馮 波,黎嘯峰,彭海寧,楊滿君,丁 浩,徐 葉,劉如石*
(1. 湖南南華愛斯普林生物技術(shù)有限公司,長沙 410000;2. 湖南師范大學醫(yī)學院醫(yī)學檢驗系,長沙 410013)
近年來,干細胞治療逐漸成為一個前景十分廣闊的先進科學課題,干細胞臨床治療方法的發(fā)展引起了人們的極大期待[1]。干細胞可以分為兩大類:胚胎干細胞和非胚胎干細胞。迄今為止,由于畸胎瘤的形成和使用干細胞的倫理爭議,研究人員和臨床醫(yī)生對胚胎干細胞的應(yīng)用研究有限。因此,使用非胚胎干細胞(主要是成體干細胞)的試驗結(jié)果在科學界極具吸引力[2]。由于多種機制(旁分泌、營養(yǎng)、免疫調(diào)節(jié)和分化)的共同作用,間充質(zhì)干細胞(mesenchymal stem cells,MSCs)移植被認為是最有效的細胞治療工具之一,影響受損組織再生的各個階段[3]。臍帶間充質(zhì)干細胞是指存在于新生兒臍帶組織中的一種多功能干細胞,因其來源豐富而具有廣闊的臨床應(yīng)用前景[4]。MSCs治療機理包括:1)能分化成各種細胞譜系;2)能分泌促進細胞存活和增殖的可溶性因子;3)發(fā)揮調(diào)節(jié)免疫反應(yīng);4)定向遷移到損傷部位[5]。
但MSCs的應(yīng)用研究還需要解決很多問題,如供體異質(zhì)性、體外擴增、免疫原性和冷凍保存等[6]。其中,干細胞的生物安全性是細胞治療能否進入臨床應(yīng)用,保障患者生活質(zhì)量的關(guān)鍵問題[7]。干細胞的生物安全性涵蓋從供體選擇到干細胞分離,從培養(yǎng)擴增到臨床前及臨床療效,從安全性評估到細胞移植等過程的方方面面。有研究報道,MSCs移植不良事件的發(fā)生率、類型和嚴重程度與移植細胞的特征(劑量、類型等)和所患疾病的差異而顯著不同[8]。其中,干細胞的多能性在這些過程中貫穿始終。干細胞的多能性是一把雙刃劍,既賦予了干細胞分化成數(shù)以千計種細胞和治療多種疾病的潛能,同時也賦予了干細胞回輸體內(nèi)后的許多不確定性[9]。鑒于此,對干細胞的安全性研究可以從干細胞的遺傳穩(wěn)定性、致瘤性、致栓性、免疫原性等幾個方面展開。
干細胞在擴增培養(yǎng)過程中常伴隨著遺傳物質(zhì)變異的發(fā)生,這在一定程度上會影響干細胞的應(yīng)用安全[10]。相對于分化細胞,干細胞有其獨特的方式維持遺傳物質(zhì)的穩(wěn)定。在保證干細胞的遺傳穩(wěn)定性的過程中,端粒和端粒酶發(fā)揮著重要作用。位于真核染色體末端的端粒由端粒相關(guān)蛋白和端粒 DNA 組成,在維持染色體基因組完整性以及功能穩(wěn)定性方面發(fā)揮著至關(guān)重要的作用[11]。染色體復(fù)制過程中存在著其自身缺陷,因此細胞每分裂一次,一定量的堿基對會從端粒中丟失,當 DNA 短于一定長度時,端粒對于染色體末端的保護功能就會喪失,此時由于編碼區(qū)基因結(jié)構(gòu)被破壞,會發(fā)生染色體融合或者染色體降解,最終導(dǎo)致細胞老化死亡[12]。端粒酶是一種具有逆轉(zhuǎn)錄活性的核糖核蛋白,可以自身 RNA 為模板合成端粒重復(fù)序列,其活性可以通過調(diào)控端粒酶的 RNA 成分乃至蛋白質(zhì)成分等途徑實現(xiàn)。正常體細胞中,端粒酶活性受到限制;在生殖細胞、胚胎細胞中,端粒酶表達水平稍高;在癌細胞與永生化細胞系中,端粒長度較短且端粒酶活性較強[13]。測試干細胞的端粒酶活性,并結(jié)合細胞的端粒結(jié)構(gòu)特征分析,可以在一定程度上了解細胞的遺傳變異規(guī)律,為干細胞的安全性數(shù)據(jù)提供參考。
