古麗丹·塔勒達吾，魏嘉怡，李 乾，劉彩紅，王 靜，馮作山

（新疆農(nóng)業(yè)大學食品科學與藥學學院，新疆果品采后科學與技術(shù)重點實驗室，新疆 烏魯木齊 830052）

哈密瓜屬葫蘆科甜瓜屬[1]，是典型的呼吸躍變型果實[2]，因其口感爽脆、果肉甘甜、營養(yǎng)價值高等優(yōu)點，深受廣大人民喜愛[3]，在新疆農(nóng)業(yè)經(jīng)濟中占有重要的地位[4]。但因哈密瓜收獲期正值高溫季節(jié)，加之其含糖量高，水分多，在運銷時極易受到致病菌的侵染，引起品質(zhì)下降及腐爛[5]，嚴重制約新疆哈密瓜產(chǎn)業(yè)的健康發(fā)展[6]。關(guān)于哈密瓜采后保鮮已有不少學者對此進行研究。李學文[7]發(fā)現(xiàn)使用1μ/L 1-MCP處理“早黃蜜”哈密瓜，可降低果實呼吸作用及腐爛率，延長保鮮期。陳俊嘉[8]研究表明：使用20 g/L殼聚糖涂膜處理“西州蜜17號”哈密瓜，可延緩果實可溶性固形物和VC含量的下降速度。50℃熱處理“8501”哈密瓜可明顯延遲果實呼吸高峰的出現(xiàn)[9]。0.5 g/L殼寡糖處理“西州蜜25號”哈密瓜可有效抑制果實硬度、抗壞血酸含量和可滴定酸含量的下降[10]。嘧菌酯處理“西州蜜25號”哈密瓜能有效抑制果實采后的腐爛[11]。葡萄專用袋套袋處理“雪里紅”哈密瓜，能有效減少果實的表面病斑[12]。微波處理“金皇后”哈密瓜60 s可降低果實的呼吸速率和腐爛率等[13]。但是臭氧處理“西州蜜25”號哈密瓜的研究尚不多見。

臭氧（O3）是氧氣（O2）的同素異形體[14]，是一種具有特殊氣味、不穩(wěn)定的淡藍色氣體，具有很強的消毒、滅菌功能[15]。有研究表明：臭氧能夠有效地抑制大腸桿菌、金黃色葡萄球菌等致病菌[16]。臭氧也是強氧化劑[17]，能將乙烯氧化分解為CO2和H2O，減緩果蔬的新陳代謝，實現(xiàn)保鮮作用[15]。有研究表明：臭氧處理對柑橘[18]、鮮切西蘭花[19]和巨峰葡萄[20]等果實表面的抑菌效果顯著，可延緩黑寶石李[21]和庫爾勒香梨[22]硬度的下降速率，有效抑制桑葚[23]和碭山酥梨[24]等果實的呼吸強度，保持柿子[25]和黃花梨[26]等果實的可滴定酸和VC，抑制菠菜[27]和紅富士蘋果[28]丙二醛（MDA）含量的上升，保持較高的過氧化物酶（POD）活性。截至目前，已有少量報道臭氧處理哈密瓜的研究。白友強[29]在低溫（6～8℃）條件下采用濃度為4.28 mg/cm3臭氧、間隔時間24 h處理“西州蜜17號”哈密瓜40 min，可較好地保持甜瓜果實采后品質(zhì)。王麗[30]采用100μL/L臭氧處理“河套密瓜”，并于5℃下貯藏，發(fā)現(xiàn)該處理使甜瓜的品質(zhì)下降得到明顯改善。但是對“西州蜜25號”哈密瓜采用10 mg/m3臭氧處理4 h，研究其常溫貯藏效果尚未見相關(guān)報道。因此，本文以“西州蜜25號”哈密瓜為試材，采用10 mg/m3臭氧處理，并于常溫下貯藏，分析其品質(zhì)變化情況，以期為臭氧在哈密瓜貯藏保鮮中的應(yīng)用提供理論參考依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料與設(shè)備

1.1.1 材料與試劑

“西州蜜25號”哈密瓜，于2019年7月20日采收于新疆維吾爾自治區(qū)五家渠市商品瓜基地，挑選采摘質(zhì)量為2.0 kg左右，可溶性固形物含量為10%～12%的哈密瓜。將采后果實單獨套裝發(fā)泡網(wǎng)，每4個裝于1個標準紙箱，立即運送至新疆農(nóng)業(yè)大學食品科學與藥學學院冷庫，在4℃下預(yù)冷12 h后進行臭氧處理。

