香菇中多酚的濃度(mg/mL);n為稀釋倍數(shù);v為溶液體積(mL);m為香菇粉末的質(zhì)量(g)。

        1.3.4 單因素試驗

        分別研究乙醇濃度(20%、30%、40%、50%、60%)、料液比(1∶25、1∶30、1∶35、1∶40、1∶45、1∶50,g/mL)、超聲時間(20,30,40,50,60,70 min)、超聲功率(100,120,140,160,180 W)、提取溫度(30,40,50,60,70,80 ℃)下對香菇多酚得率的影響,確定最佳的工藝條件。

        1.3.5 響應(yīng)面設(shè)計

        根據(jù)單因素試驗的結(jié)果,運用Box-Behnken設(shè)計29組試驗點進行響應(yīng)面優(yōu)化試驗,確定超聲輔助提取香菇多酚的最佳工藝。因素水平及編碼的設(shè)計見表1。

        表1 響應(yīng)面試驗因素與水平Table 1 The factors and levels of response surface test

        1.3.6 香菇多酚的分離純化

        1.3.6.1 大孔樹脂選用和預(yù)處理

        參照繆彬彬等[18]的大孔樹脂純化香菇多酚方法,將大孔吸附樹脂用無水乙醇密封浸泡 24 h,用蒸餾水沖洗至無酒精味,接著用5%的氫氧化鈉溶液浸泡24 h后用蒸餾水洗滌至中性,然后用5%的鹽酸溶液浸泡24 h后洗滌至中性后備用。

        1.3.6.2 香菇多酚物質(zhì)的分離純化

        按照1.3.5設(shè)計完成的最佳提取工藝提取香菇粉中的多酚,提取液經(jīng)離心、旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)濃縮至一定體積備用。將濃縮好的多酚粗提液緩緩注入裝有大孔樹脂的柱子中,分別用蒸餾水、30%的乙醇、50%的乙醇、70%的乙醇溶液依次進行洗脫,洗脫液再經(jīng)旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)濃縮至少量體積后冷凍干燥,將干燥成粉末的各個洗脫組分測定其吸光度值。

        1.3.7 香菇多酚抗氧化能力的測定

        1.3.7.1 DPPH自由基清除能力的測定

        分別取2 mL不同濃度(0.5,1.0,1.5,2.0,2.5,3.0 mg/mL)的香菇多酚溶液和2 mL 0.2 mmol/L的DPPH儲備溶液加入同一試管中,搖勻,在室溫下避光反應(yīng)30 min,在517 nm波長處測定吸光度為Ai;空白對照為2 mL乙醇溶液,測得吸光度為A0;以相同濃度的2 mL VC溶液作為陽性對照,按下列公式計算清除率:

        DPPH自由基清除率(%)=(A0-Ai)/A0×100。

        1.3.7.2 ABTS+自由基清除能力的測定

        精密稱取40 mg ABTS+置于裝有8 mL 1 mg/mL的過硫酸鉀溶液的試管中,在4 ℃條件下避光16 h后加入32 mL超純水,用無水乙醇定容至250 mL,低溫避光12 h,可得ABTS+工作液。分別取0.5 mL不同濃度的香菇多酚溶液于另一試管中,添加50%的乙醇溶液至2 mL,再加入2 mL ABTS+工作液,混合搖勻,避光保存60 min,在734 nm波長處測定吸光度為Ai;以乙醇溶液為空白,測得吸光度為A0;采用VC溶液為陽性對照。按下列公式計算清除率:

        ABTS+自由基清除率(%)=(A0-Ai)/A0×100。

        1.3.7.3 還原能力的測定

        分別取1 mL不同濃度的香菇多酚溶液、2 mL 0.2 mol/L pH 6的PBS磷酸鹽緩沖液、2 mL 1%的鐵氰化鉀溶液于同一離心管中,搖勻后在50 ℃的水浴鍋中避光反應(yīng)20 min,冷卻后各加入2 mL 10%的三氯乙酸溶液,放入離心機中離心10 min,吸取上清液2 mL、0.5 mL 0.1%的三氯化鐵溶液、2.5 mL蒸餾水于另一具塞試管中,混合充分,在700 nm波長處測定吸光度為Ai;以VC溶液作為對照,測得吸光度為Aj。

