宋苗 方思齊 李瀟 劉文波 林春花 繆衛(wèi)國(guó)

摘 ?要：堿性亮氨酸拉鏈bZIP是真核生物轉(zhuǎn)錄因子家族之一，通過(guò)調(diào)控基因的表達(dá)來(lái)參與調(diào)控生長(zhǎng)發(fā)育及生物、非生物脅迫應(yīng)答等生理過(guò)程。已有報(bào)道表明bZIP轉(zhuǎn)錄因子Atf1與多種病原真菌的生長(zhǎng)發(fā)育及致病力相關(guān)。由于轉(zhuǎn)錄因子通常能夠在其他互作蛋白的參與下與順式作用元件特異性結(jié)合，從而調(diào)節(jié)靶基因表達(dá)，因此篩選其互作蛋白對(duì)深入了解轉(zhuǎn)錄因子的調(diào)控機(jī)制有重要意義。本研究克隆獲得來(lái)自橡膠樹(shù)炭疽病的暹羅炭疽菌（Colletotrichum siamense）的一個(gè)bZIP轉(zhuǎn)錄因子CsAtf1，并對(duì)CsAtf1互作蛋白進(jìn)行了篩選和鑒定。研究結(jié)果顯示，暹羅炭疽菌CsAtf1的DNA大小為1758 bp，cDNA為1611 bp，編碼536個(gè)氨基酸，包含2個(gè)內(nèi)含子，具有3個(gè)Aft1結(jié)構(gòu)域和1個(gè)BRLZ結(jié)構(gòu)域;利用酵母雙雜技術(shù)，以pGBKT7-CsAtf1為誘餌，從暹羅炭疽菌cDNA酵母文庫(kù)中篩選獲得12個(gè)候選互作蛋白，包括細(xì)胞壁蛋白PhiA、Rodlet蛋白、乙醇脫氫酶、線粒體缺氧反應(yīng)區(qū)蛋白、發(fā)育調(diào)控的MAPK相互作用蛋白、自噬相關(guān)蛋白、葡萄糖-甲醇-膽堿氧化還原酶、β-葡萄糖苷酶、c-4甲基固醇氧化酶、甲基轉(zhuǎn)移酶和2個(gè)假定蛋白;研究還進(jìn)一步利用免疫共沉淀技術(shù)證實(shí)了轉(zhuǎn)錄因子CsAtf1能夠與線粒體缺氧反應(yīng)區(qū)蛋白CsHIG發(fā)生體內(nèi)互作。

關(guān)鍵詞：橡膠樹(shù);暹羅炭疽菌;轉(zhuǎn)錄因子;互作蛋白

中圖分類號(hào)：S763.7 ? ? ?文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼：A

Identification and Screening of Proteins Interacting with CsAtf1 Transcription Factor in Colletotrichum siamense

SONG Miao， FANG Siqi， LI Xiao， LIU Wenbo， LIN Chunhua*， MIAO Weiguo*

College of Plant Protection， Hainan University / Key Laboratory of Green Forest Control and Prevention， Ministry of Education Haikou， Hainan 570228， China