草酸、酒石酸鉀鈉，天津市致遠化學試劑有限公司；氯化鋇，西隴科學股份有限公司；氫氧化鈉、乙酸乙酯，國藥集團化學試劑有限公司；酚酞、考馬斯亮藍G-250，天津市福晨化學試劑廠；乙醇，天津市鑫鉑特化工有限公司；2，6-二氯靛酚，上海源葉生物科技有限公司；3，5-二硝基水楊酸，上?？曝S實業(yè)有限公司；結(jié)晶酚，天津市風船化學試劑科技有限公司；亞硫酸鈉，天津市盛淼精細化工有限公司；濃硫酸，成都市科隆化學品有限公司；蒽酮，上海展云化工有限公司。

1.1.2 儀器與設(shè)備

WZ-108 Brix手持式折光儀，上海亮研智能科技有限公司；LANCE電子天平，上海浦春計量儀有限公司；DZKW-S-4電熱恒溫水浴鍋，北京市永光明醫(yī)療儀器有限公司；752 N紫外-可見分光光度計，上海光譜有限公司；GY-3硬度計，上海精密儀器儀表有限公司；HY-004S-4A臭氧發(fā)生器，廣州佳環(huán)科技有限公司；DDS-307雷磁電導率儀，上海儀電科學儀器股份有限公司。

1.2 方法

1.2.1 處理方法

挑選出大小均一、無機械損傷、無病害、表面光澤的果實為試材。將挑選出的哈密瓜果實清洗干凈后自然晾干，再將哈密瓜分批裝于50 L具有上通氣口的塑料桶中（塑料密封蓋用塑料膜和多層膠帶封口），開啟臭氧發(fā)生器，用濃度為10 mg/m3的臭氧（臭氧濃度0 mg/m3為對照組）連續(xù)充氣4 h，一次放入10個果實，對照組和處理組分別處理15次，每組分別為150個果實，每次處理間隔10 min。然后將2組果實放置于溫度為（22±2）℃，相對濕度為45%的常溫環(huán)境中。每3 d進行取樣觀察和相關(guān)指標測定，每次取樣后不進行臭氧處理。從各組果實中分別隨機取10個果實作為觀察果，觀察腐爛癥狀；測定相關(guān)指標時每次每組隨機取3個瓜，每個瓜重復測定3次，共取樣6次。

1.2.2 測定項目與方法

1.2.2.1 腐爛指數(shù)

參照陳存坤等[31]的方法進行測定。將哈密瓜按腐爛面積大小分為9級：0級為果實無病斑；1級為直徑0.5 cm以下的分散零星小病斑在15個以上；2級：直徑1.0 cm以下的小病斑在15個以上，或總斑面積小于3%；3級為最大病斑或病斑連成片直徑1～3 cm之間不超過3個，或總病斑面積不超過5%；4級為最大病斑直徑3 cm以上，全果病斑面積5%～10%；5級為全果10%～20%面積腐爛；6級為全果20%～40%面積腐爛；7級為40%～60%果面腐爛；8級為全果腐爛。腐爛指數(shù)計算公式：

1.2.2.2 呼吸強度

采用曹建康等[32]的靜置法測定。用移液管吸取10.0 mL 0.4 mol/L NaOH至培養(yǎng)皿中，將培養(yǎng)皿放到呼吸室（玻璃干燥器）底部，放置隔板，將整個瓜稱重后放入呼吸室，封蓋，密閉30 min后取出培養(yǎng)皿，將堿液移入三角瓶中，加入5.0 mL飽和BaCl2溶液和2滴酚酞指示劑，并用0.1 mol/L草酸溶液滴定，同時進行空白滴定。呼吸強度計算公式如下：

式中：V1為空白滴定中草酸溶液用量，mL；V0為測定滴定中草酸溶液用量，mL；C為草酸溶液物質(zhì)的量濃度，mol/L；m為果實質(zhì)量，kg；t為測定時間，h。

