汪瑞敏,吳 簫,劉丹丹,周 玲,李博巖*
(1.貴州醫(yī)科大學(xué) 公共衛(wèi)生學(xué)院,貴州 貴陽(yáng) 550025;2.貴州醫(yī)科大學(xué) 環(huán)境污染與疾病監(jiān)控省部共建教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,貴州 貴陽(yáng) 550025)
刺梨(Rosa roxburghiiTratt.)又名茨梨、木梨子[1],多種于貴州、四川、云南等地區(qū)[2-3]。刺梨的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值極高[4],早在《本草綱目拾遺》中就有刺梨促進(jìn)消化的記錄[5],現(xiàn)代研究發(fā)現(xiàn)刺梨含有超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)、多酚、三萜、黃酮、氨基酸、多糖、有機(jī)酸、礦物質(zhì)等營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)[6-8];這些營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)在參與人體抗氧化反應(yīng)、抗輻射、消炎和預(yù)防腫瘤等過(guò)程發(fā)揮重要作用[9]。作為刺梨種植大省,貴州的刺梨無(wú)論是品種還是產(chǎn)量均居全國(guó)首位。刺梨在貴州省的種植面積達(dá)15.3萬(wàn)hm2,2019年貴州省刺梨鮮果產(chǎn)量達(dá)6.6萬(wàn)t,貴州省內(nèi)的刺梨加工企業(yè)每年用于榨汁加工的刺梨鮮果達(dá)4.4萬(wàn)t[10]。刺梨汁在加工過(guò)程會(huì)產(chǎn)生大量的果渣,這些果渣中含有較為豐富的多酚、黃酮、維生素C(vitamin C)、SOD和粗纖維[11],然而這些果渣通常在加工后被直接丟棄或者作為鍋爐燃料[12],不僅污染環(huán)境,還造成資源浪費(fèi),因此刺梨果渣深加工的相關(guān)研究近年來(lái)相繼出現(xiàn),但是目前關(guān)于刺梨果渣的研究主要集中在刺梨果渣中膳食纖維利用[13]或果渣發(fā)酵飼料[12]等方面,而對(duì)于刺梨渣中多酚的再回收則鮮有報(bào)道。
植物中的多酚根據(jù)溶解性可分為可溶性多酚(游離酚)和不可溶多酚(結(jié)合酚);大約35%~65%的酚類(lèi)化合物以結(jié)合酚形式存在于植物基質(zhì)中??扇苄远喾涌衫盟芤夯蛩c有機(jī)溶劑混合后進(jìn)行提取。而結(jié)合酚主要以酯鍵和醚鍵等形式與蛋白質(zhì)等生物大分子物質(zhì)結(jié)合,所以無(wú)法利用溶劑直接提取,一般經(jīng)酸、堿或酶水解后再提取。王婧等[14]優(yōu)化了酸水解提取紫甘薯結(jié)合酚的條件,并測(cè)其抗氧化能力,結(jié)果表明,水解時(shí)間28.15 h、水解溫度60.5 ℃、液料比32∶1,結(jié)合酚提取量最高,其抗氧化能力顯著提高。王振宇等[15]優(yōu)化酸和堿水解提取鮮蓮中結(jié)合酚的條件,其最佳提取工藝條件NaOH溶液濃度2.8 mol/L、料液比1∶25(g∶mL)、水解時(shí)間3.7 h。海玲等[16]利用纖維素酶提取赤霞珠葡萄皮渣中酚類(lèi)物質(zhì),最終多酚提取率達(dá)到11.238%。
本實(shí)驗(yàn)以刺梨渣為原料,通過(guò)酸水解、堿水解、酶水解3種方式提取刺梨渣中的結(jié)合酚;并對(duì)刺梨渣中游離酚和結(jié)合酚的組成、含量、抗氧化活性進(jìn)行了系統(tǒng)的研究。旨在為刺梨渣的綜合利用提供理論依據(jù)和數(shù)據(jù)支撐。
