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        佐劑性關(guān)節(jié)炎大鼠炎癥極化、Notch 通路變化及其相關(guān)性分析

        2021-12-07 08:10:10黃傳兵孫廣瀚馬熙檬朱子衡李方澤劉天陽
        關(guān)鍵詞:配體極化外周血

        趙 磊,萬 磊,劉 健,黃傳兵,孫廣瀚,馬熙檬,朱子衡,李 舒,李方澤,劉天陽,劉 磊,李 明

        (1.安徽中醫(yī)藥大學(xué)研究生院,安徽 合肥 230038;2.安徽中醫(yī)藥大學(xué)第一附屬醫(yī)院 風(fēng)濕科,安徽 合肥 230031)

        類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎(rheumatoid arthritis,RA)是一種慢性炎癥性自身免疫性疾病,其特征是活化的促炎免疫細(xì)胞滲入關(guān)節(jié),并伴有多種介質(zhì)的過度產(chǎn)生,導(dǎo)致軟骨破壞和骨侵蝕,是疼痛和生活質(zhì)量損害的主要來源之一[1]。在參與RA 的炎性細(xì)胞中,巨噬細(xì)胞在組織重塑和損傷修復(fù)中起著至關(guān)重要的作用,通過改變代謝狀態(tài)和功能,調(diào)節(jié)炎癥和維持體內(nèi)平衡[2]。各種已知或未知的微環(huán)境信號影響巨噬細(xì)胞,造成巨噬細(xì)胞極化成不同的表型、功能,即M1 型和M2 型巨噬細(xì)胞,就是巨噬細(xì)胞分泌炎癥極化現(xiàn)象[3]。由M1 巨噬細(xì)胞產(chǎn)生的促炎癥細(xì)胞因子和由M2 巨噬細(xì)胞產(chǎn)生的抗炎細(xì)胞因子之間的失衡是RA 進(jìn)展的一個特征[4]。但關(guān)于RA 中巨噬細(xì)胞極化失衡的機(jī)制尚未完全闡明[5]。高度保守的Notch 信號已被認(rèn)為是免疫系統(tǒng)中的一個重要角色,Notch 信號通路協(xié)調(diào)體內(nèi)包括免疫在內(nèi)的許多過程,相當(dāng)多的文獻(xiàn)已經(jīng)證實(shí)了Notch 信號在免疫細(xì)胞發(fā)育和功能中的作用[6]。有報(bào)道顯示Notch 信號通路在RA 發(fā)病機(jī)制中發(fā)揮著作用,并證實(shí)其與RA 的多種發(fā)病過程有關(guān)[7]。研究發(fā)現(xiàn)RA 炎癥極化受Notch 信號通路調(diào)節(jié),而Notch 通路參與RA 炎癥反應(yīng)主要與巨噬細(xì)胞的極化相關(guān)[8,9]。近年來,巨噬細(xì)胞在炎癥中的作用逐漸被揭示,但Notch 信號在巨噬細(xì)胞免疫反應(yīng)中的作用機(jī)制尚不清楚[10]。RA 的發(fā)生發(fā)展可能與Notch 信號通路的異常激活有關(guān),因此,本實(shí)驗(yàn)通過觀察佐劑關(guān)節(jié)炎(adjuvant arthritis,AA)大鼠外周血中M1 巨噬細(xì)胞主要標(biāo)志物CD86、M2 巨噬細(xì)胞主要標(biāo)志物CD206 及Notch通路相關(guān)因子表達(dá)的變化,探討AA 大鼠炎癥極化與Notch 通路之間的關(guān)聯(lián)。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 實(shí)驗(yàn)動物 清潔級SD 雄性大鼠12 只,體質(zhì)量(190±20)g。由安徽醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動物中心提供,動物許可證號:Lscxk(皖)2017-001。本實(shí)驗(yàn)獲得安徽中醫(yī)藥大學(xué)第一附屬醫(yī)院實(shí)驗(yàn)動物倫理委員會的批準(zhǔn),購買后大鼠均飼養(yǎng)于該醫(yī)院實(shí)驗(yàn)動物中心,在符合大鼠喂養(yǎng)環(huán)境下適應(yīng)性喂養(yǎng)1 周后進(jìn)入實(shí)驗(yàn)。