Abstract： The basic leucine zipper （bZIP） is one of the eukaryotic transcription factor families. It participates in the regulation of biological， abiotic stress responses and developmental physiological processes by regulating the expression of genes. It has been reported that bZIP transcription factor Atf1 is related to the growth， development and pathogenicity of many pathogenic fungi. Transcription factors can specifically bind to cis-acting elements with the participation of other interacting proteins， thereby regulating the expression of target genes. Thus， screening the interacting proteins is of great significance to further understand the regulatory mechanism of bZIP transcription factor. In this study， a bZIP transcription factor CsAtf1 from Colletotrichum siamense （the causative species of rubber tree anthracnose in China） was cloned and the proteins interacting with CsAtf1 were screened and identified. The homologous sequence of Atf1 was searched from the transcriptome database of C. siamense HN08 by local BLAST， using genomic DNA and cDNA as the template for PCR amplification respectively. Sequence analysis revealed that CsAtf1 was 1758 bp， a cDNA of 1611 bp， encoding 535 amino acids， including two introns， three Aft1 domains and one BRLZ domain. Then， the CsAtf1 gene was cloned into the yeast expression vector pGBKT7， and identified by PCR and sequencing. The recombinant bait plasmid pGBKT7-CsAtf1 was transformed into yeast strain Y2H Gold competent cells. Besides， self-activation and toxicity detection of bait plasmid yeast showed that pGBKT7-CsAtf1 didn’t have self-activation and toxicity in yeast strains. These results demonstrated that the yeast bait protein expression vector was successfully constructed， then yeast two-hybrid （Y2H） system was adopted to screen interacting proteins of baiting vector pGBKT7-CsAtf1 in cDNA library of C. siamense. The results confirmed that 12 proteins may interact with CsAtf1， including cell wall protein PhiA， rodlet protein， alcohol dehydrogenase， mitochondrial hypoxia responsive domain containing protein， developmentally regulated MAPK interacting protein， autophagy-related protein， glucose-methanol-choline oxidoreductase， c-4 methylsterol oxidase， methyltransferase， secreted beta-glucosidase sun1 and two hypothetical proteins. Furthermore， in order to verify that CsAtf1 can interact with CsHIS in vivo， the expression vector pCB1532-CsAtf1-G containing the sulfonylurea resistant gene ILV1 and CsAtf1-GFP fusion protein was constructed by double restriction-enzyme digestion， meanwhile， the expression vector pXY203-CsHIG-S containing the hygromycin transferase gene HPH and CsHIG-S fusion protein was constructed using homologous recombination in yeast. Plasmids pCB1532-CsAtf1-G and pXY203-CsHIG-S were co-transformed into wild-type strain to obtain transformants. The results of co-IP indicated that the mitochondrial hypoxia response region protein CsHIG could interact with CsAtf1 in C. siamense. In summary， this research screened candidate proteins by the yeast two-hybrid system and confirmed an interaction between the transcription factor CsAtf1 and CsHIG， which would lay a foundation for further study of the function and regulation mechanism of CsAtf1.

Keywords： rubber tree; Colletotrichum siamense; transcription factor; interaction protein

DOI： 10.3969/j.issn.1000-2561.2022.01.008

轉(zhuǎn)錄因子（transcription factor， TF）通過(guò)與特定位點(diǎn)結(jié)合在基因的表達(dá)和調(diào)控中發(fā)揮重要作用。ATF類轉(zhuǎn)錄因子是ATF/CREB蛋白家族中的一員，在真菌中，該類轉(zhuǎn)錄因子能夠在多種應(yīng)激脅迫中發(fā)揮作用，還參與真菌毒素的產(chǎn)生以及菌體生長(zhǎng)發(fā)育、致病等過(guò)程。已經(jīng)證實(shí)VdAtf1是通過(guò)介導(dǎo)菌體對(duì)氮元素的代謝調(diào)節(jié)大麗輪枝菌的致病力[1]。稻瘟菌中的MoAtf1及鐮刀菌中的Foatf1均通過(guò)調(diào)節(jié)過(guò)氧化物酶的轉(zhuǎn)錄來(lái)抑制活性氧介導(dǎo)的植物防御，進(jìn)而影響致病性[2-3]。寄生曲霉中的AtfB基因不僅參與氧化應(yīng)激反應(yīng)，還影響黃曲霉毒素的合成[4]。在裂殖酵母中已證實(shí)ATF家族蛋白為絲裂原活化蛋白激酶（mitogen-activated protein kinases， MAPK）信號(hào)途徑的下游調(diào)控因子[5]。曲霉中的AtfA為HOG MAPK途徑的下游轉(zhuǎn)錄因子[6-7]，該通路參與調(diào)節(jié)分生孢子及菌絲的脅迫耐受，影響分生孢子的休眠和萌發(fā)[8-10]。

橡膠樹(shù)炭疽病是橡膠樹(shù)的重要葉部病害[11]。在開(kāi)春時(shí)節(jié)，該病為害嚴(yán)重會(huì)造成橡膠樹(shù)新抽嫩葉的反復(fù)落葉，導(dǎo)致割膠時(shí)間推遲，造成經(jīng)濟(jì)損失[12]。橡膠樹(shù)炭疽病的病原菌有多種，其中膠孢炭疽菌復(fù)合群中的暹羅炭疽菌（Colletotrichum siamense）為我國(guó)橡膠樹(shù)田間主要病原菌[13]。課題組前期克隆了膠孢炭疽菌HOG MAPK途徑的CgPbs2基因，證實(shí)了該途徑參與調(diào)節(jié)膠孢炭疽菌抵御滲透脅迫，影響菌株對(duì)吡咯類殺菌劑咯菌腈（fludioxioil）的抗性[14]，但該信號(hào)途徑參與調(diào)控應(yīng)答的機(jī)制尚不清楚。本研究克隆該信號(hào)途徑下游一個(gè)bZIP轉(zhuǎn)錄因子，即AtfA同源基因CsAtf1，并利用酵母雙雜交的方法在暹羅炭疽菌cDNA文庫(kù)中對(duì)暹羅炭疽菌轉(zhuǎn)錄因子CsAtf1互作蛋白進(jìn)行篩選，并對(duì)其中一個(gè)互作蛋白進(jìn)行免疫共沉淀驗(yàn)證體內(nèi)互作。該研究結(jié)果為進(jìn)一步了解HOG MAPK下游轉(zhuǎn)錄因子的互作蛋白及功能奠定基礎(chǔ)，有助于深入了解炭疽菌對(duì)各種脅迫應(yīng)答的調(diào)控機(jī)制，為進(jìn)一步挖掘病原菌防治新靶標(biāo)提供依據(jù)。

