韋 志，阮心眉，戴濤濤，付 敏，袁建成，李 俶, ，陳 軍

（1.南昌大學(xué), 食品科學(xué)與技術(shù)國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，江西南昌330047；2.廣西壯族自治區(qū)農(nóng)業(yè)科學(xué)院, 廣西果蔬貯藏與加工新技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，廣西南寧530007）

砂仁（Amomum villosum，A.villosum）是姜科（Zingiberaceae）豆蔻屬的植物果實(shí)，與益智仁、檳榔、巴戟天并稱為我國“四大南藥”，同時(shí)也是《中華人民共和國藥典》（2015年版）收錄的重要品種[1]。砂仁味道豐富，有酸甜苦辣咸味，砂仁的花、果、根、莖、葉部位均可入藥。它具有“化濕開胃、理氣止痛、溫脾止瀉、行氣安胎”等功效[2]。研究結(jié)果表明砂仁中的揮發(fā)油成分具有顯著的抗?jié)?、促進(jìn)腸胃蠕動(dòng)、胃排空和鎮(zhèn)痛等作用[3]。砂仁中含有較高含量的多酚、多糖等多種生物活性成分，具有明顯的抗炎、抗氧化、抗腫瘤、鎮(zhèn)痛等作用[4-6]。

多糖一般是指由十種或更多單糖通過糖苷鍵鏈接而成的聚合物。植物多糖是一種天然大分子，在其生命活動(dòng)中發(fā)揮重要作用[7]。近年來，多糖因無毒、可生物降解、生物相容性好，而且與合成聚合物相比價(jià)格更低等優(yōu)點(diǎn)備受關(guān)注。所有這些優(yōu)點(diǎn)賦予了多糖及其衍生物在不同領(lǐng)域的廣泛應(yīng)用，如食品、生物醫(yī)學(xué)等領(lǐng)域[8]。

目前，溶劑法提取多糖主要包括熱水浸提、酸浸提、堿浸提、螯合劑浸提（草酸銨、EDTA等），不同溶劑提取的多糖具有不同的結(jié)構(gòu)及生物活性[9]，這可能是因?yàn)橹参镏卸嗵峭c其他成分結(jié)合共存，以及多糖在不同溶劑條件下的存在形式不同導(dǎo)致（如構(gòu)象等）。熱水浸提法只能提取一些水溶性的長鏈多糖分子，酸法是工業(yè)上提取果膠的常用技術(shù)，堿法則是通過釋放與多酚或其它小分子結(jié)合的多糖，螯合劑的作用機(jī)理則是與鈣離子結(jié)合降低多糖大分子之間的交聯(lián)。有文獻(xiàn)報(bào)道，堿法提取的多糖在抗氧化性上優(yōu)于傳統(tǒng)的水提多糖[10]。

為了獲得更好的生物活性的多糖，本實(shí)驗(yàn)采用堿浸提法提取砂仁多糖，探究堿性提取條件下砂仁多糖的結(jié)構(gòu)特性和抗氧化性，旨在為砂仁多糖的應(yīng)用提供理論依據(jù)，對砂仁資源的開發(fā)利用提供參考。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

海南砂仁 湛江中國熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)產(chǎn)品加工研究所；咔唑、單糖組成標(biāo)準(zhǔn)品、3-甲基-1-苯基-2-吡唑啉-5-酮（PMP）、1，1-二苯基-2-三硝基苯肼（DPPH）、葡聚糖標(biāo)準(zhǔn)品、2,2-聯(lián)氮-二（3-乙基-苯并噻唑-6-磺酸）二銨鹽（ABTS）、半乳糖醛酸 美國Sigma公司；考馬斯亮藍(lán)G-250 北京索萊寶科技有限公司；牛血清白蛋白 阿拉丁試劑（上海）有限公司；葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品 西隴科學(xué)股份有限公司；所有試劑 均為分析純。

