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        聚球藻對酚酸類化感物質(zhì)的生長和生理響應

        2021-11-02 11:40:50劉吉祥劉芳宇孫林鶴徐迎春常雅軍姚東瑞
        植物資源與環(huán)境學報 2021年5期
        關(guān)鍵詞:生長

        劉吉祥, 劉芳宇, 孫林鶴, 崔 鍵, 徐迎春, 常雅軍,①, 姚東瑞,①

        〔1. 江蘇省中國科學院植物研究所(南京中山植物園): a. 江蘇省水生植物資源與水環(huán)境修復工程研究中心,b. 江蘇省植物資源研究與利用重點實驗室, 江蘇 南京 210014; 2. 南京農(nóng)業(yè)大學園藝學院, 江蘇 南京 210095〕

        化感物質(zhì)是次生代謝產(chǎn)物,分子量較小,結(jié)構(gòu)相對簡單,在自然環(huán)境中易降解,生態(tài)安全性較好[1]。植物化感物質(zhì)對藻類具有生長抑制效應[2],植物化感抑藻技術(shù)是生態(tài)安全、環(huán)境友好的控藻技術(shù)[3-5]。近年來,化感作用是農(nóng)業(yè)、環(huán)境科學和生態(tài)領(lǐng)域的研究熱點之一[6]。目前已發(fā)現(xiàn)植物化感物質(zhì)20余種,其中酚酸類化感物質(zhì)的化感作用較強[7-8]。穗狀狐尾藻(MyriophyllumspicatumLinn.)中的兒茶酚、五倍子酸、鞣花酸和鄰苯三酚等可同時抑制銅綠微囊藻(MicrocystisaeruginosaKützing)和斜生柵藻〔Scenedesmusobliquus(Turpin) Kützing〕生長[9-11];苦草(VallisneriaspiralisLinn.)中的苯甲酸、阿魏酸和咖啡酸等可顯著抑制銅綠微囊藻生長[2,12-13];0.6 mmol·L-1羥基苯甲酸和1.0 mmol·L-1阿魏酸可顯著抑制水華魚腥藻〔Anabaenaflosflos-aquae(Lyngb.) de Breb.〕和蛋白核小球藻(ChlorellapyrenoidosaChick)生長[14];水楊酸對銅綠微囊藻和蛋白核小球藻的混合體系有生長抑制效應,半致死濃度為64.90 mg·L-1[15];0.6 mmol·L-1水楊酸對水華魚腥藻的生長抑制效應最佳[16]。

        酚酸類化感物質(zhì)對藍藻的生長抑制作用及藍藻的生理生化響應與酚酸類化感物質(zhì)和藍藻的種類相關(guān)。酚酸類化感物質(zhì)對藍藻的化感抑制機制主要包括:1)對藍藻細胞膜的影響與破壞,如對羥基苯甲酸會造成銅綠微囊藻細胞膜的破裂和溶解[17];2)對藍藻細胞光系統(tǒng)的影響與損壞,如鄰苯二酚會對銅綠微囊藻的PSⅡ活性造成持續(xù)的、不可恢復的破壞[18];3)影響藍藻細胞抗氧化酶活性,如在酚酸類化感物質(zhì)脅迫下,藻類的抗氧化酶活性隨活性氧濃度的增加呈現(xiàn)先升高后降低的趨勢[14,19];4)調(diào)控藍藻生長發(fā)育相關(guān)基因的表達[20]。聚球藻作為海洋和淡水藍藻中最主要的代表性類群之一[21],其結(jié)構(gòu)簡單,遺傳多樣性和生態(tài)型豐富,是微型生物生態(tài)學研究的模式種,且聚球藻基因組信息公布較早,具有成熟的遺傳轉(zhuǎn)化體系,在生理生化和分子生物學方面的背景信息較為清楚,是藍藻模式種中的優(yōu)勢種[22-23],可作為化感物質(zhì)抑藻分子機制研究的良好材料。

        本研究選取常見的酚酸類化感物質(zhì)苯甲酸、水楊酸和阿魏酸為抑制劑,研究這3種酚酸類化感物質(zhì)對聚球藻的抑制效應,分析聚球藻在細胞形態(tài)、光系統(tǒng)及抗氧化酶活性等方面的響應機制,以期明確酚酸類化感物質(zhì)抑制聚球藻生長的生理生化機制,為酚酸類化感物質(zhì)抑藻的分子機制研究提供理論依據(jù)。

