吳秋惠，丁碩秋，任天，徐睿婷，周超，趙寶洲，鄧林紅△，劉楊△

(1.常州大學(xué)材料科學(xué)與工程學(xué)院，常州 213164;2.常州大學(xué)生物醫(yī)學(xué)工程與健康科學(xué)研究院，常州 213164)

1 引 言

海藻酸鹽[1]由于加工簡單、生物相容性好、易降解被廣泛應(yīng)用于生物、醫(yī)藥、化學(xué)、食品等領(lǐng)域[2-7]。海藻酸鈉(sodium alginate，SA)是海藻酸鹽的主要來源，它是一種高分子多糖，是由β—D—甘露糖醛酸(M)和α—L—古羅糖醛酸(G)通過1—4糖苷鍵連接而成的一種線性聚合物[8]。海藻酸鈉是具有—COO—的陰離子聚合物，容易在鈣離子和其他二價陽離子的存在下形成凝膠[9]。但是，在制備海藻酸鈣支架的過程中，單純的海藻酸鈣支架材料存在力學(xué)性能不佳、易脆等問題[10-12]。

近年來，具有良好力學(xué)性能的絲素蛋白(SF)分子被用來改善海藻酸鈣材料易脆的缺點[13-14]。絲素蛋白(SF)是蠶繭的主要成分,是一種天然生物材料，具有優(yōu)良的生物相容性，韌性和可降解性，被廣泛應(yīng)用于組織工程領(lǐng)域[15-19]。絲素蛋白是由十八種氨基酸組成，其氨基酸中含有大量的氨基、羥基和酰胺基團，海藻酸鈣(CA)中含有大量的羥基和羰基基團，可利用羥基—羥基、羥基—酰胺基、氨基—羰基間的氫鍵作用來提高SF與CA分子間的作用力，增強材料的力學(xué)性能[20-21]。Eivazzadeh-Keihan等[22]使用海藻酸鈉、聚乙烯醇、絲素蛋白和氫氧化鎂納米棒制備了一種復(fù)合支架。實驗結(jié)果表明，絲素蛋白的引入，增強了材料的機械強度，同時支架具備良好的生物相容性，復(fù)合支架的細胞存活率達92%。李寧寧等[23]采用海藻酸鈉和絲素蛋白組成的生物墨水,以含5%氯化鈣與13%F127的混合溶液作為交聯(lián)劑，利用同軸打印技術(shù)制備具有高度有序排列的可灌結(jié)構(gòu)的血管支架。實驗結(jié)果表明，打印出的血管支架具有完全貫通的管道結(jié)構(gòu)，有利于細胞黏附和生長，復(fù)合支架的細胞存活率可達95%。

本研究通過Ca2+遷移帶動SF分散在SA溶液制成一種具有“鋼筋混凝土”結(jié)構(gòu)的絲素蛋白/海藻酸鈣支架。不同于傳統(tǒng)支架，該支架特殊的“鋼筋混凝土”結(jié)構(gòu)表現(xiàn)出更好的力學(xué)性能。同時，它具有良好的吸水率和孔隙率，使得細胞能在支架中粘附、增殖和分化。

2 材料與方法

2.1 材料與儀器

SA(AR，阿拉丁)；蠶繭(廣西柳州)；溴化鋰(LiBr，國藥集團化學(xué)試劑有限公司)；無水碳酸鈉(NaCO3，江蘇強盛功能化學(xué)股份有限公司)；無水氯化鈣(CaCl2，AR 98%，阿拉丁)；碳酸鈣(CaCO3，江蘇永華精細化學(xué)品有限公司)；乙二胺四乙酸二鈉(EDTA-2Na，AR98%，阿拉丁)；葡萄糖內(nèi)酯(GDL，99%，阿拉丁)。胎牛血清(α-DMEM培養(yǎng)基，Sigma-Aldrich，美國)；PBS緩沖液；噻唑藍(MTT，南京生興生物技術(shù)有限公司)；二甲基亞砜(DMSO，賽默飛世爾科技公司)；無水乙醇(國藥集團化學(xué)試劑有限公司)。

精密電子天平(德國Sartorius)；紅外光譜儀(美國ThermoNicolet)；掃描電子顯微鏡(德國Zeiss)；真空冷凍干燥機(美國Labconco)；力學(xué)性能試驗機(美國BOSE)；酶聯(lián)免疫檢測儀(瑞士TECAN)；激光共聚焦顯微鏡(德國Zeiss)。