        1.3.7.4 ·OH自由基清除能力的測定

        分別取2 mL不同濃度的香菇多酚溶液加入具塞試管中,依次加入2 mL 6 mmol/L的硫酸亞鐵、2 mL 6 mmol/L的雙氧水溶液、2 mL 6 mmol/L的水楊酸溶液,避光反應(yīng)30 min,在510 nm波長處測定吸光度為Ai;用蒸餾水替換同體積的香菇多酚溶液為空白,測定其吸光度為A0;用蒸餾水替換水楊酸溶液測定其吸光度Aj;用相同的方法測是VC溶液的吸光度作為對照。按下列公式計算清除率:

        ·OH自由基清除率(%)=[(A0-Ai+Aj)/A0]×100。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 單因素試驗結(jié)果與分析

        由圖1中a可知,香菇多酚得率隨著乙醇濃度的增加先上升而后下降,不同濃度乙醇溶液的極性不同,多酚溶解度也不同。當(dāng)乙醇濃度達到50%時,香菇多酚得率達到最大值,因為在一定濃度范圍內(nèi),乙醇溶液能有效進入細(xì)胞,使多酚擴散到提取液中,但乙醇溶劑濃度過大時,色素、弱極性成分等溶出,抑制了某些多酚類物質(zhì)的充分溶解[19],因此選擇乙醇濃度為50%來提取香菇多酚較為合適。

        a

        由圖1中b可知,料液比在1∶25~1∶40 (g/mL)的范圍內(nèi),香菇多酚得率隨著料液比的增大而提高,達到了最大值,說明溶劑和原料的接觸面積增大,多酚在溶劑中充分溶解;而料液比在1∶40~1∶50 (g/mL)的范圍內(nèi),香菇多酚得率逐漸下降,可能是多酚的溶出量已經(jīng)達到飽和,導(dǎo)致多酚的得率下降。因此,從節(jié)約溶劑的角度考慮,選擇 1∶40 的料液比較為合適。

        由圖1中c可知,超聲時間在20~60 min范圍內(nèi),超聲波對香菇粉末的機械和空化作用下,使多酚在溶劑中的溶解度增加,溶出量增大,在60 min時達到最高值。隨著時間繼續(xù)延長,多酚得率明顯下降,可能是因為超聲時間過短不利于有機溶劑和多酚物質(zhì)的充分接觸,而時間過長,能耗增大,多酚的結(jié)構(gòu)遭到破壞[20],一些雜質(zhì)隨之溶出,不利于多酚物質(zhì)的提取。因此,選取60 min較為合適。

        由圖1中d可知,香菇多酚的溶出量隨著超聲功率的增大而升高,當(dāng)超聲功率為160~180 W時達到最高值,原因可能是超聲波使分子運動劇烈,破壞樣品的細(xì)胞壁后多酚滲透速度增大[21],溶出量增加,而機械運動逐漸過強,會破壞多酚的結(jié)構(gòu),不利于有效成分的提取。因此,為了節(jié)約能耗,超聲功率為160 W較適宜。

        由圖1中e可知,溫度在30~70 ℃范圍內(nèi),香菇多酚得率隨著溫度的上升呈增加趨勢,在提取溫度為70 ℃時達到最大值。一般來說,溫度越高,會使細(xì)胞壁破壞而使提取更加順利,但溫度達到70 ℃時大部分的多酚已經(jīng)基本溶出,再升高溫度會使多酚分解和氧化,喪失活性,也會導(dǎo)致乙醇揮發(fā),改變料液比,香菇多酚的得率反而下降[22]。因此,綜合考慮選擇70 ℃較為適宜。

        2.2 響應(yīng)面優(yōu)化試驗結(jié)果與分析

        2.2.1 響應(yīng)面試驗的結(jié)果

        根據(jù)單因素試驗的結(jié)果,A(乙醇濃度)、B(超聲功率)、C(提取溫度)和D(料液比)對多酚得率的影響顯著,因此運用Design-Expert 8.0.6軟件進行四因素三水平的響應(yīng)面試驗,試驗結(jié)果見表2。