        1.1.2 其他試劑 CD86、CD206 購自天津三箭生物技術(shù)有限公司,貨號分別為sc-20060、sc-58986。弗氏完全佐劑購自美國Sigma 公司。

        1.2 方法

        1.2.1 分組及關(guān)節(jié)炎模型復(fù)制 將12 只清潔級SD雄性大鼠適應(yīng)性喂養(yǎng)1 周后,隨機(jī)均分為正常組、模型,每組6 只。向模型組動物右后足跖皮內(nèi)注射弗氏完全佐劑(0.1 mL/只)以致炎,復(fù)制成佐劑關(guān)節(jié)炎AA 大鼠模型[11]。

        1.2.2 大鼠足跖腫脹度(E)、關(guān)節(jié)炎指數(shù)(AI)的測定 在造模前1 d、致炎后第12 天測量各組大鼠后足跖的容積,計(jì)算各組大鼠足跖腫脹度[12]。足跖腫脹度=(造模后足趾容積?造模前足趾容積)/造模前足趾容積。致炎后第12 天開始觀察并記錄全身病變,并計(jì)算關(guān)節(jié)炎指數(shù)。病變按5 級評分法評價(jià)。無紅腫現(xiàn)象為0 分,小趾關(guān)節(jié)出現(xiàn)紅腫為1 分,趾關(guān)節(jié)和足跖出現(xiàn)腫脹為2 分,踝關(guān)節(jié)以下的足爪發(fā)生腫脹為3 分,包括踝關(guān)節(jié)在內(nèi)的全部足爪發(fā)生腫脹為4 分。

        1.2.3 流式細(xì)胞術(shù)檢測大鼠外周血炎癥極化標(biāo)志物CD86、CD206 的表達(dá) 大鼠新鮮血液100 μL,按每106個細(xì)胞/管分別加入抗鼠M1 型標(biāo)志物(CD86-FITC)、M2 型標(biāo)志物(CD206-FITC)(0.25 μg)/抗鼠。按說明書操作,上EPICS 型流式細(xì)胞儀檢測。用flowJoV10 軟件對流式細(xì)胞圖像進(jìn)行分析,作圖。1.2.4 PCR 檢測外周血Notch 信號通路相關(guān)因子的表達(dá) 根據(jù)GneBank 提供的mRNA 序列,使用Primer Premier 5 軟件設(shè)計(jì)并分析引物,序列見表1。PCR 反應(yīng)體系為50 μL,包括反轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物3 μL,正、反向引物各1 μL 及GoTaqDNA 聚合酶混合液25 μL,水補(bǔ)足至50 μL。反應(yīng)條件為95 ℃預(yù)變性5 min,然后進(jìn)行35 個循環(huán)的反應(yīng)[13,14]。

        表1 Notch 受體及配體引物序列Tab 1 Primer sequence of Notch receptor and ligands

        1.2.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以±s表示,采用SPSS24 統(tǒng)計(jì)軟件分析,組間比較采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn),相關(guān)性分析采用Spearman 分析,P<0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 AA 大鼠E、AI 的變化

        模型組大鼠均造模成功,在造模12 d 后,與正常組比較,模型組大鼠E、AI 顯著高于正常組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),見圖1、表2。

        表2 兩組大鼠足跖腫脹度和關(guān)節(jié)炎指數(shù)的比較(n=6,±s)Tab 2 Comparison of plantar swelling and arthritis index be?tween two groups of rats(n=6,±s)

        表2 兩組大鼠足跖腫脹度和關(guān)節(jié)炎指數(shù)的比較(n=6,±s)Tab 2 Comparison of plantar swelling and arthritis index be?tween two groups of rats(n=6,±s)

        組別正常組模型組t P足趾腫脹度1.36±0.10 1.75±0.10?6.320<0.001關(guān)節(jié)炎指數(shù)0.00±0.00 3.25±0.99?8.087<0.001