1.2.2.3 硬度

參照曹建康等[32]的方法測定。將哈密瓜切開，使用硬度計分別在哈密瓜中部的2 cm處均勻取4個點測定果實硬度。硬度計算公式如下：

式中：P為果實硬度，kg/cm2；N為測力彈簧壓在果實面上的力，kg；S為果實的受力面積，cm2。

1.2.2.4 抗壞血酸含量

采用2,6-二氯酚靛酚法[32]測定。分別在哈密瓜的前、中、后3個部位取10.0 g瓜肉組織，用10 mL 2%草酸冰浴條件下研磨，并定容至25 mL容量瓶中，靜置10 min后，過濾收集濾液。用移液管吸取10.0 mL濾液置于100 mL三角瓶中，用標定過的2,6-二氯酚靛酚溶液滴定至出現(xiàn)微紅色且15 s內(nèi)不褪色，記錄染料用量，試驗重復3次，同時進行空白試驗。

1.2.2.5 可溶性固形物含量

參照張慧杰等[33]的方法，使用手持式折光儀測定。分別在哈密瓜的前、中、后3個部位取瓜肉組織10.0 g，用打漿機打碎，再用紗布過濾后將樣品液滴在折光儀的檢測鏡上，合上蓋板，讀數(shù)并記錄下來，即為樣品液的可溶性固形物含量，用質(zhì)量分數(shù)（%）表示，試驗重復3次。

1.2.2.6 可滴定酸含量

采用氫氧化鈉溶液滴定法測定。根據(jù)NaOH滴定液消耗量計算果實中可滴定酸含量?？傻味ㄋ岷坑嬎愎饺缦拢?/p>

式中：V為樣品提取液總體積，mL；C為NaOH滴定液濃度，mol/L；V1為滴定濾液消耗NaOH溶液體積，mL；V0為滴定蒸餾水消耗的NaOH溶液體積，mL；D為折算系數(shù)，g/mmol；V2為滴定時所取濾液體積，mL；m為樣品質(zhì)量，g。

1.2.2.7 相對電導率

參照王靜等[34]的方法測定。采用直徑1.5 cm打孔器打取哈密瓜前、中、后3個部位的果肉，將其切成5 mm的薄片，每個部位各取4片，分別置于100 mL燒杯中，加入50 mL蒸餾水，浸泡1 h后換水繼續(xù)浸泡，重復沖洗3次，保留最后1次沖洗的蒸餾水。采用電導率儀測定蒸煮前后的細胞膜透性，試驗重復3次，結(jié)果以平均值表示，單位為%。

1.2.2.8 可溶性蛋白含量

采用考馬斯亮藍染色法[32]測定。分別取哈密瓜的果皮組織和果肉組織各取2.0 g，加入5.0 mL蒸餾水研磨成勻漿后，于4℃、12 000 r/min離心20 min，收集上清液；用移液管移取1.0 mL上清液，放置試管中加入5.0 mL考馬斯亮藍G-250溶液，充分混勻后放置2 min，使用紫外-可見分光光度計在595 nm波長處比色，試驗重復3次。

1.2.2.9 可溶性糖含量

參照曹建康等[32]的苯酚-硫酸法測定。分別取哈密瓜的果肉組織和果皮組織各1.0 g，加入少量蒸餾水研磨成勻漿后轉(zhuǎn)入刻度試管中，定容到10.0 mL；用塑料膜封口后于沸水中煮沸30 min，取出冷卻后過濾至100 mL容量瓶中，再將殘渣回收繼續(xù)加蒸餾水煮沸，并過濾至100 mL容量瓶中，反復用蒸餾水漂洗過濾后并定容；吸取0.5 mL樣品液于25 mL刻度試管中，加入1.5 mL蒸餾水后按順序加入0.09 g/mL苯酚溶液、濃硫酸，顯色并測定吸光度值，重復3次?？扇苄蕴呛坑嬎愎饺缦拢?/p>

式中：m為從標準曲線查得的蔗糖質(zhì)量，μg；V1為樣品提取液總體積，mL；D為樣品提取液稀釋倍數(shù)；V2為測定時所需樣品提取液體積，mL；m1為樣品質(zhì)量，g。