1 ?材料與方法

1.1 ?供試菌株與質(zhì)粒

暹羅炭疽菌（C. siamense）菌株HN08由本實(shí)驗(yàn)室前期分離、鑒定和保存[14];酵母感受態(tài)細(xì)胞Y2H Gold和大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞購(gòu)自上海唯地生物技術(shù)有限公司;載體PMD-18T購(gòu)自大連TaKaRa公司;質(zhì)粒pGBKT7、pGADT7、pXY203和pBC1532-G以及酵母菌株XK1-25，由本實(shí)驗(yàn)室保存。暹羅炭疽菌酵母文庫(kù)，由本實(shí)驗(yàn)室前期構(gòu)建保存[15]。

1.2 ?暹羅炭疽菌CsAtf1基因的克隆和分析

根據(jù)禾谷炭疽（C. graminicola）轉(zhuǎn)錄因子bZIP基因（No. XM008094996.1），在暹羅炭疽菌HN08轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)庫(kù)（由本實(shí)驗(yàn)室測(cè)序保存）中搜索獲得同源序列，設(shè)計(jì)引物pGBKT7-CsAtf1-F/pGBKT7- CsAtf1-R（引物序列見(jiàn)表1），從菌株HN08基因組DNA和cDNA中擴(kuò)增獲得目的條帶，參照方思齊等[16]的方法對(duì)基因序列進(jìn)行比對(duì)分析。

1.3 ?pGBKT7-CsAtf1誘餌載體的構(gòu)建及重組質(zhì)粒毒性、自激活檢測(cè)

用限制性內(nèi)切酶BamHⅠ和PstⅠ將擴(kuò)增獲得的CsAtf1基因的cDNA序列與質(zhì)粒pGBKT7進(jìn)行雙酶切，參照方思齊等[16]的方法將質(zhì)粒pGBKT7與CsAtf1基因連接構(gòu)建質(zhì)粒pGBKT7-CsAtf1。

參照方思齊等[16]方法驗(yàn)證誘餌載體pGBKT7- CsAtf1對(duì)酵母菌的毒性及在SD/-Trp-Leu-His-Ade缺陷培養(yǎng)基上是否有自激活情況。

1.4 ?酵母雙雜交文庫(kù)篩選與回交試驗(yàn)驗(yàn)證

參照方思齊等[16]方法，用含誘餌載體pGBKT7- CsAtf1的酵母菌液與菌株HN08 cDNA文庫(kù)（Y187）雜交共培養(yǎng)，篩選和驗(yàn)證陽(yáng)性克隆。

1.5 ?CsAtf1與線粒體缺氧反應(yīng)區(qū)蛋白CsHIG免疫共沉淀實(shí)驗(yàn)

為構(gòu)建含有氯嘧磺隆抗性基因ILV1和CsAtf1-GFP融合蛋白表達(dá)載體pCB1532-CsAtf1- G，設(shè)計(jì)引物對(duì)pCB1532-G-CsAtf1-F/pCB1532-G- CsAtf1-R，從誘餌載體pGBKT7-CsAtf1中擴(kuò)增含有PstⅠ和HindⅢ酶切位點(diǎn)的CsAtf1序列，用PstⅠ和HindⅢ對(duì)目的片段和載體pCB1532-G進(jìn)行雙酶切。酶切后連接、轉(zhuǎn)化步驟同1.3。

