溫華強(qiáng)，舒燦偉，曾莉莎，周而勛

（1華南農(nóng)業(yè)大學(xué)植物保護(hù)學(xué)院/廣東省微生物信號(hào)與作物病害防控重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，廣州 510642；2東莞市農(nóng)業(yè)科學(xué)研究中心，廣東 東莞 523086）

0 引言

荷花是一種重要的經(jīng)濟(jì)作物，其地下莖（藕）及種子（蓮子）均可食用，其花具重要的觀賞價(jià)值。中國(guó)荷花栽培歷史悠久，除西藏和青海外，各地均有種植，是世界荷花的栽培中心[1]。近年來，在廣東珠三角的荷花栽培集中區(qū)爆發(fā)了大范圍的荷花腐敗病，嚴(yán)重制約了荷花產(chǎn)業(yè)及旅游業(yè)的發(fā)展[2]。荷花腐敗病又稱腐爛病、枯萎病，是荷花種植區(qū)發(fā)生最嚴(yán)重、最為普遍的病害之一[3]。該病害具有爆發(fā)速度快、破壞性強(qiáng)等特征，在整個(gè)荷花生長(zhǎng)周期內(nèi)均可發(fā)生，如果無有效的防治措施和防治藥物，能夠造成20%的減產(chǎn)，嚴(yán)重的可達(dá)60%以上，甚至絕收[4-5]。2014年，Zhu等[6]鑒定了荸薺枯萎病，認(rèn)為國(guó)內(nèi)的荸薺枯萎病病原菌為普通鐮刀菌(Fusarium commune)及一個(gè)未定名的鐮孢菌(Fusariumsp.)。2016年，Zhu等[7]建立了檢測(cè)土壤及植物組織中荸薺枯萎病菌(F.commune)含量的熒光定量PCR檢測(cè)方法。2017年，曾莉莎等[8]對(duì)廣東、廣西、江西、福建、湖南、湖北等地的荷花腐敗病病原菌進(jìn)行鑒定及系統(tǒng)發(fā)育研究，通過形態(tài)學(xué)和分子鑒定，認(rèn)為普通鐮刀菌(F.commune)是引起荷花腐敗病的病原菌，并且與分離自國(guó)內(nèi)荸薺枯萎病的病原菌為同種。

引起荷花腐敗病的鐮刀菌是一種土壤習(xí)居菌，其菌絲體和厚垣孢子可以在土壤長(zhǎng)期存活，成為來年的再侵染源[9]。荷花為多年生水生植物，荷花腐敗病的發(fā)病程度與水底土壤中的荷花腐敗病菌含量密切相關(guān)。對(duì)此，掌握荷花腐敗病發(fā)生程度和土壤中荷花腐敗病菌的數(shù)量的關(guān)系，將有助于在荷花種植前后有針對(duì)性地防治該病害。然而，傳統(tǒng)的檢測(cè)鐮刀菌的方法，比如平板稀釋法，對(duì)其進(jìn)行分離、形態(tài)學(xué)以及致病性鑒定等，步驟繁瑣、耗時(shí)較長(zhǎng)，當(dāng)病害爆發(fā)時(shí)，由于診斷緩慢，往往延誤最佳防治時(shí)機(jī)，很容易造成嚴(yán)重的損失[10-12]；常規(guī)PCR相對(duì)來說速度較快、特異性高，但檢測(cè)靈敏度仍有待提高[13]；對(duì)土壤中的病原菌進(jìn)行實(shí)時(shí)定量檢測(cè)可為制定科學(xué)的病情防控方案提供更加科學(xué)的依據(jù)[14]。本研究以此為切入點(diǎn)，聯(lián)合東莞市香蕉蔬菜研究所技術(shù)人員對(duì)該病害的發(fā)展動(dòng)態(tài)進(jìn)行監(jiān)測(cè)，旨在研發(fā)一種快速、準(zhǔn)確的定量檢測(cè)荷花腐敗病菌的熒光定量PCR技術(shù)，對(duì)東莞蓮湖的土壤、蓮藕等樣品的荷花腐敗病菌數(shù)量進(jìn)行動(dòng)態(tài)監(jiān)測(cè)，旨在為該病害的有效防治提供重要依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 荷花腐敗病樣品的采集與病原菌分離

