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        電麻醉對珍珠龍膽石斑魚麻醉效應(yīng)與血液生化指標的影響

        2022-03-10 05:14:00徐文其趙昕源郭賽飛馬田田
        漁業(yè)現(xiàn)代化 2022年1期
        關(guān)鍵詞:石斑魚龍膽電擊

        白 貞,沈 建,徐文其,趙昕源,郭賽飛,馬田田

        (1 廣東海洋大學(xué)食品科技學(xué)院,廣東 湛江,524088;2 中國水產(chǎn)科學(xué)研究院漁業(yè)機械儀器研究所,上海 200092)

        石斑魚(Epinephelussp)滋味鮮美,肉質(zhì)嫩滑,逐漸成為中國東海南部和南海地區(qū)的重要經(jīng)濟養(yǎng)殖品種[1]。2020年,中國石斑魚捕撈與養(yǎng)殖總產(chǎn)量已經(jīng)達到28.3萬t,已成為深受國內(nèi)消費者喜愛的高端海鮮品種[2]。其中,廣東省與海南省為石斑魚的主產(chǎn)區(qū),產(chǎn)量占全國總產(chǎn)量的78.2%[2]。石斑魚產(chǎn)量地域性特征明顯,為滿足內(nèi)陸消費者對其的消費需求,石斑魚的高效長途運輸十分重要。石斑魚對脅迫的應(yīng)激反應(yīng)十分劇烈,如果操作不當,極易造成品質(zhì)惡化和死亡,嚴重影響了石斑魚的養(yǎng)殖生產(chǎn)與運輸流通[3-4]。

        目前,魚類麻醉主要有化學(xué)麻醉和物理麻醉兩種[5]。物理麻醉方法主要分為生態(tài)冰溫麻醉與電麻醉兩種,物理麻醉方法沒有禁藥期,也沒有藥物殘留風(fēng)險[5-6]。電麻醉無須長時間的低溫馴化,麻醉用時短,已經(jīng)成功地運用在受精取卵、疫苗注射、標志流放等魚類外科操作上[7]。但目前國內(nèi)外針對電麻醉的研究,主要局限在淡水魚,對海水養(yǎng)殖魚類涉及較少;并且由于不同品種、規(guī)格的魚對電擊的承受能力有較大差異,電麻醉參數(shù)、效果各有不同;總體而言,電麻醉技術(shù)還處于探索階段。

        1 材料與方法

        1.1 試驗原料

        本試驗選用人工養(yǎng)成后上市的鮮活珍珠龍膽石斑魚,采購于上海江楊水產(chǎn)市場,體質(zhì)量500 ± 50 g。

        采用充氣有水運輸至實驗室,停食暫養(yǎng)24 h后進行試驗。暫養(yǎng)條件參考朱乾峰[3]研究結(jié)果,設(shè)置為:循環(huán)過濾人工海水,曝氣24 h,鹽度22~25,水溫26 ±1℃,溶氧6~8 mg/L。

        1.2 儀器與設(shè)備

        LR-24便攜式魚類電麻醉設(shè)備,美國SMITH-ROOT公司(輸出電壓50~990V ,輸出頻率1~120 Hz ,輸出功率25~400 W ,通電區(qū)域1 000 mm×400 mm可調(diào)節(jié));SpectraMax i3多功能酶標儀,美國美谷分子儀器公司;VS-15000CFNⅡ高速冷凍離心機(轉(zhuǎn)速0~15 000 r/min) ,上海民儀電子有限公司;LRH-70生化培養(yǎng)箱,上海齊欣科學(xué)儀器有限公司。

        谷丙轉(zhuǎn)氨酶(GPT)、谷草轉(zhuǎn)氨酶(GOT)、乳酸脫氫酶(LDH)、葡萄糖(GLU)、乳酸(LD)試劑盒,魚皮質(zhì)醇酶聯(lián)免疫檢測試劑盒均來自南京建成生物科技有限公司。