使用酵母體內(nèi)同源重組的方式構(gòu)建含有潮霉素轉(zhuǎn)移酶基因HPH和CsHIG-S融合蛋白表達(dá)載體pXY203-CsHIG-S，設(shè)計(jì)引物PXY203-CsHIG-F/ PXY203-CsHIG-R，以暹羅炭疽菌cDNA為模板進(jìn)行PCR。對(duì)pXY203質(zhì)粒（該載體含有潮霉素轉(zhuǎn)移酶基因HPH和S tag標(biāo)簽）進(jìn)行酶切后回收。將線性pXY203質(zhì)粒和PCR擴(kuò)增得到的CsHIG基因共同轉(zhuǎn)化至酵母XK1-25感受態(tài)中，涂布于SD/-Trp營(yíng)養(yǎng)缺失培養(yǎng)基平板，30℃靜置培養(yǎng)3 d，選取正常生長(zhǎng)的酵母單克隆進(jìn)行PCR驗(yàn)證，檢測(cè)正確的酵母單克隆質(zhì)粒轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α，待用。

參照LIN等[14]的方法制備暹羅炭疽菌原生質(zhì)體。使用PEG介導(dǎo)原生質(zhì)體轉(zhuǎn)化的方法進(jìn)行原生質(zhì)體轉(zhuǎn)化，利用氯嘧磺隆（100 μg/mL）抗性篩選含有pCB1532-CsAtf1-G的轉(zhuǎn)化子，將篩選到的轉(zhuǎn)化子接種于含有潮霉素（600 μg/mL）的PDS平板中篩選含有pXY203-CsHIG-S質(zhì)粒的轉(zhuǎn)化子，3～5 d后正常生長(zhǎng)的為含有2種抗性的轉(zhuǎn)化子。

將含有2種表達(dá)載體的轉(zhuǎn)化子菌株接種于CM液體培養(yǎng)基中28℃ 180 r/min培養(yǎng)2～3 d后收集菌體，用絲狀真菌蛋白提取試劑盒（BestBio）進(jìn)行總蛋白提取。將提取的真菌總蛋白與15 μL anti-GFP瓊脂糖珠（ChromoTek）在4℃ 50 r/min條件下孵育4 h后，4℃ 1000 r/min離心1 min棄上清收集珠子，用1×PBS溶液洗滌3～4次，加入15 μL 1×SDS Loading Buffer重懸介質(zhì)，煮沸，進(jìn)行western blot驗(yàn)證。

2 ?結(jié)果與分析

2.1 ?暹羅炭疽菌CsAtf1基因的克隆及序列分析

擴(kuò)增獲得的含完整開(kāi)放閱讀框的CsAtf1基因DNA序列大小為1758 bp，cDNA序列大小為1611 bp（圖1），該基因編碼536個(gè)氨基酸，含有2個(gè)內(nèi)含子，包含3個(gè)Aft1結(jié)構(gòu)域和1個(gè)BRLZ（堿性亮氨酸拉鏈）結(jié)構(gòu)域（圖2），說(shuō)明CsAtf1為bZIP轉(zhuǎn)錄因子家族中的ATF類轉(zhuǎn)錄因子。將序列上傳至GenBank數(shù)據(jù)庫(kù)，登陸號(hào)為：MT084770。

2.2 ?誘餌載體pGBKT7-CsAtf1構(gòu)建及重組質(zhì)粒毒性、自激活檢測(cè)

將上述擴(kuò)增獲得的CsATF1 cDNA序列和載體pGBKT7連接，構(gòu)建誘餌載體pGBKT7-CsAtf1。經(jīng)引物對(duì)pGBKT7-F/pGBKT7-R進(jìn)行菌落PCR和測(cè)序驗(yàn)證獲得重組誘餌載體pGBKT7-CsAtf1。載體pGBKT7-CsAtf1與pGADT7共轉(zhuǎn)化酵母Y2HGlod感受態(tài)，獲得的轉(zhuǎn)化子擴(kuò)增培養(yǎng)后于SD/-Trp-Leu平板上可正常生長(zhǎng)，說(shuō)明pGBKT7-CsAtf1能夠在酵母中成功表達(dá)且對(duì)宿主不產(chǎn)生毒性。將菌液涂布于SD/-Trp-Leu-His-Ade缺陷培養(yǎng)基平板上顯示沒(méi)有自激活現(xiàn)象。