        表2 響應(yīng)面試驗設(shè)計結(jié)果Table 2 The design and results of response surface test

        續(xù) 表

        2.2.2 響應(yīng)面回歸模型的建立與分析

        運用Design-Expert 8.0.6軟件對表2響應(yīng)面試驗結(jié)果進行分析,得到三元二次回歸方程:

        Y=10.86+0.050A-0.25B+0.43C-0.093D-0.039AB-0.091AC-0.024AD-0.070BC-0.004BD+0.27CD-0.45A2-0.25B2-0.73C2-0.31D2。

        由表3可知,回歸模型中P值<0.0001,模型差異極顯著;失擬項的P值>0.05,失擬檢驗不顯著;決定系數(shù)R2為0.9964,校正系數(shù)RAdj2為0.9928,說明模型與多酚得率的試驗結(jié)果擬合程度高,試驗穩(wěn)定性較好,可以較好地對香菇多酚得率進行預(yù)測分析。

        由表3顯著性檢驗可知,影響多酚得率的因素順序為提取溫度(C)>超聲功率(B)>料液比(D)>乙醇濃度(A)。其中A、B、C、D、A2、B2、C2、D2、AC、BC、CD與香菇多酚得率差異極顯著(P<0.01),其他因素差異不顯著(P>0.05)。

        表3 回歸模型方差分析Table 3 The variance analysis of regression model

        2.2.3 響應(yīng)面各因素交互作用分析

        通過Design-Expert 8.0.6軟件,影響多酚得率的兩兩因素之間的交互作用結(jié)果見圖2。

        a

        響應(yīng)曲面圖中曲面越陡峭表示該因素對多酚得率的影響較大,相反,曲面越平緩,影響越小。圖2中a、b、d和f的曲面較為陡峭,說明提取溫度與乙醇濃度、提取溫度與超聲功率、料液比與提取溫度的交互作用對香菇多酚得率的影響顯著;圖2中b和e的曲面較緩,說明超聲功率與乙醇濃度、料液比的交互作用對多酚得率的影響較小,這與方差分析結(jié)果一致。

        2.2.4 驗證試驗

        運用Design-Expert 8.0.6軟件優(yōu)化回歸模型進行的工藝參數(shù),得到提取香菇多酚的最佳工藝條件為:乙醇濃度50%、料液比1∶42 (g/mL)、提取溫度74 ℃、超聲功率146 W,在此條件下進行3次平行驗證試驗,所得香菇多酚得率為10.91 mg/mL,而模型預(yù)測值為10.93 mg/mL,相對偏差僅為0.18%,與預(yù)測值基本吻合,說明此模型優(yōu)化香菇多酚提取工藝合理可靠。

        2.3 大孔樹脂分離純化結(jié)果與分析

        對4種洗脫液中的多酚含量進行比較,通過顯色反應(yīng)計算出相應(yīng)含量。4種不同洗脫組分中多酚含量見圖3。

        圖3 4種不同洗脫組分中多酚的含量Fig.3 The content of polyphenols in four different elution components

        由圖3可知,水洗物中多酚含量最低,可能其中一些水溶性物質(zhì)等雜質(zhì)被洗脫下來。在剩下的3種乙醇溶液中,50%的乙醇洗脫組分中多酚含量最高,達到41.89%,其次為70%的乙醇,說明不同體積分?jǐn)?shù)的乙醇極性大小不同,極性越小則洗脫效果越明顯。隨著乙醇濃度的增大,30%的乙醇溶液洗脫下來的多酚含量明顯減少,可能前期大量的多酚類物質(zhì)被洗脫下來,剩余的組分中一些脂溶性雜質(zhì)隨之被洗脫下來,從而降低了多酚的純度。因此,選用50%乙醇洗脫物進行后續(xù)試驗。