        1.3 試驗方法

        1.3.1 行為學(xué)試驗

        參考Chatakondi[8]的研究結(jié)果,采用標準脈沖直流電作為電源,占空比25%,頻率30 Hz。 根據(jù)石斑魚體質(zhì)量進行預(yù)試驗篩選,設(shè)定試驗電壓范圍為80~150 V,電擊時間3 s,每間隔10 V設(shè)置一個試驗梯度。試驗時,每次迅速將一尾魚撈起投入電麻醉水箱(500 mm ×400 mm),電擊3 s后撈出投入暫養(yǎng)水箱,觀察并記錄試驗魚行為狀態(tài)、休眠時間。每12尾魚為一個試驗組,每尾魚僅實驗1次。試驗后統(tǒng)計不同試驗組石斑魚的麻醉率以及72 h存活率。

        1.3.2 血液生化指標測定

        根據(jù)行為學(xué)試驗結(jié)果,優(yōu)選100 V、110 V、120 V 3個電壓梯度,將試驗魚電擊后的即刻標記為0 h,分別在電擊后的0 h、4 h、8 h、12 h、24 h、48 h抽取血液,測定指標。另取一對照組,不經(jīng)任何電擊處理,標記為0 V。

        每次抽血時隨機挑選3條試驗魚,迅速從恒溫養(yǎng)殖箱中撈起,采用一次性注射器尾靜脈或尾動脈取血,取血量約為2 mL,每尾魚僅抽取一次血液。取血后將血液室溫靜置40 min、 4℃條件下,4 000 r/min反復(fù)離心,吸取上層血清測定其谷丙轉(zhuǎn)氨酶、谷草轉(zhuǎn)氨酶、乳酸脫氫酶、葡萄糖、乳酸以及皮質(zhì)醇含量。

        1.4 指標測定

        1.4.1 完全麻醉狀態(tài)

        參照馮廣朋等[9]對西伯利亞幼鱘魚電麻醉的不同階段分類,當試驗魚身體僵直,鰓動微弱,對外界刺激無條件反射能力時,認為其進入完全麻醉狀態(tài)。

        1.4.2 休眠時間

        電麻醉達到完全麻醉狀態(tài)的試驗魚,認為其從停止受到電擊刺激至可以自主直立游動,且對外界刺激有條件反射能力的時間為休眠時間。

        1.4.3 麻醉率

        將試驗魚在不同電壓下電擊3 s后,取達到完全麻醉狀態(tài)的試驗魚統(tǒng)計麻醉率,計算公式為:

        (1)

        式中:A表示麻醉率%;n表示進入完全麻醉狀態(tài)的試驗魚;N表示每組試驗中試驗魚總數(shù)。

        1.4.4 電麻醉階段分類

        參考Henyey等[10]對鱘魚電麻醉效應(yīng)的描述,將珍珠龍膽石斑魚在電麻醉通電過程中的行為表現(xiàn)分為3個階段:電刺激期、電緊張期以及電麻醉期。電刺激期試驗魚表現(xiàn)出快速游動、逃竄、掙扎等劇烈應(yīng)激行為;電緊張期試驗魚多數(shù)停止游動,肌肉震顫,身體僵直,背鰭直立,側(cè)鰭張開;電麻醉期試驗魚魚體完全僵直,鰓蓋大張,側(cè)翻或者翻肚。

        1.5 數(shù)據(jù)處理

        數(shù)據(jù)采用SPSS 19.0和Microsoft Excel 2016 處理分析,結(jié)果表示為(平均值±標準差),采用單因素ANOVA檢驗結(jié)合鄧肯檢驗法進行差異性分析,P<0.05表示差異顯著。采用Origin 2019軟件繪制相關(guān)圖表。

