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        雙室微生物燃料電池對(duì)土壤中鉛的去除研究

        2021-12-19 12:12:28陸洪省吳玉斌

        陸洪省,吳玉斌,張 瑤

        (山東科技大學(xué)安全與環(huán)境工程學(xué)院,山東 青島 266590)

        傳統(tǒng)的雙室微生物燃料電池(Microbial fuel cell,即MFC)是由陽(yáng)極室與陰極室組成,中間由質(zhì)子交換膜隔開(kāi)[1],由于使用質(zhì)子交換膜導(dǎo)致成本昂貴,通常膜(如使用Nafion117膜)的成本占全部費(fèi)用的50%[2]以上,所以,本研究是以鹽橋?yàn)橘|(zhì)子交換通道,節(jié)省了大量成本。

        產(chǎn)電細(xì)菌的種類很多,包括變形桿菌Proteobacteria、厚壁菌Firmicutes、土桿菌Geobacteraceae、擬桿菌Bacteriodetes及放線菌Actinobacteria[3]等。在多種細(xì)菌存在的條件下,研究MFC電子傳遞非常復(fù)雜,因此,考察單一產(chǎn)電細(xì)菌的電子傳遞機(jī)理,就成為提高M(jìn)FC產(chǎn)電性能的重要途徑之一。

        目前,全世界平均每年排放約500萬(wàn)t鉛,其中大部分會(huì)進(jìn)入土壤[4]。在我國(guó)320個(gè)重金屬重點(diǎn)污染區(qū)中,鉛是最嚴(yán)重的污染元素之一[5]?,F(xiàn)階段,對(duì)于重金屬鉛污染的土壤進(jìn)行治理的方法有物理化學(xué)法和生物修復(fù)法,其中,物理化學(xué)法對(duì)土壤攪動(dòng)大,費(fèi)用高,而生物修復(fù)法見(jiàn)效慢,且極易受土壤理化性質(zhì)以及氣候環(huán)境條件的影響,所以,利用微生物燃料電池(MFC)方法富集或去除土壤中重金屬鉛的報(bào)道非常少!

        本研究首先從活性污泥中分離產(chǎn)電細(xì)菌,將此單一產(chǎn)電細(xì)菌在陽(yáng)極室中培養(yǎng),而陰極室中填充土壤,利用土壤雙室MFCs裝置進(jìn)行研究以下研究:在土壤中添加葡萄糖對(duì)MFC產(chǎn)電性能的影響;陰極室土壤中Pb2+在MFC條件下的遷移規(guī)律;產(chǎn)電細(xì)菌的生理生化性質(zhì)以及分類學(xué)位置,以此為利用土壤MFCs富集土壤中的重金屬同時(shí)產(chǎn)生電能提供理論依據(jù)。

        1 實(shí)驗(yàn)

        1.1 MFC實(shí)驗(yàn)裝置

        采用雙室MFC,實(shí)驗(yàn)裝置如(圖1)所示。中間為陽(yáng)極室,兩邊為兩個(gè)陰極室,陰極室暫命名為1號(hào)和2號(hào)陰極室。陽(yáng)極室尺寸30 cm×30 cm×20 cm(長(zhǎng)×寬×高),兩個(gè)陰極室尺寸相同,均為20×20×15 cm(長(zhǎng)×寬×高)。陽(yáng)極石墨板尺寸為10 cm×10 cm×0.5 cm(長(zhǎng)×寬×厚),面積為100 cm2;陰極石墨板的尺寸均為5.0 cm×4.5 cm×0.4 cm(長(zhǎng)×寬×厚),板面面積為22.5 cm2,陽(yáng)極室與陰極室(1號(hào)和2號(hào))分別用鹽橋連接。分別在1號(hào)和2號(hào)陰極室中填充土壤,土壤取自山東科技大學(xué)校園內(nèi),土壤取來(lái)后應(yīng)先進(jìn)行風(fēng)干、研碎和過(guò)篩(目)。

        圖1 微生物燃料電池裝置示意圖

        鹽橋制作過(guò)程:準(zhǔn)確稱取4 g瓊脂加入到盛有200 ml蒸餾水的燒杯中,加熱使瓊脂完全溶解。再稱量60 g KCl加入到燒杯中,繼續(xù)加熱,使KCl完全溶解,趁熱將混合液注入到U型塑料管中,塑料管兩口朝上,直至溶液溢出管口[6]。