        1 材料和方法

        1.1 材料

        聚球藻Synechococcussp. PCC7942購自中國科學院淡水藻種庫,編號為FACHB-805。供試藻種采用pH (7.0±0.1)的BG-11培養(yǎng)基[21]培養(yǎng),培養(yǎng)條件為溫度(25±1) ℃、光照度4 000 lx、光照時間12 h·d-1;每天搖動培養(yǎng)瓶1~2次,每7~10 d轉(zhuǎn)接1次。

        苯甲酸、水楊酸和阿魏酸均為分析純,購自阿拉丁試劑(上海)有限公司。

        1.2 方法

        1.2.1 實驗設計 將苯甲酸、水楊酸和阿魏酸分別用BG-11培養(yǎng)基配置成500 mg·L-1母液,于121 ℃高壓滅菌30 min,現(xiàn)配現(xiàn)用。取處于對數(shù)生長期的聚球藻藻液10 mL,分別加入上述3種化感物質(zhì)的母液至500 mL,聚球藻細胞濃度為1×104~1×105mL-1,苯甲酸和水楊酸的濃度分別為25、30、35和40 mg·L-1,阿魏酸的濃度分別為30、40、50和60 mg·L-1。對照為500 mL 不添加酚酸類化感物質(zhì)的BG-11培養(yǎng)基。每組3個重復,置于光照培養(yǎng)箱,培養(yǎng)條件同“1.1”,培養(yǎng)周期9 d,定時測定相關(guān)指標。

        1.2.2 指標測定

        1.2.2.1 細胞密度測定 每天9:00將聚球藻培養(yǎng)液搖勻后,各處理取5 mL,使用UV-1600紫外分光光度計(上海美譜達儀器有限公司)于波長680 nm處測定其吸光值(A),即為細胞密度,以BG-11培養(yǎng)基作空白對照。

        1.2.2.2 細胞形態(tài)觀測 實驗結(jié)束當天(處理9 d),各取一定量的聚球藻培養(yǎng)液于室溫、4 000 r·min-1離心10 min,去除上清液,收集濃縮藻細胞,然后加入磷酸緩沖液(pH 7.0)配置的體積分數(shù)2.5%戊二醛溶液固定藻細胞[24],置于4 ℃冰箱,每7 d更換1次固定液。采用K850臨界點干燥儀(英國Quorum公司)干燥后,在Quanta 200環(huán)境掃描電子顯微鏡(美國FEI公司)下觀測聚球藻的細胞形態(tài)。

        1.2.2.3 葉綠素a含量測定 分別于處理0、3、6和9 d取各處理搖勻的聚球藻培養(yǎng)液10 mL,于室溫、4 000 r·min-1離心10 min,去除上清液,沉淀用液氮速凍后研磨破碎,加入等體積無水乙醇[25],混合均勻,靜置至葉綠素萃取充分,然后于室溫、4 000 r·min-1離心10 min。使用分光光度計分別于波長665和649 nm處測定上清液的吸光值,以無水乙醇為空白對照,根據(jù)公式“葉綠素a含量=13.90A665-5.76A649”計算葉綠素a含量。

        1.2.2.4 部分葉綠素熒光參數(shù)測定 分別于處理0、3、6和9 d取各處理搖勻的聚球藻培養(yǎng)液20 mL,暗適應20 min后,利用FluorPen手持式葉綠素熒光儀(北京易科泰生態(tài)技術(shù)有限公司)測定聚球藻初始熒光(Fo)和PSⅡ最大光化學效率(Fv/Fm)。

        1.2.2.5 抗氧化酶活性測定 參照文獻[26],于實驗結(jié)束當天(處理9 d),取數(shù)份50 mL聚球藻培養(yǎng)液,于室溫、4 000 r·min-1離心10 min,去除上清液,收集沉淀。用1 mL 0.05 mol·L-1磷酸緩沖液(pH 7.0)在冰浴中研磨為勻漿,使用D3024R高速冷凍離心機(美國Scilogex公司)于4 ℃、4 000 r·min-1離心10 min,獲得聚球藻粗酶提取液。聚球藻的超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化物酶(POD)和過氧化氫酶(CAT)活性分別按照SOD試劑盒A001-1-2、POD試劑盒A084-3-1和CAT可見光試劑盒A007-1-1(南京建成生物工程研究所)的方法測定。

        1.3 數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析

        采用WPS Office 2019軟件和Origin 2018軟件進行數(shù)據(jù)處理和圖表繪制,采用SPSS 26.0軟件進行單因素方差分析及顯著性分析(P<0.05)。

        聚球藻生長抑制率(IR)計算公式為IR=(1-N/N0)×100%。式中,N為處理組聚球藻細胞密度(以A680表示),N0為同一處理時間對照組的聚球藻細胞密度[27]。