        2 結(jié)果

        2.1 珍珠龍膽石斑魚電麻醉行為學(xué)特征

        2.1.1 電麻醉時珍珠龍膽石斑魚的行為特征

        與鯰魚[11]、鱘魚[9]、銅魚[12]電麻醉時的行為類似,珍珠龍膽石斑魚在通電初始表現(xiàn)為快速游動、逃逸等行為,隨著通電時間的增加,試驗魚逐漸僵直,鰓蓋大張、背鰭豎直、側(cè)鰭遠離軀干且肌肉震顫,直至試驗魚出現(xiàn)側(cè)倒或翻肚,沉入池底,進入完全麻醉狀態(tài)。當麻醉電壓小于100 V時,試驗魚幾乎無法進入完全麻醉狀態(tài),在通電時間內(nèi),試驗魚快速游動、掙扎劇烈,電刺激期、電緊張期時間較長,電麻醉期時間短暫甚至不表現(xiàn)出電麻醉期的行為特征;隨著電壓的增加,麻醉的前兩個階段時間不斷縮減,當麻醉電壓為100 V左右時,絕大多數(shù)試驗魚可以進入電麻醉期進而達到完全麻醉狀態(tài),電刺激期與電緊張期的行為特征表現(xiàn)不明顯,通電過程中偶見逃竄現(xiàn)象;當電壓增加到130 V左右時,試驗魚大多通電初始便表現(xiàn)出電麻醉期的行為學(xué)特征,即鰓蓋大張、身體僵直,隨后直接進入完全麻醉狀態(tài)。

        結(jié)束通電后,在完全麻醉狀態(tài)期間,試驗魚鰓蓋閉合微弱且緩慢,身體僵直,側(cè)倒于池底,對外界刺激無反應(yīng)。隨著時間增加,鰓動速度逐漸加快,幅度加大,尾柄擺動,對外界刺激有微弱反應(yīng)。隨后實驗魚進一步恢復(fù),身體直立,鰓動正常,可以沿池壁在魚池底部緩慢游動。此時,試驗魚在無干擾的情況下行為與未電擊前幾乎無差異,但相對于對照組,仍更易于捕撈,且對捕撈、采血等脅迫表現(xiàn)出更少的掙扎,這種表現(xiàn)持續(xù)12~24 h左右。

        2.1.2 不同電壓麻醉珍珠龍膽石斑魚的休眠時間及存活率

        在25 ℃的水溫下,不同電壓電擊珍珠龍膽石斑魚至完全麻醉狀態(tài)后,試驗魚的休眠時間及72 h存活率如表1。從表1得,麻醉率、休眠時間與電壓成正相關(guān),其中,當電擊電壓為80 V時,試驗魚休眠時間為0 min,即停止通電后的試驗魚放回暫養(yǎng)水缸便立即恢復(fù)正常游動狀態(tài);當電擊電壓為100 V時,麻醉率為92%,休眠時間為17.0±3.84 min,與80 V、90 V試驗組差異顯著,(P<0.05);電擊電壓為130 V時,試驗魚72 h存活率僅為45%。

        表1 不同電壓麻醉對珍珠龍膽石斑魚的麻醉效果

        2.2 不同電壓麻醉對珍珠龍石斑魚血清中酶類的影響

        如圖1所示,電麻醉后試驗魚血清中GOT活力呈先上升后下降的趨勢,100 V、110 V、120 V試驗組電擊后即刻的GOT(谷草轉(zhuǎn)氨酶)活力分別是35.92 U/L、39.99 U/L、46.15 U/L,3組數(shù)值均與對照組有顯著性差異。相較于0 h,電麻醉后4 h各試驗組珍珠龍膽石斑魚血清中GOT活力均上升達到最大值,其中120 V試驗組GOT活力最大,達53.96 U/L,與其他組別差異顯著,100 V試驗組血清 GOT 水平低于其他試驗組;麻醉4 h之后,各試驗組GOT活力均開始持續(xù)下降。