從廣東省東莞市橋頭鎮(zhèn)蓮湖的荷花腐敗病發(fā)病區(qū)采集病藕組織，通過常規(guī)分離、培養(yǎng)、純化和鑒定，獲得荷花腐敗病菌(F.commune)純凈菌株，用于本研究的所有實(shí)驗(yàn)。

1.2 荷花腐敗病區(qū)土壤中的荷花腐敗病菌基因組DNA的提取

土壤的基因組DNA使用E.Z.N.A.?Soil DNA kit(Omega Bio-Tek，USA)試劑盒提取。

1.3 荷花腐敗病菌菌絲基因組DNA的提取

將荷花腐敗病菌菌株接種于200 mL的PDB培養(yǎng)基，置于25℃、180 r/min條件下的搖床上培養(yǎng)5～8天。將搖床培養(yǎng)的PDB培養(yǎng)基取出，用抽濾機(jī)抽濾，得到荷花腐敗病菌的菌塊（含菌絲和孢子），用滅菌的濾紙吸干水分，置于-80℃下保存。荷花腐敗病菌DNA的提取使用E.Z.N.A.?High Performance(HP)Fungal DNA Kit(Omega Bio-Tek，USA)試劑盒。

1.4 各種發(fā)病級(jí)別荷花病組織基因組DNA的提取

各種發(fā)病級(jí)別荷花組織基因組DNA的提取使用E.Z.N.A.?High Performance(HP)Plant DNA(Omega Bio-Tek，USA)試劑盒。

1.5 qPCR引物的選用

由于本研究的荷花腐敗病菌與國(guó)內(nèi)報(bào)道的荸薺枯萎病菌均為普通鐮刀菌(F.commune)[8,12]，本研究采用的引物是朱志賢[15]篩選的、對(duì)荸薺枯萎病菌具有高度特異性的一對(duì)引物FO1(5’-GCCATAGGTCAGATAAC CAGTT-3’)和 FO2(5’-TCACTACTGGTGTCAGAAA CGG-3’)，這對(duì)引物由北京擎科新業(yè)生物技術(shù)有限公司合成。

1.6 qPCR標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作及靈敏度檢測(cè)

1.6.1 qPCR擴(kuò)增的體系及使用材料和儀器 實(shí)驗(yàn)的qPCR采用SYBR Green I熒光染料，PCR擴(kuò)增體系為20μL，每份體系包含10.0μL ChamQ Universal SYBR qPCR Master Mix，10 μmol/L（引物工作濃度）的引物各0.4μL（FO1和FO2），1～2μL的DNA模板，加入RNase-free ddH2O至20μL。qPCR擴(kuò)增的條件如下：95℃預(yù)變性 30 s；95℃變性 10 s，60℃延伸 30 s；95℃15 s，60℃ 60 s，95℃ 15 s。進(jìn)行qPCR反應(yīng)所用的儀器是Bio-Rad CFX96TM(Bio-Rad Laboratories，CA)，獲得的數(shù)據(jù)使用Bio-Rad CFX Manager 3.1(admin)軟件進(jìn)行分析

1.6.2 荷花腐敗病菌基因組DNA標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作及靈敏度檢驗(yàn) 將荷花腐敗病菌的基因組DNA稀釋至10 ng/μL，再以10倍濃度梯度稀釋荷花腐敗病菌的基因組DNA，即稀釋后的濃度依次為10 ng/μL、1 ng/μL、100 pg/μL、10 pg/μL、1 pg/μL、100 fg/μL、10 fg/μL、1 fg/μL。運(yùn)行qPCR程序后收集數(shù)據(jù)，根據(jù)Ct值的含義，即每個(gè)反應(yīng)管內(nèi)的熒光信號(hào)到達(dá)設(shè)定的域值時(shí)所經(jīng)歷的循環(huán)數(shù)，認(rèn)為具有Ct值的為陽性樣本，沒有Ct值的是為陰性樣本，靈敏度為與陰性樣本相鄰的最后一個(gè)陽性樣本的濃度值。