        2.4 香菇多酚的抗氧化性分析

        2.4.1 DPPH自由基清除能力的測定

        香菇中多酚粗提物和多酚純化物作為樣品,測定它們在不同濃度情況下對DPPH 自由基的清除能力并進行對比,以 VC溶液作為陽性對照,結(jié)果見圖4。

        圖4 香菇多酚提取物和VC對DPPH自由基的清除能力Fig.4 DPPH radical scavenging activity of polyphenol extracts from Lentinus edodes and VC

        由圖4可知,多酚濃度和清除自由基的能力呈正相關(guān)。多酚純化物的清除能力明顯高于多酚粗提物的清除能力,而VC的清除能力最好。并且多酚純化物的DPPH自由基清除率均大于分離純化前的粗提物,因為粗提物中雜質(zhì)含量過多,相同濃度下多酚類物質(zhì)含量少,對 DPPH自由基的清除能力最弱,因此需要進一步分離純化。

        2.4.2 ABTS+自由基清除能力的測定

        以VC溶液作為陽性對照,ABTS+自由基清除能力的測定結(jié)果見圖5。

        圖5 香菇多酚提取物和VC對ABTS+自由基的清除能力Fig.5 ABTS+ radical scavenging activity of polyphenol extracts from Lentinus edodes and VC

        由圖5可知,香菇多酚純化物對ABTS+自由基的清除能力明顯強于香菇多酚粗提物,說明兩種樣品對ABTS+自由基都有較強的清除作用,VC對ABTS+自由基的清除能力很強。而濃度在3.0 mg/mL時,多酚純化物和VC對ABTS+自由基的清除率分別達到了97.18%和98.49%,兩者的清除效果相當(dāng),說明濃度越高,多酚純化物有很好的ABTS+清除效果。

        2.4.3 還原能力的測定

        以VC溶液作為陽性對照,還原能力的測定結(jié)果見圖6。

        圖6 香菇多酚提取物和VC的還原能力

        由圖6可知,3種樣品的還原能力均隨著濃度的升高而增強,說明吸光度值越大,還原能力越強。相同濃度條件下,VC的還原能力明顯強于多酚粗提物和多酚純化物的還原能力,香菇多酚純化物的還原能力一直強于粗提物,說明在純化的過程中分離了一些影響還原能力的物質(zhì),使還原性更強。

        2.4.4 ·OH自由基清除能力的測定

        以 VC溶液作為陽性對照,·OH自由基清除能力的測定結(jié)果見圖7。

        圖7 香菇多酚提取物和VC對·OH自由基的清除能力Fig.7 Hydroxyl radical scavenging activity of polyphenol extracts from Lentinus edodes and VC

        由圖7可知,VC的清除能力很強,明顯高于香菇多酚提取物。當(dāng)濃度為1 mg/mL時,VC對·OH自由基的清除率一直保持在95%以上。隨著濃度的升高,香菇多酚純化物的清除能力略強于多酚粗提物,可能是純化前后的物質(zhì)并沒有對·OH自由基的清除效果產(chǎn)生很大的影響,但總體來說清除效果隨著濃度的增大而逐漸加強。

        3 結(jié)論

        本試驗通過超聲波輔助提取香菇多酚,在單因素試驗的基礎(chǔ)上,結(jié)合響應(yīng)面試驗優(yōu)化香菇多酚的最佳提取工藝為乙醇濃度50%、料液比1∶42 (g/mL)、提取溫度74 ℃、超聲功率146 W,在此條件下香菇多酚得率為10.91 mg/mL,與模型預(yù)測結(jié)果基本吻合;并采用大孔樹脂吸附法分離純化香菇多酚,發(fā)現(xiàn)50%乙醇洗脫物中多酚含量達到41.89%,相比粗提物顯著提高。

        體外抗氧化性研究表明,香菇多酚具有明顯的清除自由基的能力,VC對DPPH、ABTS+、·OH自由基的清除效果和還原能力強于香菇多酚。在相同濃度范圍內(nèi),香菇多酚純化后的抗氧化效果強于粗提物。總之,香菇多酚有良好的抗氧化活性,其應(yīng)用前景廣闊,有一定的研發(fā)價值,并且為香菇農(nóng)產(chǎn)品的深加工提供了新思路,下一步將繼續(xù)進行香菇多酚其他功能活性的研究。

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