        圖1 不同電壓麻醉珍珠龍膽石斑魚血液中谷草轉(zhuǎn)氨酶濃度的變化

        如圖2所示,120 V、110 V試驗組的GPT(谷丙轉(zhuǎn)氨酶)活力隨時間增加而下降,100 V試驗組的血清GPT 活力則呈先下降后上升的趨勢。

        圖2 不同電壓麻醉珍珠龍膽石斑魚血液中谷丙轉(zhuǎn)氨酶濃度的變化

        試驗0 h時,100 V、110 V、120 V試驗組均與對照組差異顯著;試驗72 h時,110 V試驗組的血清谷丙轉(zhuǎn)氨酶活力下降至185.78 U/L,與對照組差異不顯著。此時,100 V試驗組 GPT 活力試驗全程低于對照組,且差異顯著。

        如圖3,各試驗組的LDH(乳酸脫氫酶)活力隨時間變化呈先下降后平穩(wěn)變化的趨勢,并且表現(xiàn)出電壓越高,LDH活力越高的特點。0 h時,3個試驗組均與對照組差異顯著,且三者之間,兩兩對比差異顯著;試驗4 h時,100 V試驗組LDH活力開始降低并達到對照組水平以下;試驗12 h時,110 V試驗組LDH活力降低至72.96 U/L,低于對照組水平;試驗48 h時,120 V試驗LDH活力仍顯著高于對照組,110 V試驗組LDH活力低于對照組且差異不顯著,100 V試驗組LDH活力低于對照組且差異顯著。

        圖3 不同電壓麻醉珍珠龍膽石斑魚血液中乳酸脫氫酶濃度的變化

        2.3 不同電壓麻醉對珍珠龍石斑魚能量代謝的影響

        如圖4所示,電麻醉后的珍珠龍膽石斑魚的血糖呈先上升后下降的趨勢,并在12 h后趨于平穩(wěn)。電麻醉后4 h試驗組達到血糖最大值。其中,120 V試驗組血糖值最高,達到1.95 mol/L;100 V試驗組血糖最低,為0.69 mol/L,與對照組無顯著性差異。試驗12 h時,110 V試驗組血糖值與對照組無顯著性差異。

        圖4 不同電壓麻醉珍珠龍膽石斑魚血糖的變化

        電麻醉后血液中的乳酸含量變化趨勢與血糖變化相類似(圖5)。試驗4 h時,試驗組乳酸水平達到最大值,其中120 V試驗組乳酸水平遠高于其他組,為1.69 mol/L。隨著時間的增加,各試驗組乳酸含量逐漸與對照組接近。試驗12 h,3個試驗組乳酸水平全部低于對照組,且兩兩差異顯著;在麻醉后的48 h,各試驗組與對照組均沒有顯著性差異。

        圖5 不同電壓麻醉珍珠龍膽石斑魚血液中乳酸的變化

        2.4 不同電壓麻醉對珍珠龍石斑魚皮質(zhì)醇的影響

        如圖6所示, 電麻醉后血液中皮質(zhì)醇含量與電擊電壓呈正相關(guān),電壓越大,皮質(zhì)醇含量越高。麻醉后4 h時,皮質(zhì)醇含量達到最大值,然后逐漸與對照組接近。其中,120 V、110 V試驗組皮質(zhì)醇水平在試驗全程均高于對照且差異顯著;100 V試驗組在試驗進行的4 h后與對照組沒有顯著性差異。

        圖6 不同電壓麻醉珍珠龍膽石斑魚血液中皮質(zhì)醇的變化

        3 討論

        3.1 電麻醉對珍珠龍膽石斑魚行為學(xué)與存活率的影響

        通過對珍珠龍膽石斑魚的電麻醉試驗發(fā)現(xiàn),試驗魚在遭受電擊時表現(xiàn)出明顯的電刺激(快速游動)、電緊張(肌肉收縮)與電麻醉(肌肉放松)[10]。在其他條件一定時,電擊電壓越高,試驗魚的麻醉率越高、休眠時間越長。當電壓小于100 V時,電擊對珍珠龍膽石斑魚的脅迫效應(yīng)大于麻醉效應(yīng),導(dǎo)致石斑魚在通電時快速竄動、劇烈掙扎,不能進入完全麻醉狀態(tài),或者休眠時間極短,甚至斷電即蘇醒,馮廣朋等[13]對西伯利亞鱘魚(Acipenserbaerii)也有相似的研究結(jié)果;而當電壓大于120 V,除了可能出現(xiàn)的臟器損傷、脊椎損傷與出血[11],還會造成魚復(fù)蘇后的生理紊亂[5],影響試驗魚的存活率。電擊后復(fù)蘇的試驗魚對脅迫仍會表現(xiàn)出一定遲緩,且這種行為持續(xù)12~24 h,這與Bowzer等[14]對草魚電麻醉后得到的結(jié)果相類似。