2.2 絲素蛋白(SF)的提取

首先將蠶繭剪開，去除蠶繭中的蠶蛹和內(nèi)膜并使用去離子水洗凈。然后置于0.02 mol/L的NaCO3溶液中，再在100℃水浴下加熱脫膠30 min后取出、擰干并用去離子水洗滌2～3次，重復(fù)3次脫膠過程。最后在60℃烘箱內(nèi)烘干，得到絲素蛋白纖維。

先將絲素蛋白纖維放入到9.3 mol/L LiBr溶液中，置于60℃烘箱，每過5 min攪拌一次，直至完全溶解。然后將溶解后的SF溶液倒入截留分子量8～14 kDa的透析袋中，在去離子水中透析3 d，期間每隔4h換一次水。透析期間，使用硝酸銀溶液檢測透析袋外水溶液，不產(chǎn)生沉淀則透析完成。最后將絲素蛋白溶液置于離心機中離心，得到純凈的SF溶液，放入4℃冰箱內(nèi)冷藏保存。

2.3 SF/CA支架的制備

先稱取2.22 g無水氯化鈣溶于100 mL去離子水，后加入7.45 gEDTA-2Na，充分螯合形成0.2 mol/LEDTA-CaCl2溶液。再在每13 mLEDTA-CaCl2溶液中加入1 g葡萄糖內(nèi)酯GDL和2 mLSF溶液。接著配制質(zhì)量分?jǐn)?shù)為3wt%的SA溶液置于24孔板，每孔1.5 mL。又將EDTA-CaCl2、GDL和SF混合溶液以每滴20 μL，間隔30 s的速度滴入SA溶液中，總約20滴。最后將其冷凍干燥制成支架，記為SF/CA1。

先稱取2g碳酸鈣溶于100 mL去離子水，后加入7.45 g EDTA-2Na，充分螯合形成0.2 mol/L EDTA-CaCO3溶液。再在20 mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)為3 wt%的SA溶液中加入1 mL SF溶液，攪拌5 min。接著確定P=[Ca2+]/[COO—]=0.18、確定Q=[GDL]/[Ca2+]=2，加入對應(yīng)量的0.2 mol/L EDTA-CaCO3溶液和GDL粉末，攪拌5 min。最后將其注入24孔板，冷凍干燥制成支架，記為SF/CA2。

先配制質(zhì)量分?jǐn)?shù)為3wt%的SA溶液和0.2 mol/L CaCl2溶液。然后在20 mLSA溶液中加入1 mL SF溶液，攪拌5 min。再加入2.7 mL CaCl2溶液,攪拌5 min。最后將其注入24孔板，冷凍干燥制成支架，將其記為SF/CA3。

2.4 材料性能的表征

2.4.1紅外分析 為了獲得SF/CA支架的官能團信息,使用紅外光譜儀(美國ThermoNicolet)進行分析。分辨率為2 cm-1，掃描波波數(shù)范圍為500～4 000 cm-1。

2.4.2形貌分析 為了獲得SF/CA支架的形貌，孔徑大小以及絲素蛋白在支架中的分布狀況，使用數(shù)碼相機、掃描電鏡、共聚焦顯微鏡對支架進行觀測。

2.4.3孔隙率的檢測 為了獲得SF/CA支架的孔隙率，使用比重瓶，采用重量法測量孔隙率。每組支架重復(fù)測量3次，取其平均值?？紫堵使饺缦拢?/p>

(1)

式中，ε為支架孔隙率；w0為比重瓶裝滿乙醇后的總質(zhì)量；w1為支架質(zhì)量；w2為組織支架完全排出氣泡后充滿乙醇后的質(zhì)量；w3為把支架從乙醇中 取出后剩余物的總質(zhì)量。

2.4.4吸水率分析 為了獲得SF/CA支架的吸水率。使用PBS緩沖液測試不同時間段吸水后支架的重量。每組支架重復(fù)測量3次，取其平均值?？紫堵使饺缦拢?/p>

(2)

式中ζ為支架吸水率；wx為不同時間段支架質(zhì)量；wi為支架初始的質(zhì)量。

2.4.5力學(xué)性能檢測 為了評價SF/CA支架的抗壓性能，使用BoseELF3200生物材料力學(xué)測試系統(tǒng)對支架進行抗壓強度的測試。按照GB-T1041-192的標(biāo)準(zhǔn)測試多孔支架的壓縮強度。加載速度為0.5 mm/sec，每組為5個樣品。