1.2.3 數(shù)據(jù)處理

采用WPS Office 2020軟件進行數(shù)據(jù)統(tǒng)計，Origin 2019進行制圖，并使用SPSS 17進行顯著性分析。

2 結(jié)果與分析

2.1 臭氧處理對哈密瓜腐爛癥狀和腐爛指數(shù)的影響

如圖1A所示，常溫貯藏第9天，對照組果實腐爛癥狀明顯，較臭氧處理組嚴重。對照組果實的表皮出現(xiàn)明顯皺縮現(xiàn)象，并有病斑形成；而臭氧處理組的腐爛情況不明顯，只有瓜皮表面發(fā)黃現(xiàn)象，與腐爛指數(shù)相吻合（圖2）。貯藏至18 d時，對照組果實的皺縮和腐爛情況較嚴重，果實凹陷斑面積增大，貼地生長的一面尤其嚴重，臭氧處理組的果實表皮發(fā)軟、發(fā)黃，皺縮較為明顯，但腐爛情況較輕，幾乎沒有病斑的形成（圖1B），腐爛指數(shù)變化也顯著高于臭氧處理組（P＜0.05）（圖2）。由此可以看出，臭氧處理可以有效地抑制病原菌生長，延緩哈密瓜果實的腐爛。

圖1 哈密瓜常溫貯藏9 d（A）和18 d（B）的腐爛癥狀圖Fig.1 Symptoms of decay of Hami melon during room storage for 9 days(A)and 18 days(B)

如圖2所示，對照組果實從第6天開始出現(xiàn)腐爛，而臭氧處理組在第9天時出現(xiàn)腐爛，且隨著貯藏時間的延長，兩組果實的腐爛指數(shù)均逐漸上升，但臭氧處理組顯著低于對照組（P＜0.05），表明臭氧處理可顯著降低果實的腐爛。

圖2 臭氧處理對哈密瓜腐爛指數(shù)的影響Fig.2 Effect of O3 treatment on decay index of Hami melon

2.2 臭氧處理對哈密瓜呼吸強度的影響

果實組織代謝和衰老進程的快慢可以用呼吸強度來衡量，因此，呼吸強度是采后生理研究和貯藏實踐中重要的生理指標之一[35]。如圖3所示，隨著貯藏時間的延長，呼吸強度呈現(xiàn)動態(tài)變化；對照組在貯藏第9天出現(xiàn)小高峰，達到4.48 mg/kg-1·h-1；貯藏9～15 d時，對照組與臭氧處理組間呼吸強度存在顯著差異（P＜0.05）；貯藏末期（15～18 d），兩組同時快速下降，但臭氧處理組的下降速率更快；貯藏結(jié)束時，臭氧處理組的呼吸強度較對照組低31.5%，對照組的呼吸強度極顯著高于臭氧處理組（P＜0.01），說明臭氧處理可降低哈密瓜果實的呼吸強度。

圖3 臭氧處理對哈密瓜呼吸強度的影響Fig.3 Effect of O3 treatment on respiratory intensity of Hami melon

2.3 臭氧處理對哈密瓜硬度的影響

果實硬度是衡量哈密瓜果實貯藏品質(zhì)的重要指標[36]。如圖4所示，隨著貯藏時間的延長，兩組哈密瓜果實硬度在貯藏中期（6～9 d）、貯藏中后期（12～18 d）均呈快速下降的趨勢。在貯藏初始，哈密瓜果實的硬度為5.82 kg/cm2；貯藏結(jié)束時，對照組和臭氧處理組果實的硬度分別為2.12 kg/cm2和2.83 kg/cm2，較貯藏初值分別下降了46.7%和39.9%，臭氧處理組的果實硬度極顯著高于對照組（P＜0.01），表明臭氧處理可以延緩哈密瓜果實硬度的下降。

圖4 臭氧處理對哈密瓜硬度的影響Fig.4 Effect of O3 treatment on hardness of Hami melon

2.4 臭氧處理對哈密瓜抗壞血酸含量的影響

如圖5所示，在整個貯藏過程中，兩組果實的抗壞血酸含量差別不大，除第6天、第9天和第15天的對照組高于臭氧處理組之外，其余時間點臭氧處理組均高于對照組，且貯藏中期（9～12 d）兩組果實抗壞血酸含量存在顯著差異（P＜0.05）；兩組果實的抗壞血酸含量均呈急速下降趨勢，以貯藏15～18 d表現(xiàn)更加突出，貯藏結(jié)束時，對照組和臭氧處理組哈密瓜的抗壞血酸含量分別較貯藏初值降低了77.8%和68.7%，對照組哈密瓜抗壞血酸含量顯著低于臭氧處理組（P＜0.05）。說明臭氧處理組對抑制哈密瓜果實抗壞血酸含量的下降作用在貯藏結(jié)束（18 d）表現(xiàn)更加顯著。

圖5 臭氧處理對哈密瓜抗壞血酸含量的影響Fig.5 Effect of O3 treatment on ascorbic acid content of Hami melon