        2 結(jié)果和分析

        2.1 不同濃度酚酸類化感物質(zhì)處理下聚球藻的生長及細胞形態(tài)響應

        2.1.1 對生長的影響 不同濃度酚酸類化感物質(zhì)處理下聚球藻的生長響應見圖1,對聚球藻生長的抑制率見表1。結(jié)果顯示:與對照(不添加酚酸類化感物質(zhì))相比,隨著處理時間的延長,25 mg·L-1苯甲酸對聚球藻的生長呈現(xiàn)先抑制后促進效應;30 mg·L-1苯甲酸對聚球藻的生長呈現(xiàn)明顯的抑制效應,處理9 d,抑制率為33.99%;35和40 mg·L-1苯甲酸處理8 d,聚球藻的生長基本處于被阻止狀態(tài),而處理9 d,35 mg·L-1苯甲酸處理組的聚球藻出現(xiàn)生長恢復現(xiàn)象,40 mg·L-1苯甲酸處理組的聚球藻細胞出現(xiàn)衰亡現(xiàn)象。

        與對照相比,25~40 mg·L-1水楊酸對聚球藻的生長呈現(xiàn)明顯抑制效應,其中,30~40 mg·L-1水楊酸對聚球藻的生長抑制效應加劇,處理8 d,抑制率在70%左右,處理9 d,30 mg·L-1水楊酸處理組的聚球藻出現(xiàn)生長恢復現(xiàn)象,而35和40 mg·L-1水楊酸處理組的聚球藻細胞出現(xiàn)衰亡現(xiàn)象。說明水楊酸對聚球藻的抑制效應隨其濃度升高而增強,處理9 d,25、30、35和40 mg·L-1水楊酸對聚球藻生長的抑制率分別為34.27%、66.01%、85.39%和83.43%。

        與對照相比,30和40 mg·L-1阿魏酸明顯促進聚球藻生長,而50和60 mg·L-1阿魏酸處理前8 d,聚球藻的生長基本被阻止,二者的抑制率在75%左右;50 mg·L-1阿魏酸處理9 d,聚球藻出現(xiàn)生長恢復現(xiàn)象。

        比較3種酚酸類化感物質(zhì)對聚球藻生長的抑制率,處理9 d,25 mg·L-1水楊酸對聚球藻生長的抑制率為34.26%,而25 mg·L-1苯甲酸對聚球藻生長還有一定的促進作用,說明水楊酸對聚球藻的抑制效果優(yōu)于苯甲酸,但40 mg·L-1苯甲酸和水楊酸對聚球藻生長的抑制率均達到85%左右;而30和40 mg·L-1阿魏酸明顯促進聚球藻生長。另外,苯甲酸和阿魏酸對聚球藻的生長均呈現(xiàn)低促高抑現(xiàn)象。

        表1 不同濃度酚酸類化感物質(zhì)處理下聚球藻生長的抑制率

        2.1.2 對細胞形態(tài)的影響 不同濃度酚酸類化感物質(zhì)處理下聚球藻的細胞形態(tài)響應見圖2。結(jié)果顯示:對照組聚球藻分裂旺盛、生長正常,分布相對均勻,細胞個體分明、表面光滑,形態(tài)完整。25 mg·L-1苯甲酸以及30和40 mg·L-1阿魏酸處理組的聚球藻細胞形態(tài)與對照組基本一致;30和35 mg·L-1苯甲酸抑制聚球藻的細胞生長,40 mg·L-1苯甲酸阻止聚球藻的細胞生長,基本抑制細胞分裂,細胞分布不均、凹陷明顯,胞外出現(xiàn)大量絮狀分泌物和內(nèi)容物,部分細胞出現(xiàn)抱團聚集現(xiàn)象,且隨濃度升高抱團聚集現(xiàn)象越明顯。25和30 mg·L-1水楊酸抑制聚球藻細胞生長,細胞分裂相對減少,細胞表面出現(xiàn)皺縮和凹陷,存在少量胞外分泌物;35和40 mg·L-1水楊酸以及50和60 mg·L-1阿魏酸阻止聚球藻細胞生長,細胞分裂更少、分布不均,胞外出現(xiàn)大量的絮狀分泌物和內(nèi)容物,且50 mg·L-1阿魏酸導致聚球藻細胞破裂,細胞出現(xiàn)板結(jié)和凝聚現(xiàn)象??傮w上看,上述3種酚酸類化感物質(zhì)的濃度范圍內(nèi),聚球藻細胞形態(tài)受影響程度隨3種酚酸類化感物質(zhì)濃度的升高而加劇。在酚酸類化感物質(zhì)的作用下,隨處理濃度的升高,聚球藻的細胞膜會逐漸出現(xiàn)皺縮、破損,細胞膜結(jié)構(gòu)的破壞和功能的喪失,內(nèi)容物大量外滲以及細胞黏連出現(xiàn)凝聚成團和板結(jié)等現(xiàn)象,最終細胞死亡。