        1.2 產(chǎn)電細(xì)菌的分離與純化

        在陽(yáng)極室中添加乙酸鈉液體培養(yǎng)基,用于培養(yǎng)產(chǎn)電細(xì)菌。培養(yǎng)基組成(g·L-1)為:乙酸鈉為0.8,NH4Cl為0.31,KCl為0.13,Na2HPO4·12H2O為3.75,NaH2PO4·H2O為4.9,1 000 mL去離子水,用鹽酸或氫氧化鈉調(diào)節(jié)pH值至7.2,其中,在配制固體培養(yǎng)基時(shí)加入20 g瓊脂,配制半固體培養(yǎng)基時(shí)加入4 g瓊脂,液體和固體培養(yǎng)基均在121 ℃滅菌20 min后使用。

        產(chǎn)電細(xì)菌分離于活性污泥的方法:將10 mL活性污泥加入到盛有190 mL的乙酸鈉液體培養(yǎng)基的三角瓶中,恒溫振蕩(130 r/min,30 ℃)培養(yǎng)4 d,取15 μL培養(yǎng)液劃線培養(yǎng)到乙酸鈉固體培養(yǎng)基上,30 ℃靜置培養(yǎng),待長(zhǎng)出菌落后,挑選單菌落,并多次重復(fù)劃線,直至菌落形態(tài)等一致,將分離純化的菌株保存在半固體培養(yǎng)基中,待用。

        1.3 MFC的運(yùn)行及產(chǎn)電性能的計(jì)算

        將分離純化到的菌株接種到陽(yáng)極室中的乙酸鈉液體培養(yǎng)基中(培養(yǎng)基的組成同1.2),在30 ℃條件下培養(yǎng)8 d,細(xì)菌掛膜完成。然后利用鹽橋?qū)㈥?yáng)極室分別與兩陰極室相連,最后連接數(shù)據(jù)采集系統(tǒng),此時(shí),MFCs開(kāi)始運(yùn)行。在陽(yáng)極室中利用厭氧袋創(chuàng)造厭氧環(huán)境,陰極室中土壤定期進(jìn)行補(bǔ)濕,將MFCs置于30 ℃恒溫培養(yǎng)箱中;電池性能數(shù)據(jù)用RDAM-4017模塊進(jìn)行采集,電壓電流分析軟件用數(shù)控6.1,其中輸出電壓(U)每10 S采集一次數(shù)據(jù);外接5位可變直流電阻箱(型號(hào):TAS986)。其中,電流通過(guò)公式I=U/R計(jì)算得出,式中I 為電流,U為輸出電壓,R 為外回路電阻,內(nèi)阻、電壓-電流密度(V-J)以及功率-電流密度(P-J)測(cè)定均參照文獻(xiàn)[7]中進(jìn)行,陰極石墨板面積用來(lái)計(jì)算電流密度。

        1.4 陰極室土壤中Pb2+濃度測(cè)定

        在MFCs運(yùn)行結(jié)束后,分別取距離陰極石墨板等距離處的土壤,如(圖2)所示,即1號(hào)陰極室1和4(0cm處),2和5(5 cm處),3和6(10 cm處)位置的土壤,2號(hào)陰極室7和10(0cm處),8和11(5 cm處),9和12(10 cm處)的土壤各50 g,分別溶入200 mL去離子水中,充分?jǐn)嚢?、靜置,測(cè)定上清液中Pb2+的濃度,以平均值作為最終土壤中Pb2+濃度。Pb2+濃度測(cè)定采用原子吸收分光光度計(jì)(型號(hào):TAS986)法,具體測(cè)定方法應(yīng)按照原子吸收分光光度計(jì)測(cè)定步驟進(jìn)行。

        圖2 陰極室土壤的采集(導(dǎo)線處即為陰極電極板所在處)