2.5 臭氧處理對哈密瓜可溶性固形物含量的影響

可溶性固形物含量是衡量哈密瓜果實品質(zhì)好壞及貯藏品質(zhì)的重要指標之一[37]。如圖6所示，貯藏0～6 d時，兩組果實的可溶性固形物含量緩慢上升，貯藏第3天對照組極顯著高于臭氧處理組（P＜0.01）。貯藏9～15 d時，對照組低于臭氧處理組；貯藏第15天時，臭氧處理組可溶性固形物含量極顯著高于對照組（P＜0.01）。表明臭氧處理在貯藏中后期（9～15 d）能有效保持哈密瓜果實的可溶性固形物含量。

圖6 臭氧處理對哈密瓜可溶性固形物含量的影響Fig.6 Effect of O3 treatment on soluble solids content of Hami melon

2.6 臭氧處理對哈密瓜可滴定酸含量的影響

如圖7所示，隨著貯藏時間的延長，兩組哈密瓜的可滴定酸含量在貯藏0～3 d呈直線上升趨勢，前中期（3～9 d）呈直線下降趨勢，臭氧處理組高于對照組；在貯藏12 d時，對照組和臭氧處理組均出現(xiàn)高峰值，之后呈急劇下降趨勢，且存在顯著差異（P＜0.05）；貯藏12～15 d，對照組果實的可滴定酸含量高于臭氧處理組。貯藏第6天和第9天時，臭氧處理的哈密瓜可滴定酸含量均顯著高于對照組（P＜0.05）。表明臭氧處理在貯藏前期（0～9 d）能有效延緩哈密瓜果實可滴定酸含量的降低。

圖7 臭氧處理對哈密瓜可滴定酸含量的影響Fig.7 Effect of O3 treatment on titratable acid content of Hami melon

2.7 臭氧處理對哈密瓜相對電導率的影響

如圖8所示，貯藏前期（3～6 d）兩組哈密瓜果實的相對電導率呈上升趨勢，在貯藏中期（6～9 d）兩組哈密瓜果實的相對電導率呈下降趨勢，且存在顯著差異（P＜0.05），在0～9 d對照組果實的相對電導率高于臭氧處理組；在12～18 d臭氧處理組高于對照，在第9天時兩組果實相對電導率均下降，且臭氧處理組果實的相對電導率顯著低于對照組（P＜0.05），表明臭氧處理在貯藏前期（0～9 d）可顯著降低果實相對電導率上升，而后期使細胞膜結(jié)構(gòu)的破壞加速。

圖8 臭氧處理對哈密瓜相對電導率的影響Fig.8 Effect of O3 treatment on relative conductivity of Hami melon

2.8 臭氧處理對哈密瓜可溶性蛋白含量的影響

如圖9所示，臭氧處理組和對照組哈密瓜可溶性蛋白含量均呈先下降后上升的趨勢。貯藏第6天時，臭氧處理組與對照組的可溶性蛋白含量接近；貯藏中期（9～12 d）兩組可溶性蛋白含量均小幅度下降，且存在顯著差異（P＜0.05）；貯藏第9天時，臭氧處理組可溶性蛋白含量較對照組高17%，二者間呈顯著差異（P＜0.05）。表明臭氧處理在貯藏中期（6～12 d）可顯著提高果實的可溶性蛋白含量。

圖9 臭氧處理對哈密瓜可溶性蛋白含量的影響Fig.9 Effect of O3 treatment on soluble protein content of Hami melon

2.9 臭氧處理對哈密瓜可溶性糖含量的影響

如圖10所示，在貯藏前中期（0～12 d），兩組哈密瓜果實的可溶性糖含量呈緩慢上升的趨勢，且在9～12 d臭氧處理組的可溶性糖含量顯著高于對照組（P＜0.05），表明臭氧處理發(fā)揮作用主要在貯藏的0～12 d。貯藏12～18 d，兩組哈密瓜果實的可溶性糖含量呈下降趨勢，且在15～18 d對照組高于臭氧處理組。表明臭氧處理在貯藏前中期（0～12 d）可延緩哈密瓜可溶性糖含量的下降。

圖10 臭氧處理對哈密瓜可溶性糖含量的影響Fig.10 Effect of O3 treatment on soluble sugar content of Hami melon