TGL-20B高速離心機(jī) 上海安亭科學(xué)儀器廠；HR-10中藥粉碎機(jī) 浙江哈瑞工貿(mào)有限公司；RE-2000A旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 上海亞榮生化儀器廠；AlpHa1-2LD冷凍干燥機(jī) 德國Christ公司；TU-1810紫外分光光度計(jì) 北京普析通用儀器有限責(zé)任公司；Agilent 1260高效液相色譜儀（配Brookhaven BIDNDC示差檢測器）、Agilent 1260型液相色譜儀（配DAD檢測器） 美國Agilent公司；Nicolet 5700傅里葉紅外光譜儀 美國熱電公司；TGA 4000熱重分析儀 美國PE公司；JSM-6701F冷場發(fā)射掃描電鏡 日本電子株式會(huì)社；D8 Advance X射線衍射儀德國Bruker公司；Gen 5通用型酶標(biāo)儀 美國Bio Tek公司。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 砂仁多糖樣品制備 根據(jù)Gao等[11]方法稍作修改提取砂仁多糖。采用中藥粉碎機(jī)將干燥后（含水量小于5%）砂仁粉碎，過60目標(biāo)準(zhǔn)篩。80%乙醇浸泡砂仁粉末過夜，除去脂溶性雜質(zhì)。揮發(fā)蒸干乙醇后，加入3000 mL的0.1 mol/L NaOH（含0.01 mol/L NaBH4），在室溫條件下提取多糖2 h。粗提液經(jīng)離心（4800 r/min，15 min）得上清液，然后經(jīng)旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀在60 °C條件下，濃縮上清液至原上清液的1/4后，加入95%乙醇使溶液乙醇濃度達(dá)到80%。樣品經(jīng)醇沉過夜后離心取沉淀，加水復(fù)溶。以Sevag法去除蛋白，即氯仿-正丁醇（4:1，v/v）溶液與砂仁多糖水溶液振搖混合（1:4，v/v），重復(fù)四次，使蛋白質(zhì)變性析出，離心去除變性蛋白。蒸餾水透析（8～14 kDa）3 d。然后旋蒸，濃縮，經(jīng)真空冷凍干燥獲得砂仁多糖。

1.2.2 砂仁多糖的化學(xué)組成測定

1.2.2.1 總糖含量測定 采用苯酚-硫酸法[12]測定砂仁多糖的總糖含量。取1.0 mL不同濃度的葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品溶液或0.1 mg/mL的多糖溶液或蒸餾水（空白），與1.0 mL的5%的苯酚溶液混合均勻，加入4.0 mL濃硫酸搖勻混合，靜置30 min，于490 nm處測定吸光度值。以葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品溶液的濃度（μg/mL）為橫坐標(biāo)，吸光度值為縱坐標(biāo)，繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。以標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算砂仁多糖的總糖含量（μg/mL）。

1.2.2.2 糖醛酸含量測定 采用硫酸-咔唑法[13]測定多糖中的糖醛酸含量。取1.0 mL的不同濃度的半乳糖醛酸溶液或1 mg/mL的多糖溶液或蒸餾水（空白），在冰水浴條件下加入6.0 mL濃硫酸混合均勻，放入85 ℃水浴中恒溫保持20 min，取出冷卻至室溫后，分別向各管中加入0.2 mL的0.1%咔唑-乙醇溶液，在室溫下放置2 h，于530 nm處測定吸光度值。以半乳糖醛酸溶液的濃度（μg/mL）為橫坐標(biāo)，吸光度值為縱坐標(biāo)，繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。以標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算砂仁多糖的糖醛酸含量（μg/mL）。

1.2.2.3 蛋白質(zhì)含量測定 采用考馬斯亮藍(lán)法[14]測定蛋白質(zhì)含量。取1.0 mL的不同濃度的牛血清白蛋白溶液或0.1 mg/mL的多糖溶液或蒸餾水（空白）加入5.0 mL的考馬斯亮藍(lán)溶液混勻，靜置5 min。于595 nm處測定吸光度值。以牛血清白蛋白的溶液濃度（μg/mL）為橫坐標(biāo)，吸光值為縱坐標(biāo)，繪制牛血清白蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線。以標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算砂仁多糖的蛋白質(zhì)含量（μg/mL）。