刺梨:市售;七水硫酸亞鐵、六水三氯化鐵、無(wú)水氯化鋁(均為分析純):上海國(guó)藥化學(xué)試劑集團(tuán)公司;2,2-聯(lián)苯基-1-苦基肼基(2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl,DPPH)、三吡啶基三嗪(tri-2-pyridyl-s-triazine,TPTZ)、2,2'-聯(lián)氮-雙(3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸)二銨鹽(2,2'-azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid),ABTS)、福林酚、新銅試劑(2,9-二甲基-1,10-菲羅啉)、水溶性維生素E(Trolox)、沒(méi)食子酸、表沒(méi)食子兒茶素、兒茶素、綠原酸、表兒茶素、咖啡酸、對(duì)香豆酸、蘆丁、異槲皮素、斛皮苷、楊梅素、根皮苷、木犀草素、槲皮素、山奈酚(純度均≥98%):北京索萊寶生物科技有限公司。
Scientz-50F真空冷凍干燥機(jī):寧波新芝生物科技股份有限公司;YB-400粉碎機(jī):永康市紅太陽(yáng)機(jī)電有限公司;HS-50恒溫恒濕箱:南京泰特斯試驗(yàn)設(shè)備有限公司;GRQ-1200超聲波清洗機(jī):昆山市超聲儀器有限公司;H1650R冷凍離心機(jī):濟(jì)南歐萊博科學(xué)儀器有限公司;RE-52A旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀:上海亞榮生化儀器廠(chǎng);Agilent1260高效液相色譜(high performance liquid chromatography,HPLC)儀:安捷倫科技有限公司;Multiskan FC酶標(biāo)儀:賽默飛世爾上海儀器有限公司。
1.3.1 原料預(yù)處理
刺梨渣粉末:刺梨洗凈去籽,切成小塊,經(jīng)壓榨去汁,剩余的刺梨渣冷凍干燥研成粉末,過(guò)60目篩置于干燥器中備用。
1.3.2 游離酚的提取
參考朱昱琳等[17]的方法,稍作修改;取刺梨渣粉末1 g加入20 mL 80%甲醇溶液(含1%甲酸),超聲提取30 min(室溫,320 W),離心(4 500 r/min,10 min,4 ℃)去上清,取殘留物加入40 mL甲醇溶液,重復(fù)上述步驟,離心后兩次上清液合并,即獲得游離酚(F)。殘?jiān)?5 ℃的烘箱中干燥至質(zhì)量恒定,研成粉末,備用。
1.3.3 結(jié)合酚的提取
(1)酸水解提取結(jié)合酚
參考WANG L等[18]的方法,稍作修改。取1.3.2殘?jiān)勰? g加40 mL 2 mol/L HCl超聲(70 ℃,60 min,300 W)后加10 mol/L NaOH 調(diào)節(jié)pH至2,然后離心(4 500 r/min,5 min),上清液用乙醚和乙酸乙酯等體積混合萃取兩次,45 ℃旋轉(zhuǎn)蒸干后再用50%乙醇復(fù)溶得到A1;離心后殘?jiān)^續(xù)加酸二次水解,重復(fù)上述步驟,得到A2;A1、A2均存放于-20 ℃,備用。
(2)堿水解提取結(jié)合酚
參考LI W 等[19]的方法,稍作修改。取1.3.2殘?jiān)勰? g加40 mL 2 mol/L NaOH,超聲(70 ℃,60 min,300 W)后加6 mol/L HCl調(diào)節(jié)pH=2,然后離心(4 500 r/min,5 min),上清液用乙醚和乙酸乙酯等體積混合萃取兩次,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀45 ℃避光蒸干后再用50%乙醇溶解得到B1;離心后殘?jiān)訅A水解,重復(fù)上述步驟,得到B2;B1、B2均存放于-20 ℃,備用。
(3)酶水解提取結(jié)合酚