3 討論

腐爛是果蔬在貯藏過程中最直觀的感官指標之一[38]。隨著貯藏期的延長，兩組哈密瓜果實的腐爛情況隨之加重，貯藏結(jié)束時，對照組哈密瓜的腐爛指數(shù)顯著高于臭氧處理組（P＜0.05），表明臭氧處理可降低哈密瓜的腐爛指數(shù)，對抑制果實腐爛的發(fā)生具有一定作用，這與白友強[29]的研究結(jié)果不同，可能是因為貯藏后期果實硬度不斷降低，果皮細胞間通透性增大，使病原菌更加容易地擴散到果肉組織中，致使腐爛加快。

呼吸強度是采后果蔬新陳代謝的重要指標，是預(yù)測果蔬壽命的依據(jù)之一[28]。本試驗結(jié)果表明：常溫貯藏9～15 d，兩組哈密瓜果實的呼吸強度之間存在顯著差異（P＜0.05）；貯藏結(jié)束時，臭氧處理組的呼吸強度較對照組低31.5%，二者間達極顯著差異（P＜0.01），表明臭氧處理能顯著抑制哈密瓜呼吸作用。這與劉晉聯(lián)等[39]和王麗[30]的研究結(jié)果相似，與白友強[29]的研究結(jié)果不同，是因為貯藏后期臭氧分解為氧氣，使甜瓜環(huán)境氧分壓增大，加之甜瓜自身生理代謝旺盛，產(chǎn)生大量的乙烯、乙醛等有害氣體，從而加快了呼吸代謝。

果實硬度、可滴定酸、可溶性固形物等可以作為判定果實成熟的重要指標[25]，其中抗壞血酸、可溶性固形物、可滴定酸是果蔬的重要營養(yǎng)成分指標，一般在保鮮過程中呈下降趨勢[40]。本驗結(jié)果表明：臭氧在不同貯藏階段可有效延緩哈密瓜果實的硬度、可溶性固形物含量、抗壞血酸、可滴定酸等品質(zhì)指標的下降。與張琦等[41]和周慧娟等[42]在樹莓果實和宮川柑橘的結(jié)果相同，可溶性固形物含量的結(jié)果與王麗[30]的結(jié)果不同，這可能與哈密瓜品種不同以及臭氧濃度、貯藏溫度不同有關(guān)。

果蔬中的可溶性糖主要是指可溶于水的葡萄糖和寡聚糖，與果蔬的成熟度、品質(zhì)、貯藏性有著密切的關(guān)系，也是果蔬甜味物質(zhì)的主要來源[32]。在貯藏0～12 d，臭氧處理組可溶性糖含量始終高于對照組，表明臭氧處理發(fā)揮作用主要在常溫貯藏的0～12 d。該結(jié)論與徐維微[43]得出的4 mg/L臭氧處理能有效提高可溶性糖含量，保持果實營養(yǎng)成分的結(jié)果一致。

果實組織的相對電導率反映了組織細胞膜的完整性和衰老程度[44]。對照組果實的相對電導率在貯藏0～9 d高于臭氧處理組；貯藏第9天，臭氧處理組的相對電導率顯著低于對照組（P＜0.05），而后期臭氧處理加速破壞細胞膜結(jié)構(gòu)。其中貯藏后期果蔬電導率上升的原因可能是由于臭氧能夠迅速透過微生物的細胞壁和細胞膜，使細胞膜上的巰基等基團受到攻擊，從而使細胞膜受到損傷，導致細胞膜的通透性增加，細胞內(nèi)物質(zhì)外泄[16]?？扇苄缘鞍资枪麑嵵兄匾臐B透調(diào)節(jié)物質(zhì)和營養(yǎng)物質(zhì)，用于保護果蔬細胞的生命物質(zhì)及生物膜，起到保水作用[38]。結(jié)果表明，臭氧處理在貯藏中期（6～12 d）可顯著提高果實的可溶性蛋白含量，與王秋芳等[20]得出的臭氧處理巨峰葡萄可抑制可溶性蛋白含量的降低，延緩葡萄在貯藏過程中的新陳代謝的結(jié)果一致。

4 結(jié)論

上述試驗結(jié)果表明：臭氧處理可降低甜瓜果實腐爛指數(shù)，減輕腐爛癥狀，抑制果實呼吸強度上升，并延緩果實硬度和抗壞血酸含量的下降速度，較好地維持了果實可溶性固形物、可滴定酸、可溶性糖和可溶性蛋白含量，一定程度保持了果實的貯藏品質(zhì)。