1.2.3 多糖的單糖組成測定 參考Hu等[15]的方法，稱取2.0 mg凍干的多糖樣品，加入2 mol/L三氟乙酸溶液0.5 mL，在120 °C條件下水解120 min后用氮吹儀吹干。向干燥后的樣品中加入溶于無水甲醇的0.5 mol/L的PMP試劑和0.3 mol/L的NaOH溶液各0.5 mL，充分混勻后置于70 °C水浴反應(yīng)30 min。冷卻至室溫后，加入0.5 mL 0.3 mol/L HCl，混和均勻。加入1.0 mL氯仿，充分振蕩萃取，4800 r/min離心15 min，去除氯仿層，共萃取三次。合并濾液，取水相層，過0.22 μm濾膜后，采用高效液相色譜檢測。單糖標(biāo)準(zhǔn)品無需水解步驟，其他步驟同樣品處理。檢測配置與條件：Agilent 1260型液相色譜儀（配DAD 檢測器）、Thermo ODS-2 C18柱（4.6×250 mm，5 μm）。流動(dòng)相為磷酸鹽緩沖液（0.1 mol/L，pH7.0）與乙腈的混合液（體積比82:18），流速1.0 mL/min，柱溫25 ℃，進(jìn)樣量10 μL，檢測波長245 nm。

1.2.4 多糖的相對分子量測定 采用高效尺寸排阻色譜法對得到的多糖進(jìn)行分子量測定[16]。采用Agilent 1260型液相色譜儀（配 Brookhaven BIDNDC示差檢測器），Agilent PL aquagel-OH系列凝膠過濾色譜柱（7.5×300 mm，8 μm）。流動(dòng)相為超純水（含 0.02% NaN3），流速為 0.5 mL/min，柱溫 30 °C，進(jìn)樣量100 μL。配制1.0 mg/mL多糖溶液或1.0 mg/mL不同分子量（Mw：5、25、50、150、410、670 kDa）的葡聚糖標(biāo)準(zhǔn)品溶液，過0.45 μm水相濾膜后，進(jìn)樣檢測。以葡聚糖分子量標(biāo)準(zhǔn)品的對數(shù)值（lgMw）為縱坐標(biāo)，保留時(shí)間（min）為橫坐標(biāo)，繪制曲線。以標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算砂仁多糖的相對分子量（kDa）。

1.2.5 紅外光譜分析（FTIR） 采用傅里葉變換紅外光譜對多糖的分子結(jié)構(gòu)進(jìn)行分析[17]。取樣品約1.0 mg，置于干燥的瑪瑙研缽中，在紅外燈照射下加入KBr約140 mg，研磨均勻后壓片。用傅立葉紅外光譜儀在400～4000 cm-1區(qū)內(nèi)進(jìn)行掃描，初步分析多糖的官能團(tuán)。

1.2.6 掃描電鏡（SEM）多糖的掃描電鏡分析 取少量的干燥砂仁多糖樣品粘著于樣品臺(tái)上，鍍導(dǎo)電金，采用冷場發(fā)射掃描電鏡在250倍和2000倍下進(jìn)行觀察[18]。

1.2.7 熱重分析（TGA）多糖的熱重分析 采用熱重分析儀對砂仁多糖的熱特性進(jìn)行研究[19]，樣品稱取5.0 mg，測試溫度范圍 30～600 °C，以 10 °C/min 的速率升溫，在固定速率通氮?dú)猸h(huán)境下測定多糖的受熱質(zhì)量變化情況。

1.2.8 X衍射分析（XRD） 采用X衍射儀對多糖的晶體結(jié)構(gòu)進(jìn)行分析[20]。測定范圍為 5°～50°（2θ），步長 0.02°，計(jì)數(shù)時(shí)間 1 s/步。

1.2.9 多糖的抗氧化性指標(biāo)測定

1.2.9.1 DPPH自由基清除能力 參考Gomez-Mejia等[21]方法，將1.0 mL不同濃度多糖溶液（0～2 mg/mL）或抗壞血酸溶液（陽性對照）或乙醇溶液（空白）與1.0 mL 0.2 mmol DPPH（50%乙醇溶解）搖勻，避光孵育30 min后于517 nm處測量吸光值，實(shí)驗(yàn)均平行測定3次，以DPPH自由基清除率表示DPPH自由基清除能力，計(jì)算公式如下：

式中：中Ao為空白吸光度；Ai為樣品或陽性對照吸光度。

1.2.9.2 ABTS+自由基清除能力 參考Deseo等[22]的方法，將 5.0 mL ABTS儲(chǔ)備溶液（7 mmol/L）與5.0 mL K2S2O7溶液（2.45 mmol/L）混合后避光置于4 °C冰箱內(nèi)反應(yīng)12～16 h制備得ABTS溶液。反應(yīng)前將ABTS溶液用磷酸緩沖液（0.1 mol/L，pH7.4）稀釋至 734 nm處吸光度為 0.7±0.02，即 ABTS工作液。取40 μL多糖溶液或抗壞血酸溶液（陽性對照）或乙醇溶液（空白）于96孔板中，加入970 μL ABTS工作液混勻，避光反應(yīng)6 min后用酶標(biāo)儀測定734 nm下吸光度，以ABTS+自由基清除率表示ABTS+自由基清除能力，計(jì)算公式如下：