2.3 ?酵母文庫(kù)的篩選和陽(yáng)性克隆測(cè)序分析

用誘餌載體pGBKT7-CsAtf1和炭疽菌HN08 cDNA酵母文庫(kù)雜交篩選，獲得陽(yáng)性克隆。提取陽(yáng)性克隆的質(zhì)粒，轉(zhuǎn)入大腸桿菌DH5α中進(jìn)行擴(kuò)增后測(cè)序。結(jié)果顯示，從文庫(kù)中共篩選出49個(gè)陽(yáng)性克隆，排除重復(fù)和測(cè)序失敗的克隆子，實(shí)際得到的陽(yáng)性克隆有12個(gè)（表2）。它們分別是細(xì)胞壁蛋白PhiA、Rodlet蛋白、乙醇脫氫酶、線粒體缺氧反應(yīng)區(qū)蛋白、發(fā)育調(diào)控的MAPK相互作用蛋白、自噬相關(guān)蛋白、β-葡萄糖苷酶、c-4甲基固醇氧化酶、甲基轉(zhuǎn)移酶和假定蛋白等。

篩選出的12個(gè)陽(yáng)性克隆質(zhì)粒與誘餌載體pGBKT7-CsAtf1共轉(zhuǎn)入處于同一酵母菌Y2HGlod時(shí)均能正常生長(zhǎng)（圖3），該結(jié)果進(jìn)一步驗(yàn)證了陽(yáng)性克隆的可靠性。

2.4 ?CsATF1與線粒體缺氧反應(yīng)區(qū)蛋白CsHIG體內(nèi)互作鑒定

為了鑒定線粒體缺氧反應(yīng)區(qū)蛋白CsHIG與CsAtf1是否互作，分別構(gòu)建了pCB1532-CsAtf1-G和pXY203-CsHIG-S融合蛋白表達(dá)載體，重組質(zhì)粒經(jīng)PCR驗(yàn)證、酶切鑒定和測(cè)序鑒定。將質(zhì)粒pCB1532-CsAtf1-G和pXY203-CsHIG-S共同轉(zhuǎn)化于野生型菌株HN08中，經(jīng)過(guò)含氯嘧磺隆和潮霉素的培養(yǎng)基篩選，獲得轉(zhuǎn)化子5個(gè)，進(jìn)行驗(yàn)證后挑取其中1個(gè)進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

提取轉(zhuǎn)化子總蛋白，用anti-GFP親和凝膠珠免疫沉淀GFP-CsAtf1蛋白復(fù)合體，以GFP- pCB1532空載體蛋白作為陽(yáng)性對(duì)照。利用anti- GFP及anti-Stag抗體檢測(cè)免疫沉淀復(fù)合物中的蛋白（圖4），從圖中可以看出，用anti-GFP珠子抓取的蛋白中，用GFP抗體孵育可顯示出含有一條大小約為90 kDa的目的條帶CsAtf1-GFP，用Stag抗體孵育可顯示出一條大小約為30 kDa的條帶CsHIG-S，而在對(duì)照GFP中用Stag抗體孵育不出條帶。結(jié)果說(shuō)明線粒體缺氧反應(yīng)區(qū)蛋白CsHIG可以與CsAtf1在炭疽菌菌體內(nèi)發(fā)生互作。

3 ?討論

轉(zhuǎn)錄因子通常能夠在其他互作蛋白的參與下與靶基因的順式作用原件特異性結(jié)合，從而調(diào)節(jié)靶基因在特定的時(shí)間和空間表達(dá)，調(diào)控生物體的生理代謝和生長(zhǎng)發(fā)育[17]。因此，分析轉(zhuǎn)錄因子的互作蛋白，對(duì)深入研究轉(zhuǎn)錄因子的調(diào)控機(jī)制具有重要意義。已知ATF/CREB家族蛋白是一類bZIP轉(zhuǎn)錄因子，參與調(diào)控真菌脅迫應(yīng)答、毒素的產(chǎn)生以及致病性等[2-3， 9]。但除了已經(jīng)證實(shí)曲霉A. nidulans中的SakA蛋白能與轉(zhuǎn)錄因子AftA互作外[9]，對(duì)轉(zhuǎn)錄因子ATF的互作蛋白還知之甚少。實(shí)驗(yàn)室前期已對(duì)轉(zhuǎn)錄因子CsAtf1的功能進(jìn)行研究，結(jié)果顯示CsAtf1基因影響菌體致病力，并能對(duì)吡咯類藥劑的敏感性進(jìn)行調(diào)控[18]。本研究克隆了炭疽菌C. siemense中的Atf1同源基因CsAtf1，通過(guò)生物信息學(xué)分析顯示，CsAtf1基因含有3個(gè)Aft1結(jié)構(gòu)域和1個(gè)堿性亮氨酸拉鏈結(jié)構(gòu)域，說(shuō)明該基因是bZIP轉(zhuǎn)錄因子家族中的Atf1基因。進(jìn)一步通過(guò)酵母雙雜法從炭疽菌cDNA酵母文庫(kù)中篩選獲得CsAtf1的12個(gè)候選互作蛋白，并使用Co-IP技術(shù)證實(shí)了其中一個(gè)線粒體缺氧反應(yīng)區(qū)蛋白CsHIG1和轉(zhuǎn)錄因子CsAtf1的體內(nèi)互作，研究結(jié)果將為深入研究炭疽菌轉(zhuǎn)錄因子CsAtf1的調(diào)控機(jī)制奠定基礎(chǔ)。