端粒酶等基因的突變是細胞永生化的必要途徑,此過程又被認為是腫瘤惡化的必要步驟。正常情況下,突變會被細胞的 DNA 修復(fù)機制修復(fù)或通過一系列通路誘導(dǎo)細胞凋亡,如果突變的 DNA 未被正常處理,將有可能轉(zhuǎn)變成腫瘤細胞[14]。胚胎干細胞在體外培養(yǎng)時具有自我更新、無限增殖和多向分化的特性,然而胚胎干細胞回輸體內(nèi)后,易形成一種被稱為畸胎瘤的良性腫瘤。當胚胎干細胞被分化細胞污染并被移植入患者體內(nèi)時,具有一定的致瘤風險[15]。胚胎干細胞致畸胎瘤的發(fā)現(xiàn)敲響了干細胞生物安全性的警鐘。雖然,目前很少有臍帶間充質(zhì)干細胞致瘤的報道,但檢測臍帶間充質(zhì)干細胞的致瘤性對于MSCs的安全性評估依然十分必要。癌細胞能在數(shù)周內(nèi)于軟瓊脂平板上形成克隆,在移植入動物體內(nèi)后,能迅速致瘤[16]。通過克隆形成試驗和動物成瘤試驗,可以評估臍帶間充質(zhì)干細胞的致瘤風險,為臍帶間充質(zhì)干細胞的安全性評估提供試驗數(shù)據(jù)。
本文主要從臍帶間充質(zhì)干細胞的端粒酶活性、克隆形成率乃至動物試驗致瘤性等方面對臍帶間充質(zhì)干細胞用于臨床治療前的安全性進行評估,為后續(xù)干細胞用于臨床治療提供參考。
細胞株 試驗組細胞為人臍帶間充質(zhì)干細胞第6代(MSC-P6),細胞編號:UCM2008010101001,提供單位:湖南南華愛世普林生物技術(shù)有限公司。陽性對照細胞為人宮頸癌細胞(henrietta lacks cells,Hela),細胞編號:CL-0101,提供單位:武漢普諾賽生命科技有限公司。陰性對照細胞為人胚肺細胞(medical research council cell strain-5,MRC-5),細胞編號:CL-0161,提供單位:武漢普諾賽生命科技有限公司。
試劑 Dulbecco 改良 Eagle 培養(yǎng)基(Dulbecco’s modified Eagle medium,DMEM,500 mL/瓶),Hy-Clone 公司,批號:AE29461773;胎牛血清(fetal bovine serium ,F(xiàn)BS,100 mL/瓶),Sciencell 公司,批號:M009-6;端粒酶活性檢測試劑盒(50 tests),江蘇凱基生物技術(shù)股份有限公司,批號:20200102;甲基纖維素(500 g/瓶),Sigma 公司,批號:SLCD2238。
儀器 CJ-1F 型醫(yī)用凈化工作臺,蘇州馮氏實驗動物設(shè)備有限公司;3111型 CO2培養(yǎng)箱,Thermo Fisher 公司生產(chǎn);DMi8型倒置熒光顯微鏡,德國Leica 公司產(chǎn)品;7500型實時熒光定量 PCR 儀,英濰捷基(上海)貿(mào)易有限公司。
1.2.1 細胞培養(yǎng)
陽性對照細胞培養(yǎng) 將 Hela 細胞用含10%FBS 的高糖 DMEM 培養(yǎng)基培養(yǎng)擴增,常規(guī)消化收集細胞,用無血清高糖 DMEM 培養(yǎng)基重懸,調(diào)節(jié)細胞密度至5×106個/mL,體積為3 mL。
陰性對照細胞培養(yǎng) 將 MRC-5細胞用含10%FBS 的高糖 DMEM 培養(yǎng)基培養(yǎng)擴增,常規(guī)消化收集細胞,用無血清高糖 DMEM 培養(yǎng)基重懸,調(diào)節(jié)細胞密度至5×107個/mL,體積為3 mL。
1.2.2 裸鼠成瘤性試驗