        圖1 大鼠關(guān)節(jié)腫脹對比Fig 1 Comparison of joint swelling in rats

        2.2 AA 大鼠外周血中炎癥極化標(biāo)志物的變化

        與正常組相比,模型組大鼠外周血CD86 表達(dá)明顯升高;CD206 表達(dá)降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05 或P<0.01),見表3 及圖2、3。

        圖2 兩組M1 標(biāo)志物比較Fig 2 Comparison of M1 markers between the two groups

        表3 兩組大鼠M1、M2 標(biāo)志物變化比較(n=6,±s)Tab 3 Comparison of the changes of M1 and M2 markers between the two groups of rats(n=6,±s)

        表3 兩組大鼠M1、M2 標(biāo)志物變化比較(n=6,±s)Tab 3 Comparison of the changes of M1 and M2 markers between the two groups of rats(n=6,±s)

        組別正常組模型組t P CD86 0.38±0.29 6.11±4.63?3.025 0.029 CD206 0.46±0.23 0.09±0.05 3.850 0.010

        2.3 AA 大鼠外周血中Notch 通路的變化

        與正常組相比,模型組大鼠Notch2、Notch3、Notch4、Delta1 表達(dá)明顯升高;Notch1、Jagged1、Jagged2 表達(dá)降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05 或P<0.01),見表4。

        表4 各組大鼠外周血中Notch 受體及配體表達(dá)的比較(n=6,±s)Tab 4 Comparison of the expression of Notch receptors and ligands in peripheral blood of rats in each group(n=6,±s)

        表4 各組大鼠外周血中Notch 受體及配體表達(dá)的比較(n=6,±s)Tab 4 Comparison of the expression of Notch receptors and ligands in peripheral blood of rats in each group(n=6,±s)

        組別正常組Notch1 0.73±0.06 Notch2 0.39±0.02 Notch3 0.50±0.05 Notch4 0.38±0.05 Jagged1 0.76±0.10 Jagged2 0.67±0.05 Delta1 0.41±0.05模型組t P 0.40±0.04 11.387<0.001 0.72±0.08?10.108<0.001 0.57±0.03?3.196 0.010 0.56±0.03?7.301<0.001 0.35±0.03 9.365<0.001 0.40±0.01 12.413<0.001 0.77±0.06?11.309<0.001

        圖3 兩組M2 標(biāo)志物比較Fig 3 Comparison of M2 markers between the two groups

        2.4 AA 大鼠炎癥極化標(biāo)志物與Notch 信號通路的相關(guān)性分析

        相關(guān)性分析顯示,CD86、足趾腫脹度及關(guān)節(jié)炎指 數(shù) 與Notch1、Jagged1、Jagged2 呈 負(fù) 相 關(guān)(P<0.05),CD86、足趾腫脹度及關(guān)節(jié)炎指數(shù)與Notch2、Notch4、Delta1 呈 正 相 關(guān)(P<0.05 或P<0.01);CD206 與Notch1、Jagged1、Jagged2 呈正相關(guān)(P<0.01),CD206 與Notch2、Notch4、Delta1 呈 負(fù) 相 關(guān)(P<0.05 或P<0.01),見表5。

        表5 CD86、CD206 與其他指標(biāo)相關(guān)性分析Tab 5 Spearman analysis of the correlation between CD86,CD206 and other indicators

        3 討論

        在RA 滑膜中發(fā)現(xiàn)大量活化的巨噬細(xì)胞是RA的早期標(biāo)志,巨噬細(xì)胞表現(xiàn)出廣泛的促炎、破壞性和重塑特性,這在RA 發(fā)病的急慢性階段有重要貢獻(xiàn)。極化后的M1 型巨噬細(xì)胞高表達(dá)CD86,主要分泌促炎細(xì)胞因子引起關(guān)節(jié)侵蝕,M2 型巨噬細(xì)胞高表達(dá)CD206,通過大量產(chǎn)生抗炎細(xì)胞因子促進(jìn)血管生成、組織重建和修復(fù),在炎癥消退方面發(fā)揮重要作用。在RA 中,M1 巨噬細(xì)胞的比例高于M2 巨噬細(xì)胞,RA 炎癥極化可分泌大量促炎性細(xì)胞因子、趨化因子,激活成纖維細(xì)胞和破骨細(xì)胞,加速機(jī)體炎癥反應(yīng),造成關(guān)節(jié)破壞[15,16]。