1.6.3 加入植物組織DNA后荷花腐敗病菌基因組DNA標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制及靈敏度檢測(cè) 為研究在自然狀態(tài)下，荷花腐敗病菌侵染健康的荷花組織時(shí)，荷花的基因組DNA是否會(huì)對(duì)荷花腐敗病菌DNA的擴(kuò)增造成影響，實(shí)驗(yàn)中提取健康的荷花基因組DNA，稀釋至10 ng/μL，再吸取1μL加入到上述10倍濃度梯度的荷花腐敗病菌的基因組DNA配的20μL qPCR體系中（1μL荷花腐敗病菌的基因組DNA模板和1μL健康的荷花組織基因組DNA）進(jìn)行擴(kuò)增，繪制其標(biāo)準(zhǔn)曲線運(yùn)行qPCR程序后收集數(shù)據(jù)，根據(jù)Ct值的含義，即每個(gè)反應(yīng)管內(nèi)的熒光信號(hào)到達(dá)設(shè)定的域值時(shí)所經(jīng)歷的循環(huán)數(shù)，認(rèn)為具有Ct值的為陽性樣本，沒有Ct值的是為陰性樣本，靈敏度為與陰性樣本相鄰的最后一個(gè)陽性樣本的濃度值。

1.6.4 接種土壤中荷花腐敗病菌標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制及靈敏度檢測(cè) 將荷花腐敗病菌菌株接種于200 mL的PDB培養(yǎng)基，置于25℃、180 r/min條件下的搖床上培養(yǎng)5～8天。準(zhǔn)備滅過菌的紗布，用6層滅過菌的紗布過濾出荷花腐敗病菌的孢子，并將過濾好的孢子懸液轉(zhuǎn)移至15 mL離心管，10000×g離心15 min，用去離子滅菌水重復(fù)洗滌2～4次，至懸液顏色由黃色變?yōu)闊o色（或接近無色）。將分生孢子懸液置于顯微鏡下，利用血球板計(jì)數(shù)法，加入去離子蒸餾水稀釋成4×107、4×106、4×105、4×104、4×103、4×102、4×101、4個(gè)/mL等10倍濃度梯度的孢子懸液。將采自東莞橋頭鎮(zhèn)蓮湖的發(fā)病區(qū)土壤樣本去除雜物，置于干熱滅菌箱中，90℃、5 h滅菌烘干3次至恒重，利用研缽將其磨碎，稱取800 mg的滅菌土壤至15 mL離心管中，依次將一系列濃度梯度的分生孢子懸液取800μL加至上述的15 mL離心管中，以未接種孢子懸液的滅菌土壤作空白對(duì)照，使用E.Z.N.A.?Soil DNA kit(Omega Bio-Tek，USA)試劑盒對(duì)其提取基因組DNA，對(duì)其進(jìn)行qPCR擴(kuò)增和繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線，認(rèn)為具有Ct值的為陽性樣本，沒有Ct值的是為陰性樣本，靈敏度為與陰性樣本相鄰的最后一個(gè)陽性樣本的濃度值。

1.7 不同發(fā)病級(jí)別荷花植株中荷花腐敗病菌的qPCR檢測(cè)

在東莞橋頭蓮湖采集依次為無病、輕度發(fā)病、重度發(fā)病3個(gè)發(fā)病級(jí)別的荷花植株（病情分級(jí)標(biāo)準(zhǔn)由東莞橋頭工作人員制定）各3株，利用隨機(jī)取樣的方法在各種不同的發(fā)病級(jí)別的荷花植株中取3支莖稈，用5%的次氯酸鈉將其浸泡消毒5 min，接著用去離子滅菌水沖洗2～4次，用滅菌的吸水紙吸干表面水分。用滅菌處理過的剪刀依次從3支莖稈中部剪取一小段約100 mg的莖稈組織，提取其基因組DNA，進(jìn)行qPCR擴(kuò)增來檢測(cè)各種發(fā)病級(jí)別的荷花植株中荷花腐敗病菌的含量（根據(jù)測(cè)得的DNA含量計(jì)算），3次平行重復(fù)實(shí)驗(yàn)。各種發(fā)病級(jí)別荷花植株的莖稈中的荷花腐敗病菌基因組DNA含量，是根據(jù)加入10 ng健康荷花組織DNA繪制的10倍濃度梯度的荷花腐敗病菌的基因組DNA的標(biāo)準(zhǔn)曲線獲得。