        3.2 電麻醉對珍珠龍膽石斑魚血清生化指標的影響

        3.2.1 電麻醉對珍珠龍膽石斑魚血清酶類的影響

        谷丙轉(zhuǎn)氨酶與谷草轉(zhuǎn)氨酶主要富集在肝臟細胞中,當肝臟細胞功能正常時,血液中的兩種轉(zhuǎn)氨酶活性較低且較穩(wěn)定[15]。因此,經(jīng)常通過對谷丙轉(zhuǎn)氨酶與谷草轉(zhuǎn)氨酶的活力大小判斷肝損傷情況。不同電壓電擊石斑魚至麻醉均會導(dǎo)致谷草轉(zhuǎn)氨酶活性顯著升高,但麻醉12 h后,各試驗組轉(zhuǎn)氨酶活性逐漸接近對照組,100 V試驗組的谷丙轉(zhuǎn)氨酶活性在試驗全程始終低于對照組,其他試驗組在0 h時谷丙轉(zhuǎn)氨酶活力顯著性高于對照組,并在隨后逐漸下降,表明過高的電壓電擊麻醉對魚體肝臟造成一定影響。適宜的麻醉對魚類保活過程中的心臟、肝臟損傷有減緩作用[16],對比對照組,100 V的標準脈沖直流電電擊使試驗魚在麻醉狀態(tài)下進行采血操作,對魚體的肝臟有一定保護功能,隨著麻醉狀態(tài)的消失,100 V試驗組的谷丙轉(zhuǎn)氨酶活性在8 h后隨時間推移逐漸上升也證明了這一點。

        乳酸脫氫酶是糖代謝途徑中不可或缺的一種酶,廣泛存在于各個器官內(nèi),當魚體受到外界環(huán)境刺激或組織器官發(fā)生病變、損傷時,其相對應(yīng)的機體內(nèi)環(huán)境、組織器官中的 LDH 就會發(fā)生變化[17],無氧呼吸、心肌損傷等均會引起體內(nèi)乳酸脫氫酶活力升高[16]。本研究中,0 h時各試驗組LDH活性的升高也可能與電擊激活試驗魚體內(nèi)糖的無氧酵解過程,導(dǎo)致參與代謝的LDH大量增多并被釋放至血液中有關(guān)。與直接捕撈采血的對照組相比較,隨著時間推移,除120 V試驗組外,其他試驗組的LDH活力均逐漸低于對照組,且100 V試驗組顯著性低于其他試驗組,這可能表明電麻醉對珍珠龍膽石斑魚心肌的脅迫較小,且是可逆的。在對史氏鱘魚[18]與圓口銅魚幼魚[12]的電麻醉試驗中也認為適當?shù)碾姄魧π募缀鯖]有損傷。

        3.2.2 電麻醉對珍珠龍膽石斑魚能量代謝的影響

        血液中的葡萄糖為魚的各種生命活動供應(yīng)能量[19]。在應(yīng)激條件下,魚體能量消耗增加,糖原加速分解,皮質(zhì)醇等激素加大肝臟進行糖異生反應(yīng),使得血糖進一步提高,這種現(xiàn)象稱為“應(yīng)激性高血糖癥”,廣泛地出現(xiàn)在各種魚類中[11,20-22]。Barcellos等[23]認為應(yīng)激性高血糖反應(yīng)較為靈敏且一般在出現(xiàn)后的24 h左右消失,因此可以利用血糖濃度輔助判斷魚類的應(yīng)激大小。本研究中,110 V、120 V試驗組在電擊后血糖升高,與對照組差異顯著,不適宜作為珍珠龍膽石斑魚的麻醉電壓。