        1.5 產(chǎn)電細(xì)菌生理生化性質(zhì)的分析及DNA的提取、測(cè)序、系統(tǒng)分類學(xué)位置的確定

        產(chǎn)電細(xì)菌生理生化性質(zhì)測(cè)定按照《常見(jiàn)細(xì)菌系統(tǒng)鑒定手冊(cè)》方法進(jìn)行。該方法是利用柱式細(xì)菌基因組抽提試劑盒(UNIQ-10)對(duì)產(chǎn)電細(xì)菌DNA進(jìn)行提取,提取方法按試劑盒說(shuō)明書進(jìn)行。PCR擴(kuò)增用引物為細(xì)菌16S rDNA通用引物,由上海生物工程公司對(duì)菌株16S rDNA進(jìn)行測(cè)序,測(cè)得的16S rDNA序列通過(guò)DDBJ(DNA Data Bank of Japan)數(shù)據(jù)庫(kù)中的Blast進(jìn)行相似性比對(duì),再利用CustalX2.0和Mega5(Molecular Evolutionary Genetics Analysis)軟件創(chuàng)建系統(tǒng)樹,創(chuàng)建方法為鄰接法(Neighbor-Joining)。

        2 結(jié)果

        2.1 MFC輸出電流密度和電壓的分布

        當(dāng)MFC運(yùn)行0~10 d,在土壤中添加葡萄糖跟未添加葡糖糖的兩種條件下,電壓升高幅度很慢,且兩種處理?xiàng)l件下電壓值均低于10 mV,但運(yùn)行10 d后,土壤在兩種處理?xiàng)l件下MFC產(chǎn)生的電壓均在迅速增大,且土壤中添加葡萄糖的MFC產(chǎn)生的電壓明顯要高于未添加葡萄糖土壤的MFC產(chǎn)生的電壓,在MFCs運(yùn)行15 d之后,兩種處理?xiàng)l件下的電壓值變化幅度變小,此時(shí)土壤中添加葡萄糖的MFC產(chǎn)生的電壓遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于土壤中未添加葡萄糖的MFC產(chǎn)生的電壓,如圖3所示。

        圖3 土壤在兩種處理?xiàng)l件下MFCs的輸出電壓曲線

        為了表征土壤在兩種處理?xiàng)l件下MFC的電化學(xué)性能,本研究采用電流密度(Current density)-電壓(Voltage)進(jìn)行說(shuō)明,如(圖4)所示。外加電阻變化范圍為200~900 000 Ω,從(圖4)中可以看出,當(dāng)外電阻在5 000~900 000 Ω變化時(shí),土壤中添加葡萄糖電池的電壓(1號(hào)陰極室)遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于土壤中未添加葡萄糖電池的電壓(2號(hào)陰極室),且1號(hào)陰極室最大電壓是65.5 mV,2號(hào)陰極室最大電壓是24.8 mV;而當(dāng)外電阻在200~5 000 Ω之間變化時(shí),兩者(1號(hào)陰極室和2號(hào)陰極室)所產(chǎn)生的電壓非常接近。

        圖4 電流密度和電壓關(guān)系

        從電流密度-功率密度曲線(圖5)中可以看出,外電阻在200~900 000 Ω之間變化時(shí),土壤中添加葡萄糖(1號(hào)陰極室)以及未添加葡萄糖(2號(hào)陰極室)的兩組MFC,其產(chǎn)生的功率密度非常接近,當(dāng)外電阻為1 300 Ω時(shí),土壤中添加葡萄糖的MFC產(chǎn)生的最大功率密度為91.95 W·m-2,當(dāng)外電阻為1 400 Ω時(shí),土壤中未添加葡萄糖的MFC產(chǎn)生的最大功率密度為87.5 W·m-2。