參考楊希娟等[20-21]的方法,稍作修改。取1.3.2殘?jiān)勰? g加入0.02 g半纖維素酶、0.01 g纖維素酶、0.01 g果膠酶和15 mL水,于85 ℃,320 W 超聲30 min,4 500 r/min離心5 min,上清液用等體積的乙醚和乙酸乙酯混合液(1∶1,V/V)萃取兩次,萃取液置于旋蒸瓶中,45 ℃蒸干后再用體積分?jǐn)?shù)50%乙醇復(fù)溶得到C1;重復(fù)上述步驟,得到C2;C1、C2均存放于-20 ℃,備用。
(4)刺梨渣提取液中總多酚和總黃酮含量測(cè)定
采用Folin-Ciocalteu(福林酚比色法)測(cè)定總多酚含量[22],以沒(méi)食子酸為標(biāo)準(zhǔn)品,制作標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn),所得回歸方程為:Y=0.114X+0.006(R2=0.999 4)。所得結(jié)果用每克刺梨渣樣品干質(zhì)量中沒(méi)食子酸當(dāng)量(gallic acid equivalents,GAE)表示(mg GAE/g),以干質(zhì)量計(jì)。
總黃酮含量的測(cè)定參照WANG L等[23]的方法并略作修改,具體步驟為:吸取25 μL適當(dāng)稀釋倍數(shù)的提取液于試管中,加入110 μL 0.066 mol/L亞硝酸鈉,搖勻,反應(yīng)5 min后加入15 μL 0.75 mol/L的氯化鋁,搖勻,靜置6 min,再加入100 μL 0.5 mol/L 氫氧化鈉反應(yīng)10 min,以水代替樣品為空白調(diào)零,在波長(zhǎng)510 nm處測(cè)定吸光度值。以蘆丁為標(biāo)準(zhǔn)品,配制不同梯度的溶液,制作標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn),建立回歸方程:Y=0.000 3X+0.001(R2=0.994 4),所得結(jié)果用每克刺梨渣樣品(以干質(zhì)量計(jì))中蘆丁當(dāng)量(rutin equivalents,RE)表示(mg RE/g)。
1.3.4 刺梨渣提取液多酚高效液相色譜分析
刺梨渣提取液中多酚含量的測(cè)定采用HPLC法。色譜條件如下:色譜柱:Lichrospher C-18;流速:0.5 mL/min;進(jìn)樣量:10 μL;柱溫:30 ℃;檢測(cè)器:二極管陣列檢測(cè)器(diode array detector,DAD);檢測(cè)波長(zhǎng):全波長(zhǎng)掃描,使用254nm、280 nm、320 nm、360 nm四個(gè)參比波長(zhǎng),以280 nm為主要觀測(cè)波長(zhǎng);流動(dòng)相0.2%磷酸(A)、乙腈(B);梯度洗脫程序:0~5 min,98% B;5~30 min,95% B;30~40 min,79%B;40~41 min,79%B;41~65 min,54%B;65~70 min,30%B;70~75 min,0%B;75~80 min,98%B;80~85 min,98%B。根據(jù)保留時(shí)間定性,峰面積定量。
1.3.5 刺梨渣多酚提取液抗氧化活性測(cè)定
(1)DPPH自由基清除率的測(cè)定
參照WANGL等[21]的方法,取50μL樣品稀釋液或Trolox標(biāo)準(zhǔn)液與100 μmol/L 400 μL DPPH-甲醇溶液在室溫下避光反應(yīng)30min,在波長(zhǎng)517nm下測(cè)量吸光度值。以Trolox作為陽(yáng)性對(duì)照并繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn):Y=1.146 1X-2.175 7(R2=0.998 4),DPPH自由基清除率按式(1)計(jì)算。
其中:Ai為樣品溶液加DPPH試劑混合液的吸光度值,Aj為樣品溶液加甲醇的吸光度值,Ac為DPPH溶液加樣品溶劑的吸光度值。