        RA 的發(fā)病機(jī)制涉及Notch 信號的激活,Notch信號通路包括4 種受體(Notch1-4)和5 種配體(Delta1、3、4 及Jagged1-2),由于Notch 受體及其配體在結(jié)構(gòu)和親和力方面的不同以及在發(fā)育過程中關(guān)于細(xì)胞類型和時間的獨(dú)特表達(dá)特征,Notch 受體及其配體具有不同的功能差異[17]。Notch 受體與配體結(jié)合后,與下游靶基因轉(zhuǎn)錄因子CBF1/RBP-Jκ 結(jié)合,致巨噬細(xì)胞炎癥極化向M1 型分化,誘導(dǎo)白細(xì)胞介素6、白細(xì)胞介素8、白細(xì)胞介素1β 炎細(xì)胞浸潤,參與RA 炎癥反應(yīng),最終導(dǎo)致滑膜炎癥反應(yīng)增加和骨破 壞[18]。本 研 究 發(fā) 現(xiàn)AA 大 鼠 外 周 血 中Notch2、Notch3、Notch4、Delta1 表達(dá)明顯升高,Notch1、Jagged1、Jagged2 表 達(dá) 降 低。這 與Chiyoko 等[19]研 究 結(jié)果相似。有研究表明,Notch1 信號對破骨細(xì)胞分化有抑制作用,小鼠破骨細(xì)胞前體細(xì)胞中Notch1 的缺失促進(jìn)了破骨細(xì)胞的分化,而Jagged1 的過表達(dá)抑制了破骨細(xì)胞的生成,提示Notch1、Jagged1 在破骨細(xì)胞生成中起抑制作用,能夠延緩RA 的發(fā)生發(fā)展。Delta1 通過Notch2 發(fā)出信號來促進(jìn)破骨細(xì)胞的生成,Notch3 可誘導(dǎo)成骨細(xì)胞和成骨細(xì)胞核因子κB受體活化因子配體的表達(dá),活動期RA 患者輔助性T 細(xì)胞中Notch2、Notch3 和Notch4 的表達(dá)增加,誘導(dǎo) 破 骨 細(xì) 胞 分 化,從 而 促 進(jìn)RA 的 發(fā) 生 發(fā) 展[20,21]。本研究結(jié)果顯示,通過相關(guān)性分析發(fā)現(xiàn)炎癥極化M1 標(biāo) 志 物CD86 與Notch1、Jagged1、Jagged2 呈 負(fù)相關(guān),與Notch2、Notch4、Delta1 呈正相關(guān);M2 標(biāo)志物CD206 與Notch1、Jagged1、Jagged2 呈正相關(guān),與Notch2、Notch4、Delta1 呈負(fù)相關(guān)。研究結(jié)果表明,CD86 能促進(jìn)AA 大鼠足趾腫脹度及關(guān)節(jié)炎指數(shù),促進(jìn)體內(nèi)炎癥反應(yīng),而CD206 則與之相反。說明Notch 信號通路及巨噬細(xì)胞炎癥極化過程均參與了RA 發(fā)生發(fā)展的過程,Notch 信號通路不同受體和配體間發(fā)揮不同的作用,與炎癥極化相互作用,調(diào)節(jié)體內(nèi)炎癥反應(yīng)。

        綜上所述,Notch 信號通路可以通過調(diào)控巨噬細(xì)胞向M1 型極化,從而參與RA 發(fā)生發(fā)展的過程。

        作者貢獻(xiàn)度說明:

        趙磊:進(jìn)行試驗(yàn)、分析數(shù)據(jù)、撰寫論文;萬磊:設(shè)計(jì)試驗(yàn),并對論文提出指導(dǎo)意見;李方澤協(xié)助手術(shù)操作及標(biāo)本采集;劉健、黃傳兵、劉天陽、劉磊、李明:參與實(shí)驗(yàn)內(nèi)容及收集數(shù)據(jù)。

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