        圖5 陰極室中土壤的不同處理對(duì)MFCs功率密度的影響

        2.2 不同取樣點(diǎn)土壤中Pb2+的濃度測(cè)定結(jié)果

        向陰極室土壤中分別噴灑濃度為16.74 g/L的硝酸鉛溶液900 mL,攪拌均勻后,測(cè)得Pb2+初始濃度為3.125 g/kg。當(dāng)MFCs運(yùn)行結(jié)束后,分別取距離石墨板0 cm、5 cm和10 cm處的土壤50 g,用200 ml去離子水浸泡12 h,在浸泡過(guò)程中不斷攪拌,使土壤中Pb2+溶出到去離子水中,靜置5 h,取上清液,利用原子吸收分光光度計(jì)測(cè)定浸出液中Pb2+的濃度,其測(cè)定過(guò)程按照原子吸收分光光度計(jì)說(shuō)明書操作,在得到Pb2+測(cè)定標(biāo)準(zhǔn)曲線后,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算出不同位置土壤中Pb2+濃度,其結(jié)果如(表1)所示。從(表1)中可以看出,在土壤中添加葡萄糖(1號(hào)陰極室)和未添加葡萄糖(2號(hào)陰極室)的MFCs中,距離電極板越近,土壤中Pb2+濃度越大。通過(guò)比較1號(hào)和2號(hào)陰極室土壤中Pb2+濃度發(fā)現(xiàn),在距離電極板0 cm處,1號(hào)陰極室土壤中的Pb2+濃度(5.347 g/kg)遠(yuǎn)高于2號(hào)陰極室土壤中Pb2+濃度(4.725 g/ kg),相反,在距離陰極石墨板5 cm和10 cm處土壤中,1號(hào)陰極室土壤中Pb2+濃度明顯低于2號(hào)陰極室土壤中的Pb2+濃度。

        表1 距離陰極板不同距離土壤中Pb2+的濃度

        2.3 產(chǎn)電細(xì)菌CD-3生理生化性質(zhì)及分類學(xué)位置的分析

        2.3.1 菌株CD-3的生理生化性質(zhì)

        按照《常見(jiàn)細(xì)菌系統(tǒng)鑒定手冊(cè)》中操作步驟,對(duì)菌株CD-3的生理生化性質(zhì)進(jìn)行測(cè)定。菌株CD-3為革蘭氏陰性細(xì)菌,短桿狀,氧化酶、過(guò)氧化氫酶反應(yīng)為陽(yáng)性,其能利用葡萄糖為碳源,但不能利用阿拉伯糖為碳源。

        2.3.2 菌株CD-3的系統(tǒng)分類學(xué)位置

        對(duì)菌株CD-3的16S rDNA序列進(jìn)行PCR擴(kuò)增,將擴(kuò)增序列提交到DDBJ獲得收錄號(hào)LC012001。用CustalX2.1和Mega5軟件對(duì)菌株CD-3的16S rDNA序列以及同源性較高菌株的16S rDNA序列創(chuàng)建系統(tǒng)發(fā)育樹創(chuàng)建,如圖6所示。從圖6可以看出,菌株CD-3的16S rDNA序列與菌株Ochrobactrum ciceri(DQ647056)的同源性最高,達(dá)98%。因此,菌株CD-3應(yīng)屬于蒼白桿菌屬,并命名為Ochrobactrum sp.CD-3(LC012001)。

        圖6 緊鄰法構(gòu)建的基于Ochrobactrum sp.CD-3及相關(guān)菌株16S rDNA序列的系統(tǒng)發(fā)育樹

        3 討論

        在土壤中添加葡萄糖跟未添加葡萄糖的兩種處理?xiàng)l件下,最大功率密度分別為91.95 mW·m-2和87.5 mW·m-2,對(duì)Pb2+遷移的影響前者明顯優(yōu)于后者,且在靠近電極板的位置,添加葡萄糖土壤中的Pb2+濃度遠(yuǎn)高于未添加葡萄糖土壤中的Pb2+濃度,在遠(yuǎn)離電極板土壤中Pb2+濃度正好相反,添加葡萄糖土壤中Pb2+濃度遠(yuǎn)低于未添加葡萄糖土壤中Pb2+濃度。利用最大功率密度求出的MFCs內(nèi)阻來(lái)看,土壤中添加葡萄糖的MFC的內(nèi)阻為1 300 Ω,未添加葡萄糖MFC的內(nèi)阻為1 400 Ω。此根據(jù)來(lái)源于Quan et al.(2013)[8],An et al.(2013)[9]和Ball(2007)[10]。

        本研究中分離到的產(chǎn)電細(xì)菌Ochrobactrum sp.CD-3為革蘭氏陰性,能夠利用乙酸鈉、葡萄糖等為碳源,這與產(chǎn)電細(xì)菌Ochrobactrum anthropi相似。

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