(2)ABTS+自由基清除率的測(cè)定
參考ZENGIN G等[24]的方法略作修改。取50 μL樣品稀釋液或Trolox標(biāo)準(zhǔn)液分別與400 μL ABTS+稀釋液充分混合,室溫下避光反應(yīng)30 min,測(cè)定波長(zhǎng)734 nm處的吸光度值。Trolox作為陽(yáng)性對(duì)照并繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn):Y=2.089 9X+0.536 2(R2=0.998 7),ABTS+自由基清除率按式(2)計(jì)算;
其中:Ac為ABTS+和樣品溶劑混合液的吸光度值,Ai為ABTS+和樣品混合液的吸光度值,Aj為80%甲醇和樣品溶液的吸光度值。
(3)鐵離子還原能力的測(cè)定
參考LIU L等[25]的鐵離子還原法(ferric ion reducing antioxidant power,F(xiàn)RAP),30 μL樣品稀釋液或Trolox標(biāo)準(zhǔn)液與900 μL FRAP試劑[25]混合,在室溫下避光孵育30 min,在波長(zhǎng)593 nm處測(cè)定吸光度值。以Trolox作為陽(yáng)性對(duì)照并繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn):Y=0.010 1X+0.002(R2=0.999 8)。通過(guò)吸光度值計(jì)算還原力。
(4)銅離子還原能力的測(cè)定
參考UYSAL S等[26]的銅離子還原能力(cupric ion reducing antioxidant capacity,CUPRAC)方法略作修改,取10 μL樣品稀釋液或不同濃度的Trolox標(biāo)準(zhǔn)品,加入100 μL硫酸銅溶液(5 mmol/L)、100 μL新銅試劑(3.75 mmol/L)和100 μL乙酸銨(1 mol/L)緩沖液,再加入100 μL水,搖勻,避光反應(yīng)30min,于波長(zhǎng)450nm處測(cè)定吸光度值。Trolox作為陽(yáng)性對(duì)照并繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn):Y=0.000 9X+0.006 3(R2=0.995 5)。通過(guò)吸光度值計(jì)算還原力。
DPPH·清除率、ABTS+·清除率、FRAP、CUPRAC結(jié)果用每克樣品(以干質(zhì)量計(jì))具有相同抗氧化能力所需μmol Trolox的當(dāng)量表示(Trolox equivalents,TE)/g。
1.3.6 數(shù)據(jù)處理與分析
所有實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,數(shù)據(jù)以“平均值±標(biāo)準(zhǔn)差”(xˉ±s)表示,采用SPSS 18.0進(jìn)行方差分析和Pearson相關(guān)性分析,采用Origin8.0軟件作圖。
不同水解方法所得刺梨渣提取液中多酚、黃酮含量結(jié)果見(jiàn)圖1。由圖1可知,刺梨渣中游離酚(84.44 mg GAE/g)、黃酮(136.67 mg RE/g)含量最高,游離酚、游離黃酮與不同水解方式得到的提取液中多酚、黃酮的含量存在顯著性差異(P<0.05)。采用堿水解得到的B1提取液中多酚(2.04 mg GAE/g)、黃酮(5.89 mg RE/g)含量最高;B1提取液中的多酚含量顯著高于其他水解方式(P<0.05),但黃酮含量則與其他水解方式無(wú)明顯差異;酶水解得到的C1和C2提取液中多酚分別為0.84 mg GAE/g、0.49 mg GAE/g和黃酮分別為2.27 mg RE/g、0.82 mg RE/g;酸水解得到A2提取液中的總多酚(0.30 mg GAE/g)、黃酮(0.45 mg RE/g)含量最低。LI W等[19]研究發(fā)現(xiàn)堿水解相較于酸水解能釋放更多蘋(píng)果渣中的結(jié)合酚,與本研究結(jié)果一致,說(shuō)明堿水解在提取水果殘?jiān)械慕Y(jié)合酚方面具有更好的效果。以上研究結(jié)果表明刺梨渣中仍存在較高含量多酚,應(yīng)加以利用,避免資源浪費(fèi)。