由于SF/CA 3支架的結(jié)構(gòu)明顯不均勻，故只對SF/CA1和SF/CA2支架材料進行力學(xué)性能測試。

2.4.6MTT法檢測細胞毒性 為了評價SF/CA支架的生物相容性，使用MTT法檢測支架的細胞毒性。取生長狀態(tài)良好的MC3T3-E1細胞制備成密度為5×104個/mL細胞懸液，接種于96孔板，每孔100 μL，置于37°C、5%CO2細胞培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)24 h，待細胞貼壁后，吸去原培養(yǎng)基，PBS緩沖液洗滌2次。3組分別加入200 μL浸提液，對照組加入200 μL完全培養(yǎng)基，繼續(xù)培養(yǎng)，培養(yǎng)至1、3、5、7 d后，加入20 μL MTT液，培養(yǎng)4 h后棄去原培養(yǎng)液，每孔加入150 μL DMSO，低速搖床避光震蕩10 min，用酶標(biāo)儀于490 nm波長測定吸光度(A)值，取平均值。

2.5 統(tǒng)計學(xué)分析

所有實驗數(shù)據(jù)均用平均值±標(biāo)準(zhǔn)偏差表示，樣品組≥5。單因素方差分析用于評估統(tǒng)計學(xué)顯著性，P≤0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

3 結(jié)果與討論

3.1 紅外分析

為了驗證三種絲素蛋白/海藻酸鈣(SF/CA)復(fù)合支架是否成功制備，本研究進行了紅外分析，見圖1。

圖1 SF/CA支架的紅外光譜圖

純SA的紅外光譜顯示2 925 cm-1處為C—H的伸縮振動吸收峰；1 617 cm-1處是SA中C—O—C伸縮振動峰；在1 416 cm-1處為—COO—的對稱伸縮振動峰，在1 036 cm-1處是SA中O—H彎曲振動峰。純SF的紅外光譜顯示1 632 cm-1和1 540 cm-1處的峰分別是β-折疊構(gòu)象(Silk II)的酰胺I和酰胺II的特征吸收峰。同時，在1 234 cm-1峰屬于無規(guī)卷曲結(jié)構(gòu)(Silk I)的酰胺III的特征吸收峰[24]。而且，在1 055 cm-1處的峰歸因C—N拉伸振動吸收。

絲素蛋白/海藻酸鈣(SF/CA)復(fù)合支架的紅外光譜顯示，SF在1 632 cm-1處具有較強的吸收峰，使得CA的C—O—C的伸縮振動峰的特征吸收峰消失。而SF酰胺II的特征吸收峰在1 540 cm-1處消失，這歸因于SF和CA分子之間發(fā)生氫鍵相互作用[25-26]。在1 234 cm-1出現(xiàn)SF酰胺III的特征吸收峰，表明支架中含有少量SF的成分。SF/CA復(fù)合支架在1 416 cm-1， 1 036 cm-1為CA的特征吸收峰。說明三種SF/CA復(fù)合支架既含有SF成分，又含有CA成分，并且SF的構(gòu)象并沒有發(fā)生變化。

3.2 形貌分析

對于應(yīng)用于組織工程的支架而言，必須具有良好的三維多孔結(jié)構(gòu)以滿足細胞的生長等性能，為了研究新型支架“鋼筋混凝土”結(jié)構(gòu)與傳統(tǒng)支架結(jié)構(gòu)的區(qū)別，我們對其結(jié)構(gòu)進行觀察，見圖2。圖2(a)、圖2(b)、圖2(c)從左至右分別為支架SF/CA 1、SF/CA 2、SF/CA 3的數(shù)碼圖、熒光圖、低倍SEM圖、高倍SEM圖。

圖2 SF/CA支架的形貌圖

首先對支架SF/CA1的形貌進行分析，數(shù)碼圖顯示該支架表明粗糙，不平整，存在一圈圈的波紋；從熒光圖可看出絲素蛋白在支架中具有一圈圈波紋的分布，中間相互連接，有間隙；由SEM圖可知支架表面存在一圈圈波紋，波紋之間粗糙，不存在孔隙，波紋粗糙，不規(guī)則。

其次對支架SF/CA2的形貌進行分析，數(shù)碼圖顯示該支架表面粗糙，平整，存在有規(guī)律的孔隙。從熒光圖可看出絲素蛋白在支架中分布較均勻，支架呈多孔結(jié)構(gòu)。由SEM圖可知，孔主要為長圓形和圓形，孔徑大小不一，孔隙較密，孔隙在100～200 μm，孔壁光滑。

最后對支架SF/CA3的形貌進行分析，數(shù)碼圖顯示該支架表面粗糙，不平整，存在無規(guī)則的孔隙，支架松散，不是一個完整的圓柱形支架。從熒光圖可看出絲素蛋白在支架內(nèi)部分布不均勻。由SEM圖可知，支架表面粗糙，存在不規(guī)則孔隙，孔不規(guī)則，孔壁光滑。