式中：中Ao為空白吸光度；Ai為樣品或陽性對照吸光度。

1.2.9.3 羥基自由基清除能力 參考Wang等[23]的方法，取1.0 mL不同濃度的多糖溶液或抗壞血酸溶液（陽性對照）或乙醇溶液（空白）置于10 mL試管中，加入1.0 mL FeSO4溶液和1.0 mL水楊酸-乙醇溶液，混勻，加入1.0 mL H2O2溶液，充分混勻，放入37 °C水浴 30 min后，立即在510 nm處測定吸光值，平行三次，以羥基自由基清除率為表示羥基自由基清除能力，計(jì)算公式如下：

式中：中Ao為空白吸光度；A1為樣品或陽性對照吸光度；A2為樣品不加H2O2溶液的吸光度。

1.3 數(shù)據(jù)處理

本實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)均重復(fù)測定三次。采用Excel2019和SPSS25.0統(tǒng)計(jì)分析軟件對實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行處理，結(jié)果表示為平均值±標(biāo)準(zhǔn)偏差。使用Origin 2020軟件對實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行作圖。

2 結(jié)果與分析

2.1 砂仁多糖的得率與化學(xué)組成分析

本實(shí)驗(yàn)在堿性條件下，提取砂仁多糖，經(jīng)脫蛋白處理后，測定其總糖含量、糖醛酸含量和蛋白質(zhì)含量，標(biāo)準(zhǔn)曲線如圖1。測定結(jié)果表明砂仁多糖的提取得率為3.97%±0.31%，總糖含量為 37.10%±1.43%，糖醛酸含量達(dá)到65.66%±2.02%，說明砂仁多糖是一種酸性多糖；蛋白質(zhì)的含量為4.36%±0.71%，表明殘留的蛋白可能是蛋白質(zhì)溶于堿性溶液中，并與單糖結(jié)合，形成難以去除的蛋白質(zhì)[24]。

圖1 砂仁多糖的化學(xué)組成含量測定的標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.1 Standard curve for determination of chemical composition of A.villosum polysaccharide

2.2 單糖組成分析

如圖2液相色譜分析表明，砂仁多糖是一種雜多糖，含甘露糖、鼠李糖、葡萄糖醛酸、半乳糖醛酸、葡萄糖、半乳糖、木糖、阿拉伯糖。其相對摩爾百分比分別為 0.74%、0.71%、8.13%、13.41%、5.31%、14.84%、18.84%、38.02%。其中阿拉伯糖、木糖、半乳糖和半乳糖醛酸構(gòu)成砂仁多糖的主要單糖成分。該結(jié)果與樊亞鳴等[25]研究的春砂仁多糖組成結(jié)果相似，均含有阿拉伯糖、甘露糖、葡萄糖和半乳糖，其他組分的不同可能是因?yàn)樯叭实漠a(chǎn)地和品種的不同。

圖2 砂仁多糖的單糖組成與單糖標(biāo)準(zhǔn)品Fig.2 GC chromatogram of the monosaccharide standards and monosaccharide composition of A.villosum

2.3 多糖相對分子量

如圖3所示，依據(jù)多糖分子量大小Mw的對數(shù)值與保留時(shí)間成線性關(guān)系，繪制不同分子量的葡聚糖標(biāo)準(zhǔn)品的標(biāo)準(zhǔn)曲線：lgMw=-0.6746t+14.35（其中t表示保留時(shí)間），R2=0.9985。依據(jù)響應(yīng)值最大時(shí)的保留時(shí)間，由標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算出砂仁多糖的相對分子量為95.46 kDa。

圖3 砂仁多糖的相對分子量圖Fig.3 Relative molecular weight curves of A.villosum polysaccharide