已知ATF類轉(zhuǎn)錄因子與MAPK信號(hào)途徑相關(guān)，為多個(gè)MAPK信號(hào)途徑下游轉(zhuǎn)錄因子，比如有Sty1 MAPK、Pmk1 MAPK等[19]。在本研究篩選獲得的候選互作蛋白中，Yeast-63為發(fā)育調(diào)控的MAPK相互作用蛋白。該結(jié)果進(jìn)一步驗(yàn)證了轉(zhuǎn)錄因子CsAtf1與MAPK途徑存在聯(lián)系，Yeast-63與轉(zhuǎn)錄因子CsAtf1的互作生物功能值得進(jìn)一步深入研究。

此外，篩選獲得的Yeast-68為線粒體缺氧反應(yīng)區(qū)蛋白（CsHIG1），該蛋白含有一個(gè)HIG_1_N蛋白結(jié)構(gòu)域，而HIG1蛋白家族成員的特征就在于N端的HIG1結(jié)構(gòu)域，它是由2個(gè)疏水螺旋組成的完整膜蛋白，可能會(huì)在脂質(zhì)雙分子層形成發(fā)夾狀環(huán)[20-21]。HIG1家族在整個(gè)進(jìn)化過(guò)程中都是保守的，成員包括真菌、線蟲(chóng)和哺乳動(dòng)物等多種真核生物[21-23]。釀酒酵母中的HIG1家族蛋白R(shí)cf1被發(fā)現(xiàn)在線粒體氧化磷酸化過(guò)程中與細(xì)胞色素c氧化酶互作[24]，其后的研究表明Rcf1的功能是通過(guò)與線粒體呼吸鏈復(fù)合體IV的動(dòng)態(tài)瞬時(shí)關(guān)聯(lián)來(lái)改變其穩(wěn)定性和催化特性[25]。本研究通過(guò)酵母雙雜和Co-IP證實(shí)了CsAtf1和CsHIG1間存在互作關(guān)系，這為進(jìn)一步分析它們互作的生物學(xué)功能奠定基礎(chǔ)。

候選互作蛋白Yeast-41為細(xì)胞壁蛋白PhiA，研究顯示構(gòu)巢曲霉中的PhiA主要與菌絲及分生孢子的生長(zhǎng)有關(guān)，該基因的缺失突變體表現(xiàn)為菌絲和分生孢子生長(zhǎng)下降[26]。而煙曲霉中的PhiA同源蛋白是細(xì)胞壁上的主要抗原，推測(cè)其可能作為激發(fā)子，引起植物對(duì)病原物的抗性反應(yīng)[27]。對(duì)大麗輪枝菌Vd991的毒素進(jìn)行分離純化后發(fā)現(xiàn)細(xì)胞壁蛋白PhiA可能與致病相關(guān)[28]，而ATF類轉(zhuǎn)錄因子也通常與病原菌的致病性相關(guān)[2-3]。在暹羅炭疽菌中細(xì)胞壁蛋白phiA和CsAtf1產(chǎn)生互作，它們是否共同參與調(diào)節(jié)病原菌致病性值得深入研究。

除此之外，本研究還篩選到Rodlet蛋白、乙醇脫氫酶、甲基轉(zhuǎn)移酶、β-葡萄糖苷酶、c-4甲基固醇氧化酶、自噬相關(guān)蛋白等，今后進(jìn)一步深入研究它們互作的生物學(xué)功能，為深入了解炭疽菌應(yīng)答脅迫反應(yīng)以及致病機(jī)制具有重要意義。

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