3.3 孔隙率分析

高孔隙率的材料能夠提供足夠的空間并吸收足夠的營養(yǎng)物質(zhì)，從而有利于體內(nèi)物質(zhì)的交換。支架SF/CA1是通過Ca2+在SA溶液中離遷移帶動絲素蛋白分散所制備的支架，具有一種特殊的“鋼筋混凝土”結(jié)構(gòu)，有較高的孔隙率。其多孔結(jié)構(gòu)和高孔隙率能夠使其具有高吸水性、高營養(yǎng)物質(zhì)滲透能力，有利于細胞的黏附和生長。而支架SF/CA2內(nèi)部結(jié)構(gòu)均一，孔隙較小介于100～200 μm。支架SF/CA3在制備過程中，CaCl2的加入，使得SF/SA溶液立即發(fā)生交聯(lián)，不存在Ca2+緩慢釋放的過程，導(dǎo)致所制備的支架內(nèi)部結(jié)構(gòu)不均勻，本研究所測該支架這一部位的孔隙較小。支架孔隙率見圖3。

圖3 SF/CA支架的孔隙率

3.4 吸水率分析

吸水率是組織工程支架材料的重要評價因素之一。由圖4可知，用PBS緩沖液浸泡支架SF/CA2和SF/CA3，30 min后，吸水率無變化。而支架SF/CA1隨著時間的增加，吸水率逐漸增加，在6 h時支架吸水能力達到飽和。3種支架的吸水率均高于90%，這與絲素蛋白含有大量羧基、羥基、氨基和海藻酸鈣中含有大量羧基、羥基這些親水基團有關(guān)。

圖4 SF/CA支架的吸水率

此外，支架SF/CA2和SF/CA3的吸水率均高于支架SF/CA1，這歸因于支架SF/CA1特殊的“鋼筋混凝土”結(jié)構(gòu)。

3.5 力學(xué)性能分析

由圖5可知，支架SF/CA2隨著壓縮程度的增加，應(yīng)力逐漸增加；支架SF/CA1隨著壓縮程度的增加，應(yīng)力逐漸增加，當(dāng)壓縮達到30%時，應(yīng)力顯著提高。支架SF/CA2與支架SF/CA1的抗壓強度分別為(11.10±2.61) KPa與(72.68±6.73) KPa；楊氏模量分別為(22.20±5.22)KPa與(145.36±13.46) KPa。表明通過離子遷移方式制備的具有“鋼筋混凝土”結(jié)構(gòu)的SF/CA支架相比于傳統(tǒng)機械共混所制備的支架具有更好的力學(xué)性能。絲素蛋白通過Ca2+遷移，進行定向排列，最后支架表面呈現(xiàn)波紋狀。在壓縮過程中，這些定向排列的絲素蛋白起著“鋼筋”的作用，以抵抗壓縮形變，故呈現(xiàn)出更高的抗壓強度和楊氏模量。

圖5 SF/CA支架的力學(xué)性能

3.6 細胞毒性檢測分析

為了定量測定三種絲素蛋白/海藻酸鈣(SF/CA)支架對細胞的毒性影響，我們將MC3T3細胞接種到支架的浸提液中進行了MTT測試，見圖6。海

圖6 MTT法檢測MC3T3-E1細胞的增殖情況

藻酸鈉是一種天然的聚陰離子聚合，帶有大量負(fù)電荷。MC3T3-E1細胞是小鼠胚胎成骨細胞，其細胞膜因其磷脂雙分子層結(jié)構(gòu)而帶負(fù)電荷，與海藻酸鈉發(fā)生排斥反應(yīng)，故而不能促進細胞增殖。但支架的浸提液中細胞都隨著時間的增加表現(xiàn)出增殖情況，表明支架無細胞毒性。

4 結(jié)論

本研究以SF和SA為原料，區(qū)別于傳統(tǒng)機械共混SF和SA溶液的方式，通過離子遷移的方式制備了一種新型絲素蛋白/海藻酸鈣支架。通過FT-IR表征支架的結(jié)構(gòu)，表明所制備的復(fù)合支架含有SF和CA成分。通過形貌分析支架的表面形貌，證明了該支架具有“鋼筋混凝土”結(jié)構(gòu)。支架的吸水率和孔隙率表明其具有較高的吸水率和孔隙率，適合細胞生長。力學(xué)性能實驗表明該新型支架具有更優(yōu)越的力學(xué)性能。細胞毒性實驗表明，成骨細胞MC3T3-E1細胞能在支架上黏附、生長、增殖。該支架在骨組織工程中具有良好的應(yīng)用前景。