2.4 紅外光譜分析

根據(jù)紅外光譜吸收峰的位置和強(qiáng)度可判斷多糖的基礎(chǔ)官能團(tuán)。一般來說，多糖的主要特征吸收峰位于 3100～3700 cm-1和 2800～3000 cm-1，前者被認(rèn)為是分子間氫鍵和分子內(nèi)氫鍵引起的O-H伸縮振動(dòng)，后者歸因于游離碳水化合物的C-H不對稱伸縮振動(dòng)[15]。如圖4所示，在1615～1653 cm-1附近的強(qiáng)吸收峰，表明存在羰基的C=O不對稱伸縮振動(dòng)[23]，而在1411～1423 cm-1附近的弱吸收峰則反映了羰基的C-O伸縮振動(dòng)，表明多糖中含有糖醛酸[12]，與砂仁多糖的化學(xué)組成結(jié)果一致。1075～1100 cm-1處的吸收峰，表明主鏈中存在吡喃糖環(huán)[26]。紅外光譜表明砂仁多糖具備碳水化合物典型吸收峰，且存在吡喃糖環(huán)結(jié)構(gòu)。

圖4 砂仁多糖的紅外光譜圖Fig.4 FTIR spectra of A.villosum polysaccharide

2.5 掃描電鏡

SEM圖像提供了砂仁多糖的表面形貌特征。SEM結(jié)果表明（圖5），砂仁多糖的表觀形貌為片狀結(jié)構(gòu)。放大250倍可以看到，多糖形狀不規(guī)則，大多為片狀結(jié)構(gòu)，有少量塊狀存在，碎片形狀并不均一。該結(jié)果與Zhou等[27]研究結(jié)果一致，其觀察到從陽春砂仁中提取的酸性多糖在SEM中呈現(xiàn)片狀的疏松結(jié)構(gòu)。放大2000倍下觀察可見多糖表面粗糙，邊緣不規(guī)則，這可能是凍干時(shí)冰升華。Zhu等[28]研究也發(fā)現(xiàn)，在高倍放大倍數(shù)下，多糖表面呈現(xiàn)不均勻的鱗片結(jié)構(gòu)和少量的凹陷。

圖5 砂仁多糖的掃描電鏡圖Fig.5 SEM images of A.villosum polysaccharide

2.6 熱重分析

由圖6熱重分析曲線可以看出，砂仁多糖在高溫過程中三次主要失重，可大概劃分為40～150 °C、151～400 °C、401～600 °C 三個(gè)階段。第一階段可能為結(jié)晶水的散失[29]，失重率約為4.21%；第二階段可能為碳水化合物長鏈的降解和碎片的解聚，失重率約為30.55%[30]，第三階段質(zhì)量損失減緩，可能是多糖的在進(jìn)一步分解，剩下的多糖的熱穩(wěn)定性較好或者多數(shù)多糖已經(jīng)碳化，從而導(dǎo)致失重緩慢[31]。在600 °C時(shí)剩余質(zhì)量百分比為20.06%。不同來源的植物多糖往往具有相似的熱重分析曲線，但其熱降解溫度和質(zhì)量損失率可能存在差異。張華峰等[31]研究發(fā)現(xiàn)，當(dāng)溫度從248 °C升至350 °C時(shí)，滇黃精多糖的失重率約為58.59%，并將該現(xiàn)象其歸因于多糖分子劇烈的解聚和分解作用。王占一等[32]研究發(fā)現(xiàn)石榴皮多糖在溫度 225.4～327.9 °C內(nèi)質(zhì)量損失率為 46.5%，而以石榴皮多糖與亞硒酸鈉為原料制備石榴皮多糖硒酸酯，其在600 °C前已經(jīng)基本分解完全。由此可知，砂仁多糖具有較好的熱穩(wěn)定性。

圖6 砂仁多糖的熱重分析曲線Fig.6 TGA of A.villosum polysaccharide

2.7 X衍射分析

采用X衍射對砂仁多糖的晶體結(jié)構(gòu)進(jìn)行分析。一般來說，衍射峰的尖窄可以反映晶體結(jié)構(gòu)，衍射寬峰反映的是非晶結(jié)構(gòu)，非晶區(qū)域的分子間鍵弱于晶體區(qū)域的分子間鍵[33]。如圖7所示，XRD結(jié)果表明砂仁多糖在15°～30°之間，有一個(gè)峰寬較寬、強(qiáng)度較大的峰。因此，砂仁多糖的結(jié)晶度較低，屬于低結(jié)晶度材料[34]。此外，半結(jié)晶區(qū)在20.75°。該結(jié)果與Zhu等[28]研究水提醇沉法提取海南砂仁多糖的X衍射的分析結(jié)果一致，均是半結(jié)晶結(jié)構(gòu)。