1.8 不同發(fā)病級(jí)別荷花植株根部土壤中荷花腐敗病菌的qPCR檢測(cè)

從各種發(fā)病級(jí)別的荷花植株的根部土壤處采集3份土壤樣品，每份大約1 kg。先將土壤樣品去除雜質(zhì)，再將其置于干熱滅菌箱中，打開鼓風(fēng)功能，38℃、24 h風(fēng)干。提取處理后的土壤樣品的DNA，再進(jìn)行qPCR擴(kuò)增，得到相應(yīng)的Ct值，根據(jù)接種荷花腐敗病菌的土壤中的荷花腐敗病菌基因組DNA的標(biāo)準(zhǔn)曲線，得到各種發(fā)病級(jí)別荷花植株的根部土壤中荷花腐敗病菌的孢子濃度。

1.9 數(shù)據(jù)分析

每一次的qPCR擴(kuò)增反應(yīng)由Bio-Rad CFX Manager 3.1(admin)軟件計(jì)算分析給出Ct值。10倍濃度梯度的荷花腐敗病菌的基因組DNA的標(biāo)準(zhǔn)曲線、加入植物組織DNA后荷花腐敗病菌基因組DNA的標(biāo)準(zhǔn)曲線和接種荷花腐敗病菌的土壤中的荷花腐敗病菌基因組DNA的標(biāo)準(zhǔn)曲線用Microsoft Excel(office 2016)軟件制作。用SPSS 22.0軟件的協(xié)方差分析檢驗(yàn)，對(duì)是否添加健康荷花組織基因組DNA的一系列濃度梯度的荷花腐敗病菌的基因組DNA制作的2條標(biāo)準(zhǔn)曲線之間的截距，以及斜率是否存在顯著性差異。用相關(guān)分析方法分析各種發(fā)病級(jí)別的荷花植株中包含的荷花腐敗病菌的基因組DNA，以及各種發(fā)病級(jí)別荷花植株的根部土壤中包含的荷花腐敗病菌的基因組DNA與它們的發(fā)病級(jí)別之間的關(guān)聯(lián)。

2 結(jié)果與分析

2.1 qPCR的標(biāo)準(zhǔn)曲線及檢測(cè)靈敏度

用一系列濃度梯度的荷花腐敗病菌基因組DNA進(jìn)行Real-Time PCR反應(yīng)，得到的反應(yīng)曲線如圖1所示。利用Microsoft Excel軟件制作的荷花腐敗病菌基因組DNA的標(biāo)準(zhǔn)曲線（圖2）為Y=-4.2734X+36.892(R2=0.9977)，其中橫坐標(biāo)X表示稀釋的一系列濃度梯度的DNA的濃度的對(duì)數(shù)，縱坐標(biāo)Y表示與每個(gè)DNA濃度X值相對(duì)應(yīng)的Ct值，R2=0.9977表明該標(biāo)準(zhǔn)曲線具有良好的線性關(guān)系。通過對(duì)qPCR擴(kuò)增曲線（圖1）分析可得，qPCR的最低檢測(cè)限度為1 fg/μL。對(duì)該qPCR反應(yīng)的溶解曲線（圖3）進(jìn)行分析，擴(kuò)增的產(chǎn)物僅有一個(gè)峰值(78.5℃)，表明該qPCR擴(kuò)增的DNA產(chǎn)物具有高度的特異性。

圖1 10倍濃度梯度的荷花腐敗病菌基因組DNA的qPCR擴(kuò)增曲線

2.2 加入植物組織DNA后荷花腐敗病菌基因組DNA的標(biāo)準(zhǔn)曲線及檢測(cè)靈敏度

在添加健康荷花組織的基因組DNA后制作的一系列濃度梯度荷花腐敗病菌的DNA標(biāo)準(zhǔn)曲線（圖2）為Y=-3.6419X+34.501(R2=0.9939)。對(duì)添加了健康荷花組織的基因組DNA后的qPCR進(jìn)行最低檢測(cè)限度分析，該qPCR反應(yīng)的最低檢測(cè)限度為10 pg/μL。利用協(xié)方差分析檢驗(yàn)2條標(biāo)準(zhǔn)曲線發(fā)現(xiàn)截距的差異性不顯著(P＞0.05)，但當(dāng)比較斜率時(shí)則發(fā)現(xiàn)2條曲線的差異性顯著(P=0.01＜0.05)。造成以上2條標(biāo)準(zhǔn)曲線之間存在差異的因素在于添加健康的荷花組織的基因組DNA，故采用添加了健康荷花組織的基因組DNA后制成的標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算發(fā)病的荷花組織中的荷花腐敗病菌的DNA含量。