選取檢疫合格的雄性無特定病原體(specific pathogen free,SPF)級BALB/c-nu 裸鼠36 只,分為3組,每組12 只,分別為陰性對照組、陽性對照組、試驗組。陰性對照組裸鼠每只腋下接種0.2 mL無血清細胞培養(yǎng)液(含1×107個 MRC-5細胞),陽性對照組裸鼠每只腋下接種0.2 mL無血清細胞培養(yǎng)液(含1×106個 Hela 細胞),試驗組裸鼠每只腋下接種0.2 mL無血清細胞培養(yǎng)液(含1×107個人臍帶間充質(zhì)干細胞)。
1.2.3 觀察指標
行為活動、腺體分泌、糞便形狀、體表黏膜的觀察;病理觀察:肉眼觀察,如試驗組有結(jié)節(jié)或瘤塊形成,則行病理切片及 HE 染色檢查。陽性對照組連續(xù)觀察3周后處死,陰性對照組和試驗組連續(xù)觀察16 周,并觸摸所有動物在注射部位是否具有結(jié)節(jié)形成,在前6 周每周觀察2 次,在7~16 周每周觀察1次,并記錄結(jié)果。
1.2.4 端粒酶活性測定
采用實時熒光定量 PCR技術(shù)檢測端粒酶逆轉(zhuǎn)錄酶(telomerase reverse transcriptase,TERT) 的 mRNA表達水平來間接反應(yīng)端粒酶的活性。
1.2.5 細胞裂解液的制備
取人臍帶間充質(zhì)干細胞制劑、培養(yǎng)好的 Hela、MRC-5細胞,棄去基質(zhì),收集細胞至1.5 mL離心管中,將20 μL/106個細胞加入預(yù)冷裂解液[含1 μL苯甲基磺酰氟(phenylmethanesulfonyl fluoride,PMSF)和0.3 μL β-巰基乙醇],在冰浴上裂解30 min 后,4℃、12 000 r/min離心30 min,收集上清液。以上清液為模板進行 PCR 擴增,合成 cDNA。
1.2.6 端粒酶反應(yīng)
各組按照試劑盒說明書配制端粒酶活性測定反應(yīng)體系,即:Maxima SYBR Green qPCR Master Mix(2×)12.5 μL,TERT Forward Primer(10 μmol/L)0.8~1.0 μL,TERT Reverse Primer(10 μmol/L)0.8~1.0 μL,Template DNA<500 ng,加 Nucleasefree H2O到25.0 μL。按照說明書設(shè)置端粒酶活性測定儀器運行程序:預(yù)變性50℃ 2 min;變性95℃10 min;變性 95℃ 15 s,復(fù)性/延伸60℃ 60 s,40個循環(huán);數(shù)據(jù)收集與分析。同時設(shè)置 Hela 提取物為陽性對照,MRC-5提取物為陰性對照。
1.2.7 克隆形成試驗
將試驗組(人臍帶間充質(zhì)干細胞)、培養(yǎng)好的陽性對照組(Hela)、陰性對照組(MRC-5)棄去基質(zhì),收集細胞,使用2×培養(yǎng)基制成細胞懸液,并調(diào)整細胞密度,使最終接種細胞的密度不超過35個/cm2。將2%的甲基纖維素培養(yǎng)基分別與細胞懸液以1∶1體積比混合,注入平皿中,待形成半固體后,置入37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)14~21 d,可按需補加500 μL 完全培養(yǎng)基,防止培養(yǎng)基表面過于干燥。計算細胞克隆形成率,以大于40個細胞的細胞團為一個克隆。
細胞集落克隆率=平均細胞集落數(shù)/每孔加入的細胞數(shù)×100%。