        機體血液中乳酸與血糖有著相應(yīng)的關(guān)系[24]。乳酸主要在機體供氧不足時,細胞供能轉(zhuǎn)變?yōu)樘墙徒猱a(chǎn)生,血液中乳酸的濃度可以用來判斷無氧呼吸的強度[25]。本試驗中,環(huán)境溶氧充足的情況下,試驗組珍珠龍膽石斑魚血液中的乳酸可能來自受到電擊產(chǎn)生的掙扎、肌肉緊張等短時劇烈的物理活動以及電擊后,石斑魚處于麻醉狀態(tài),緩慢微弱的呼吸。對照組試驗魚體內(nèi)的乳酸則受到捕撈采血時的應(yīng)激性物理活動影響。隨著電麻醉效應(yīng)的消失,試驗組血液中乳酸水平逐漸接近對照組,這與Trushenski等[26]對鱸魚電擊后得到的血液中乳酸濃度水平變化趨勢相類似。通過對試驗魚血糖水平、皮質(zhì)醇含量分析,100 V電擊麻醉對試驗魚的脅迫不大于對照組,同時,電擊使試驗魚迅速進入完全麻醉狀態(tài),減少了試驗魚在隨后人工操作時的掙扎應(yīng)激,在乳酸水平上表現(xiàn)出較對照組的顯著性優(yōu)勢。在針對羅非魚(Oreochromisniloticus)[27]的電麻醉試驗中也出現(xiàn)類似情況,即在合適的電麻參數(shù)下,羅非魚體內(nèi)乳酸濃度低于直接捕撈采血的對照組。

        3.2.3 電麻醉對珍珠龍膽石斑魚血液中皮質(zhì)醇水平的影響

        皮質(zhì)醇被認為是魚類應(yīng)激最敏感的激素指標,在應(yīng)激后的0.5~24 h內(nèi),皮質(zhì)醇水平可以提升至應(yīng)激前的10~100倍[28-29]。本研究中,不同實驗條件獲得的皮質(zhì)醇濃度變化曲線相類似,均在4 h時達到最高峰,隨后開始下降,類似的變化也出現(xiàn)在鱸魚幼魚[30]的電麻醉實驗中;100 V試驗組皮質(zhì)醇濃度0 h低于對照組,4 h時略高于對照組,之后與對照組水平相當,且變化平緩,表明100 V的脈沖標準直流電電擊麻醉對試驗魚的脅迫略高于直接捕撈采血,但差異不顯著,更適于珍珠龍膽石斑魚的電麻醉。

        4 結(jié)論

        電麻醉用時短,休眠時間長,有利于人工操作與提升運輸?;钸^程中的品質(zhì)與效率。但國內(nèi)外對電麻醉的研究仍不夠深入??紤]到不同個體對電麻醉的敏感度不同,目前,國內(nèi)僅針對少數(shù)幾種魚進行試驗,且麻醉休眠時間較短,大部分處于“斷電即活”狀態(tài),沒有真正進入休眠狀態(tài);美國史密斯公司研發(fā)的電麻醉設(shè)備,但未給出電麻醉具體參數(shù),需要用戶根據(jù)經(jīng)驗摸索,造成主觀影響。本研究針對高價值海洋魚類珍珠龍膽石斑魚進行電麻醉,發(fā)現(xiàn)合理設(shè)置電麻醉的各項參數(shù)可以有效地減少電麻醉對魚體的傷害,并同時延長休眠時間,有利于珍珠龍膽石斑魚在養(yǎng)殖運輸過程中的各項人工操作的開展,減少損耗。關(guān)于珍珠龍膽石斑魚的相關(guān)電麻醉技術(shù)還需進一步研究,后續(xù)將深入開展環(huán)境溫度等因素的研究試驗工作,為提高珍珠龍膽石斑魚保活流通過程的品質(zhì)與效率提供參考。

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