圖2 SYBR Green I PCR擴(kuò)增基因組標(biāo)準(zhǔn)曲線

2.3 接種土壤中荷花腐敗病菌的標(biāo)準(zhǔn)曲線及靈敏度檢測(cè)

提取濃度依次為4×107、4×106、4×105、4×104、4×103、4×102、4×101、4、0 個(gè)分生孢子/(g·土)的基因組DNA進(jìn)行qPCR反應(yīng)，沒有接種孢子的滅菌土壤為對(duì)照組（圖4）。制成的標(biāo)準(zhǔn)曲線中坐標(biāo)軸X表示分生孢子在土壤中的數(shù)目的對(duì)數(shù)，坐標(biāo)軸Y表示其對(duì)應(yīng)的Ct值，兩者的線性關(guān)系為Y=-3.1995X+34.262(R2=0.9911)（圖5）。由圖4可知，當(dāng)分生孢子濃度低于4×102個(gè)分生孢子/(g·土)時(shí)不能被檢測(cè)出來，即最低檢測(cè)限度為4×102個(gè)分生孢子/(g·土)。

圖3 SYBR Green I PCR熔解曲線

圖4 接種土壤的SYBR Green I PCR擴(kuò)增曲線

圖5 接種荷花腐敗病菌的土壤中的荷花腐敗病菌基因組DNA的標(biāo)準(zhǔn)曲線

2.4 各種發(fā)病級(jí)別荷花植株中荷花腐敗病菌含量與病害發(fā)生程度的相關(guān)性

用qPCR方法對(duì)各種發(fā)病級(jí)別的荷花植株中荷花腐敗病菌的含量進(jìn)行了檢測(cè)。數(shù)據(jù)顯示，各種發(fā)病級(jí)別荷花植株樣品中荷花腐敗病菌DNA的含量依次為(0.010±0.003)、(0.0827±0.053)、(1.432±0.439)ng（表1）。其中，2級(jí)的DNA含量為0級(jí)的143.2倍。染病植株中荷花腐敗病菌DNA的含量與其發(fā)病程度呈正相關(guān)，皮爾森相關(guān)系數(shù)為0.927，顯著性（雙尾）為0.044。

2.5 各種發(fā)病級(jí)別植株地下土壤中荷花腐敗病菌含量與病害發(fā)生程度的相關(guān)性

0～2級(jí)發(fā)病級(jí)別植株的地下土壤中荷花腐敗病菌的含量依次為(3.618±2.284)×103、(34.400±12.891)×103、(164.733±54.270)×103個(gè)分生孢子/(g·土)。皮爾斯相關(guān)系數(shù)為0.819，顯著性（雙尾）為0.389，表明發(fā)病的荷花植株地下土壤荷花腐敗病菌的含量與病害發(fā)生程度呈正相關(guān)（相關(guān)度高），但顯著性較低。

3 結(jié)論與討論

隨著人們對(duì)荷花的觀賞需求和食用需求日益增加，荷花產(chǎn)業(yè)發(fā)展前景好。然而，素有“荷花癌癥”之稱的荷花腐敗病卻成了荷花產(chǎn)業(yè)發(fā)展的最大障礙之一，這種土傳性鐮刀菌病害侵染源是病殘?bào)w、病土等攜帶的病菌，包括菌絲體、厚垣孢子等鐮刀菌的越冬形態(tài)。據(jù)報(bào)道，輪作8年的土壤仍有菌絲和孢子能存活下來，并再度侵染健康的植株，所以仍然不能消除該病害的發(fā)生[16]。因此，研發(fā)一種能夠快速、有效地檢測(cè)土壤和罹病組織中荷花腐敗病菌含量的方法，對(duì)于荷花產(chǎn)業(yè)的健康發(fā)展具有重要的指導(dǎo)意義。