各組接種不同細胞后至處死前,陰性對照組和陽性對照組未出現(xiàn)死亡,試驗組有2只動物第13周出現(xiàn)爛尾現(xiàn)象并死亡。經(jīng)大體觀察,其腋下無結(jié)節(jié)形成,推測是由于飼養(yǎng)時間太長,動物衰弱導(dǎo)致死亡。陰性對照組在注射部位無明顯反應(yīng),觸摸未形成結(jié)節(jié);陽性對照組在注射部位形成進行性結(jié)節(jié),在處死后剝離形成了肉眼可見瘤塊;試驗組注射部位從第3天開始有紅腫現(xiàn)象,觸摸有軟性結(jié)節(jié),第4~6天可見形成了紅腫,而軟性結(jié)節(jié)無明顯變化,第7天紅腫現(xiàn)象及軟性結(jié)節(jié)開始消退,第14天恢復(fù)正常,在觀察期結(jié)束后,無肉眼可見結(jié)節(jié)或瘤塊形成。具體數(shù)據(jù)詳見表1和圖1。
圖1 成瘤性試驗結(jié)果Fig. 1 Tumorigenicity test results
表1 成瘤性試驗結(jié)果Tab. 1 Tumorigenicity test results
根據(jù)端粒酶活性方法學驗證分析,陽性對照細胞 Hela 細胞端粒酶活性相對表達量為4.33,陰性對照細胞MRC-5細胞端粒酶活性相對表達量為0.01,人臍帶間充質(zhì)干細胞P6細胞端粒酶活性相對表達量為1.70(圖2)。各組細胞端粒酶活性檢測的具體表達數(shù)據(jù)詳見表2。
表2 端粒酶活性檢測的表達數(shù)據(jù)(n=2)Tab. 2 Expression data of telomerase activity detection (n=2)
圖2 端粒酶活性檢測Fig. 2 Test of telomerase activity
將各組細胞以 32 個/cm2接種至 10 cm 平皿后,在37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)14 d,以大于40個細胞的細胞團為一個克隆計算細胞克隆形成率。由圖3a可見,陰性對照組無克隆形成;由圖3b可見,陽性對照組有克隆形成;圖3c~3f為試驗組同一平皿中不同視野的細胞克隆照片,均為無克隆形成。
圖3 克隆形成試驗(200×)Fig. 3 Colony formation assay (200×)
臍帶間充質(zhì)干細胞作為一種更新能力強和分化能力高的細胞,在臨床許多疾病的治療中展現(xiàn)了廣闊的前景。了解和評價臍帶間充質(zhì)干細胞的安全性能,可以為干細胞臨床治療心血管疾病、血液系統(tǒng)疾病、神經(jīng)系統(tǒng)疾病、肝臟疾病等重大疾病提供重要的參考數(shù)據(jù)。
胚胎干細胞的裸鼠成瘤性是最先發(fā)現(xiàn)的干細胞安全問題之一。移植未分化的胚胎干細胞后,裸鼠組織內(nèi)會迅速形成較大的腫瘤,被稱為畸胎瘤?;チ鲆话闶且恍┎灰?guī)則分化的良性腫瘤,當它們包含一個惡性未分化細胞核心時,這些腫瘤被定義為畸胎癌[17]。干細胞的致瘤性和干細胞的增殖分化能力與細胞純度有關(guān)系。胚胎干細胞因其極強的增殖分化能力,在移植后體內(nèi)微環(huán)境的誘導(dǎo)下,快速多向分化成不同細胞,多向分化和不規(guī)則分化造成細胞微環(huán)境的紊亂,進而導(dǎo)致凋亡障礙,形成畸胎瘤甚至畸胎癌,這可能是胚胎干細胞的致瘤機制之一[18]。臍帶間充質(zhì)干細胞相比胚胎干細胞,其干性相對較弱,沒有胚胎干細胞那樣強的增殖分化能力,移植后未見有導(dǎo)致成瘤的多向分化和不規(guī)則分化現(xiàn)象出現(xiàn)的報道[19]。不僅如此,臍帶間充質(zhì)干細胞還具有一定的免疫調(diào)節(jié)功能,在抑制自身免疫性疾病等方面具有潛力[20]。本研究對比了 MRC-5細胞、臍帶間充質(zhì)干細胞和 Hela 細胞的致瘤性。動物試驗結(jié)果顯示,臍帶間充質(zhì)干細胞在移植到裸鼠體內(nèi)的13 周內(nèi)沒有展現(xiàn)出致瘤性;克隆形成試驗顯示,臍帶間充質(zhì)干細胞和 MRC-5細胞一樣,在14 d內(nèi)不會形成細胞克隆。以上結(jié)果說明,臍帶間充質(zhì)干細胞沒有胚胎干細胞那樣的高致瘤性,同時也在一定程度上說明本試驗采用的臍帶間充質(zhì)干細胞純度較高,其他分化細胞污染的風險控制較佳。后續(xù)可采用檢驗不同種類混合細胞移植后的致瘤性的方法,進一步探索干細胞致瘤與否的機制,進一步排除臍帶間充質(zhì)干細胞持續(xù)性致瘤的潛在風險。