圖7 砂仁多糖的X-衍射圖Fig.7 XRD of A.villosum polysaccharide

2.8 砂仁多糖的體外抗氧化活性

2.8.1 DPPH自由基清除能力的測定 如圖8a所示，砂仁多糖的DPPH自由基清除率在0～2.0 mg/mL范圍內(nèi)，表現(xiàn)出濃度依賴性，即隨著多糖濃度的升高，其DPPH自由基清除率逐漸升高。在濃度為2.0 mg/mL時(shí)，砂仁多糖的自由基清除能力接近抗壞血酸，自由基清除率達(dá)到96.13%。而Zhang等[35]研究發(fā)現(xiàn)砂仁粗多糖在5.0 mg/mL濃度下，DPPH自由基清除能力為73.5%。本研究的砂仁多糖對DPPH自由基半數(shù)抑制對應(yīng)的濃度（IC50）為0.81 mg/mL，顯示出較好的抗氧化性。

2.8.2 ABTS+自由基清除能力的測定 如圖8b所示，砂仁多糖的ABTS+自由基清除率在在0～2.0 mg/mL范圍內(nèi)，表現(xiàn)出濃度依賴性，即隨著多糖濃度的升高，其ABTS+自由基清除率逐漸升高。砂仁多糖對ABTS+自由基半數(shù)抑制對應(yīng)的濃度（IC50）為0.65 mg/mL?？箟难嵩?.25 mg/mL時(shí)，達(dá)到最大抑制能力，但是在1.0 mg/mL時(shí)，砂仁多糖的自由基清除率達(dá)到了80.95%，清除率較高。相比于其他多糖，如仙人掌皮多糖[36]（在10mg/mL時(shí)，對ABTS+自由基清除率為39.85%），砂仁多糖具有更強(qiáng)的ABTS+自由基清除能力。

圖8 砂仁多糖的體外抗氧化性Fig.8 In vitro antioxidant activities of A.villosum polysaccharide

2.8.3 羥基自由基清除能力的測定 如圖8c所示，隨著砂仁多糖濃度的增加，其羥基自由基的清除率增大。在0.5 mg/mL時(shí)，抗壞血酸的羥基自由基清除率達(dá)到97.65%。同時(shí)，砂仁多糖的羥基自由基清除率隨著濃度的增大而增大，在2.0 mg/mL時(shí)，砂仁多糖的羥基自由基清除率達(dá)到67.22%，對羥基自由基半數(shù)抑制對應(yīng)的濃度（IC50）為1.20 mg/mL。Zhang等[35]研究發(fā)現(xiàn)在5.0 mg/mL濃度下，陽春砂仁粗多糖的羥基自由基清除能力為66.3%，兩者的羥基自由基清除能力相近。綜上，砂仁多糖具有較好的抗氧化能力。

3 結(jié)論

本研究選用海南砂仁為原料，采用堿液浸提法提取多糖，對所得砂仁多糖進(jìn)行理化性質(zhì)、表觀形貌、晶型和熱重分析，并評(píng)價(jià)其體外抗氧化活性，以期為砂仁多糖發(fā)展奠定良好基礎(chǔ)。主要結(jié)論如下：砂仁多糖的提取得率為3.97%，總糖含量為37.10%，糖醛酸含量為65.66%，蛋白質(zhì)的殘留含量為4.36%。砂仁多糖的主要單糖組成為阿拉伯糖、木糖、半乳糖和半乳糖醛酸，其摩爾百分比分別為38.02%、18.84%、14.84%和13.41%，且分子量為95.46 kDa；砂仁多糖是一種低結(jié)晶度、具有吡喃環(huán)、熱穩(wěn)定較好的片狀酸性雜多糖，具備多糖普遍的表觀形貌特征；砂仁多糖的三種體外抗氧化模型研究表明，砂仁多糖對DPPH自由基、ABTS自由基和羥基自由基的半數(shù)抑制對應(yīng)的濃度（IC50）分別為 0.81、0.65和 1.20 mg/mL，具有較好的抗氧化能力。該研究證實(shí)砂仁多糖的抗氧化能力強(qiáng)，可作為天然抗氧化劑，值得更深入的研究其抗氧化機(jī)制，該研究結(jié)果可為砂仁多糖的開發(fā)和利用提供理論應(yīng)用基礎(chǔ)。