圖1 不同水解方式刺梨渣提取液中的多酚、黃酮含量Fig.1 Contents of polyphenols and flavonoids in extraction solutions of Rosa roxburghii Tratt pomace by different hydrolysis methods
對(duì)刺梨渣水解產(chǎn)物多酚構(gòu)成進(jìn)行了HPLC分析,通過(guò)對(duì)比15種標(biāo)準(zhǔn)品的保留時(shí)間和峰面積,確定刺梨渣水解產(chǎn)物中酚類(lèi)化合物組成和含量。刺梨渣提取液中游離酚和結(jié)合酚的色譜圖和含量如圖2、表1所示。
圖2 刺梨渣不同提取液中多酚類(lèi)化合物色譜圖Fig.2 Chromatograms of polyphenols in different extraction solutions of Rosa roxburghii Tratt pomace
表1 不同水解方式刺梨渣提取液的多酚類(lèi)化合物含量Table 1 Contents of polyphenols in extraction solutions of Rosa roxburghii Tratt pomace by different hydrolysis methods
由圖2和表1可知,F(xiàn)中酚類(lèi)物質(zhì)種類(lèi)最豐富(15種),其次為C1(11種)、B1(10種),最少的為B2(5種);三種水解方式中共有的結(jié)合態(tài)酚類(lèi)物質(zhì)有沒(méi)食子酸、兒茶素、綠原酸、蘆丁等;酸水解中獨(dú)有的結(jié)合態(tài)酚類(lèi)物質(zhì)為表沒(méi)食子兒茶素(1.17 μg/g),堿水解中獨(dú)有的結(jié)合態(tài)酚類(lèi)物質(zhì)為槲皮素(11.31 μg/g),酶水解中為楊梅素(8.10 μg/g)、根皮苷(305.48 μg/g)。此外,由于供試液相標(biāo)準(zhǔn)品有限,導(dǎo)致未能對(duì)一些含量較高的物質(zhì)進(jìn)行定性,如A1、A2中出現(xiàn)的未知峰(u)。
在游離酚提取液F中,含量較高的是綠原酸(14.83mg/g),兒茶素(2.28 mg/g),對(duì)香豆酸(1.81 mg/g),蘆?。?.58 mg/g),而含量最低的是表沒(méi)食子兒茶素(6.01 μg/g)。酸水解提取液A中共檢測(cè)到10種酚類(lèi)物質(zhì),含量最高的是沒(méi)食子酸(311.64 μg/g);堿水解提取液B中含量較高的酚類(lèi)物質(zhì)分別是沒(méi)食子酸(576.87 μg/g)、蘆?。?35.46 μg/g)、綠原酸(325.98 μg/g);酶水解提取液C中含量較高的酚類(lèi)物質(zhì)分別是綠原酸(3.02 mg/g)、沒(méi)食子酸(542.25 μg/g)、根皮苷(305.48μg/g)。不同水解方式得到的結(jié)合酚中除了酸水解提取液A1中含有表沒(méi)食子兒茶素,其他提取液中均未見(jiàn)檢測(cè)到。
單體酚的含量整體變化規(guī)律為:游離酚>結(jié)合酚,但是沒(méi)食子酸和根皮苷水解后的含量較游離酚均有不同程度的增加,說(shuō)明在刺梨渣中這兩種酚類(lèi)物質(zhì)多以結(jié)合態(tài)形式存在,經(jīng)水解處理才能釋放。