本研究利用SYBR Green I qPCR技術(shù)檢測(cè)了感染荷花腐敗病的荷花植株及其地下土壤中含有的荷花腐敗病菌的數(shù)量，其中qPCR方法的最低檢測(cè)限度是1 fg/μL，添加了健康的荷花植株的DNA后最低檢測(cè)限度是10 pg/μL，將分生孢子接種到經(jīng)滅菌處理的土壤后的最低檢測(cè)限度是400個(gè)孢子/(g·土)。存在于植物或土壤中的PCR抑制因子，對(duì)qPCR檢測(cè)具有限制作用[17-18]。相比普通PCR，實(shí)時(shí)熒光定量PCR具有靈敏度高、精確定量、實(shí)時(shí)檢測(cè)擴(kuò)增產(chǎn)物量的變化等諸多優(yōu)點(diǎn)，更加適合用來動(dòng)態(tài)監(jiān)測(cè)荷花腐敗病菌的含量與發(fā)病程度的關(guān)系，分析荷花腐敗病菌的含量與發(fā)病級(jí)別的相關(guān)性。荷花腐敗病的初侵染源是帶菌的種藕和土壤，最初的發(fā)病部位是地下莖部，不易觀察，常失去最佳防治適期[5]。qPCR具有諸多優(yōu)點(diǎn)，能夠在病害發(fā)生的初期進(jìn)行快速檢測(cè)，而傳統(tǒng)的檢測(cè)手段難以做到，故已被廣泛地應(yīng)用于病原物的快速檢測(cè)[19-21]。實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)被廣泛應(yīng)用于土壤中鐮刀菌引起的植物病害的快速診斷，陳利達(dá)等[22]根據(jù)鐮刀菌屬的TEF-1α基因構(gòu)建的qPCR檢測(cè)體系，其靈敏度比常規(guī)PCR高104倍；王瑜等[23]根據(jù)腐皮鐮刀菌(F.solani)的tef 1基因，建立了腐皮鐮刀菌的SYBR Green qPCR檢測(cè)技術(shù)，其對(duì)重組質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)樣品的檢測(cè)靈敏度(1.0×102copies/μL)和穩(wěn)定性（變異系數(shù)0.96%～1.68%）均優(yōu)于常規(guī)PCR。李文學(xué)等[24]根據(jù)GenBank中葡萄霜霉病菌的cox2基因，建立并優(yōu)化qPCR反應(yīng)體系，該體系的檢測(cè)靈敏度是普通PCR檢測(cè)靈敏度的100倍，可達(dá)0.1 pg/μL。 Megan Ceris Matthews 等[25]利 用 SYBR green PCR技術(shù)對(duì)香蕉枯萎病菌(F.oxysporumf.sp.cubense，F(xiàn)oc)進(jìn)行檢測(cè)，結(jié)果表明對(duì)Foc譜系VI、TR4和STR4的qPCR檢測(cè)具有重復(fù)性和可重復(fù)性，其中，LOQ值為10-4～10-3ng/μL，LOD為10-5～10-4ng/μL。

表1 不同病害級(jí)別荷花植株中荷花腐敗病菌DNA的含量及土壤中荷花腐敗病菌的含量

對(duì)各種發(fā)病級(jí)別的荷花地下莖組織及土壤中荷花腐敗病菌的含量與發(fā)病程度進(jìn)行相關(guān)分析，結(jié)果表明，荷花植株中荷花腐敗病菌的數(shù)量與其發(fā)病的程度呈顯著的正相關(guān)，而土壤中荷花腐敗病菌的數(shù)量與發(fā)病的程度相關(guān)性低（無顯著的相關(guān)性），但荷花腐敗病菌的數(shù)量還是隨著病害發(fā)生程度的增加而增加。當(dāng)然，本研究也存在著一些不足，比如病害的分級(jí)偏少、實(shí)驗(yàn)樣本的處理以及qPCR反應(yīng)優(yōu)化問題[26]等。因此，在后續(xù)的研究中，還需要建立明確的荷花腐敗病病害分級(jí)系統(tǒng)，進(jìn)一步分析土壤或植株中病原菌數(shù)量與病害發(fā)生程度的關(guān)系，從而指導(dǎo)荷花腐敗病的防控。綜上所述，本研究建立的qPCR定量檢測(cè)方法是研究此類土傳病害強(qiáng)有力的檢測(cè)手段。