癌癥的主要特征之一是它的復(fù)雜性。癌癥的發(fā)生涉及成千上萬的分子改變,這些改變使癌細胞有別于正常細胞。雖然癌癥包括一系列不同的疾病,但這些疾病都和細胞的不適當生長有關(guān)[21]。盡管癌癥具有其復(fù)雜性,但一些關(guān)鍵基因還是在其發(fā)生發(fā)展中起到關(guān)鍵作用。一些證據(jù)表明,端粒和端粒酶的穩(wěn)態(tài)失調(diào)是癌癥發(fā)生發(fā)展所必須的條件[22]。端粒是終止真核染色體的核蛋白結(jié)構(gòu),端粒的主要功能之一是標記線狀染色體的末端,使其有別于斷裂的 DNA 末端,并促進染色體復(fù)制。DNA 聚合酶不能完全復(fù)制染色體末端,因此,在每個細胞周期中大約有50 個核苷酸丟失,從而導(dǎo)致端粒長度逐漸縮短,最終導(dǎo)致因基因組不穩(wěn)定而引發(fā)細胞凋亡程序[23]。端粒長度的維持主要通過端粒酶來實現(xiàn)。正常體細胞中,端粒酶活性保持在很低的水平。在一些生殖細胞、胚胎細胞等快速分裂的細胞中,端粒酶表達水平明顯升高[24]。在癌細胞中,端粒酶水平異常升高,端粒及端粒酶結(jié)構(gòu)發(fā)生不可逆變化,端粒長度較正常水平明顯增長,對應(yīng)著癌細胞的永生化[25]。本研究中,臍帶間充質(zhì)干細胞的端粒酶活性根據(jù)端粒酶逆轉(zhuǎn)錄酶TERT技術(shù)測得,端粒酶活性通過實時熒光定量PCR的Ct值直觀表現(xiàn)出來[26]。Ct值越高,說明端粒酶逆轉(zhuǎn)錄酶表達越少,端粒酶活性越低。端粒酶的相對活性通過樣品與內(nèi)參的Ct值比較推導(dǎo)出。本試驗測得MSC端粒酶相對活性(1.70)介于陰性(0)和陽性(4.33)之間,屬于正常水平(0~2.50)[27]。端粒酶表達水平高于MRC-5細胞,但沒有發(fā)生異常升高的現(xiàn)象,能發(fā)揮維持正常端粒長度的功能,不會引起端粒結(jié)構(gòu)異常,進而導(dǎo)致疾病的發(fā)生發(fā)展。端粒酶表達水平高于 MRC-5細胞這個現(xiàn)象可能和臍帶間充質(zhì)干細胞本身的增殖效率較高有關(guān),后續(xù)可對比臍帶間充質(zhì)干細胞和其他種類干細胞或分化細胞的端粒酶表達量,更加詳實地揭示端粒酶表達量和增殖效率之間的關(guān)系。
臍帶間充質(zhì)干細胞對于治療心血管疾病、血液系統(tǒng)疾病、神經(jīng)系統(tǒng)疾病、肝臟疾病等重大疾病展現(xiàn)了很好的潛能[20]。過往的研究已顯示其無異常毒性,無細菌內(nèi)毒素,過敏原低等[21]。本研究分析了臍帶間充質(zhì)干細胞的端粒酶活性、克隆形成率以及動物試驗致瘤性,結(jié)果顯示,臍帶間充質(zhì)干細胞端粒酶表達水平正常,未發(fā)現(xiàn)克隆形成和動物移植致瘤性。在后續(xù)臍帶間充質(zhì)干細胞用于臨床治療的實踐中,在考慮移植方式、移植部位和移植量并充分避免栓塞的前提下,臍帶間充質(zhì)干細胞可作為一種安全有效的細胞治療方式。
臍帶間充質(zhì)干細胞端粒酶表達水平正常,未發(fā)現(xiàn)類似癌細胞的細胞克隆形成,臍帶間充質(zhì)干細胞移植入裸鼠體內(nèi)后未發(fā)現(xiàn)致瘤性,可將臍帶間充質(zhì)干細胞作為一種安全有效的細胞治療方式。