不同水解方式所得刺梨渣提取液的抗氧化能力如圖3所示,結(jié)果表明,刺梨渣提取液中游離酚、結(jié)合酚的DPPH·清除率、FRAP變化趨勢(shì)和多酚含量變化趨勢(shì)相似,其中游離酚的DPPH·清除率、FRAP抗氧化活性最強(qiáng),分別為854.87 μmol TE/g和336.24 μmol TE/g,與其他提取液的抗氧化活性存在顯著性差異(P<0.05)。三種水解方式中,堿水解的提取液B1的DPPH·清除率、FRAP明顯高于另外兩種水解方式(P<0.05),分別為15.34 μmol TE/g和5.57 μmol TE/g;抗氧化能力最低的則為A2,其DPPH·清除率、FRAP分別為2.49 μmol TE/g和0.74 μmol TE/g。ABTS+·清除率和銅離子還原能力的變化趨勢(shì)則與黃酮含量變化趨勢(shì)相似,游離酚抗氧化活性最強(qiáng),分別為995.35 μmol TE/g和1 212.08 μmol TE/g;另外三種水解方式刺梨渣提取液的ABTS+·清除率和銅離子還原能力無(wú)顯著性差異(P>0.05)。
圖3 不同水解方式刺梨渣提取液的抗氧化活性Fig.3 Antioxidant activity of extraction solutions of Rosa roxburghii Tratt pomace by different hydrolysis methods
刺梨渣提取液中總酚、總黃酮、單體酚含量與抗氧化能力的相關(guān)性分析結(jié)果見(jiàn)表2。結(jié)果表明多酚、黃酮含量與抗氧化能力之間存在極顯著正相關(guān)(P<0.01)。與許澤文等[27-29]報(bào)道發(fā)現(xiàn)的多酚含量與抗氧化能力呈正相關(guān)的結(jié)果一致。單體酚中除了沒(méi)食子酸和根皮苷與總酚、總黃酮含量和抗氧化活性之間無(wú)相關(guān)性之外(P>0.05),其余單體酚均與抗氧化活性存在極顯著相關(guān)性(P<0.01)。沒(méi)食子酸和根皮苷主要以結(jié)合酚形態(tài)存在,說(shuō)明酚類(lèi)物質(zhì)的抗氧化活性可能與其存在的形態(tài)有關(guān);且游離酚含量越高,抗氧化活性越強(qiáng)。這與白姍姍等[31-32]研究發(fā)現(xiàn),樣品原料的抗氧化能力與它的多酚、黃酮的含量、組成等相關(guān)的結(jié)果一致。
表2 刺梨渣提取液中總酚、總黃酮、單體酚含量與抗氧化能力的相關(guān)性Table 2 Correlation between contents of total phenols,total flavonoids,mono phenols in extraction solutions of Rosa roxburghii Tratt pomace and antioxidant ability
水解方式對(duì)刺梨渣酚類(lèi)含量和組成、抗氧化活性均具有一定的影響,其中堿水解相較于酸水解和酶水解,具有更高的提取效率,堿水解所得酚類(lèi)含量、抗氧化活性均優(yōu)于另外兩種方式。刺梨渣中游離酚、黃酮含量最高,主要成分有綠原酸、兒茶素、對(duì)香豆酸等。堿水解得到的提取液中B1中結(jié)合多酚、結(jié)合黃酮含量最高;沒(méi)食子酸和根皮苷這兩種種酚類(lèi)物質(zhì)則主要以結(jié)合態(tài)的形式存在于刺梨渣中。由皮爾遜相關(guān)系數(shù)分析可知多酚、黃酮含量與抗氧化能力之間存在顯著相關(guān)性,且相關(guān)性與酚類(lèi)物質(zhì)的形態(tài)有關(guān),以結(jié)合態(tài)存在的酚類(lèi)與抗氧化能力相關(guān)性弱。綜上,刺梨渣富含酚類(lèi)物質(zhì),具有較強(qiáng)的抗氧化活性,此研究為進(jìn)一步研究刺梨渣中的酚類(lèi)物質(zhì)提供了一定的理論基礎(chǔ),對(duì)刺梨渣開(kāi)發(fā)利用有一定的參考價(jià)值。