        A1,A2,A3,A4: 分別為25、30、35和40 mg·L-1苯甲酸處理25, 30, 35, and 40 mg·L-1 benzoic acid treatments, respectively; B1,B2,B3,B4: 分別為25、30、35和40 mg·L-1水楊酸處理25, 30, 35, and 40 mg·L-1 salicylic acid treatments, respectively; C1,C2,C3,C4: 分別為30、40、50和60 mg·L-1阿魏酸處理30, 40, 50, and 60 mg·L-1 ferulic acid treatments, respectively; D1,D2,D3: 對照(不添加酚酸類化感物質(zhì))The control (not adding phenolic acid allelochemicals).

        2.2 不同濃度酚酸類化感物質(zhì)處理下聚球藻的生理響應

        2.2.1 對葉綠素a含量的影響 不同濃度酚酸類化感物質(zhì)對聚球藻葉綠素a含量的影響見表2。結(jié)果顯示:與對照(不添加酚酸類化感物質(zhì))相比,25 mg·L-1苯甲酸處理3 d,聚球藻葉綠素a含量顯著降低,處理6和9 d,葉綠素a含量明顯升高;30、35和40 mg·L-1苯甲酸處理3~9 d,葉綠素a含量總體上顯著降低,處理9 d,葉綠素a含量分別為0.589 5、0.168 8和0.014 4 μg·mL-1,分別為對照的79.31%、22.71%和1.94%,苯甲酸濃度在30 mg·L-1及以上時,聚球藻葉綠素a含量隨苯甲酸濃度升高而降低。隨著處理時間的延長,25 mg·L-1苯甲酸處理葉綠素a含量的變化趨勢與對照一致,呈逐漸升高的趨勢,30和35 mg·L-1苯甲酸處理的葉綠素a含量呈先降低后升高的趨勢。

        與對照相比,25、30、35和40 mg·L-1水楊酸處理聚球藻葉綠素a含量顯著降低,處理9 d,葉綠素a含量分別為對照的77.40%、28.36%、3.62%和1.33%。隨著處理時間的延長,25、30和35 mg·L-1水楊酸處理的葉綠素a含量呈先降低后升高的趨勢,40 mg·L-1水楊酸處理的葉綠素a含量總體呈降低的趨勢。

        與對照相比,30和40 mg·L-1阿魏酸處理6和9 d,聚球藻葉綠素a含量顯著升高,而50和60 mg·L-1阿魏酸處理3~9 d,葉綠素a含量顯著降低,處理9 d時葉綠素a含量僅為對照的29.99%和9.51%,與阿魏酸對聚球藻生長的影響呈低促高抑的趨勢一致。隨著處理時間的延長,30和40 mg·L-1阿魏酸處理的葉綠素a含量呈逐漸升高的趨勢;50 mg·L-1阿魏酸處理的葉綠素a含量在處理0~6 d基本穩(wěn)定,在處理9 d明顯升高;60 mg·L-1阿魏酸處理的葉綠素a含量呈先降低后升高的趨勢。

        25 mg·L-1水楊酸處理的聚球藻葉綠素a含量顯著低于對照,而同一濃度苯甲酸處理6和9 d時葉綠素a含量高于對照;40 mg·L-1苯甲酸和水楊酸處理9 d,葉綠素a含量均僅為對照的1.5%左右,而30和40 mg·L-1阿魏酸處理6和9 d,葉綠素a含量顯著升高??傮w上看,在不同濃度和不同種類的酚酸類化感物質(zhì)處理下,聚球藻葉綠素a含量的變化趨勢與其生長響應相似,且水楊酸對聚球藻葉綠素a含量的抑制作用最好,苯甲酸次之,阿魏酸最差。

        2.2.2 對初始熒光(Fo)的影響 不同濃度酚酸類化感物質(zhì)對聚球藻Fo值的影響見表3。結(jié)果顯示:25 mg·L-1苯甲酸處理3 d,聚球藻的Fo值較對照顯著降低,處理6和9 d,F(xiàn)o值較對照升高,但差異不顯著;與對照相比,苯甲酸濃度在30 mg·L-1及以上時,聚球藻的Fo值總體隨著苯甲酸濃度升高而顯著降低。隨著處理時間延長,25和30 mg·L-1苯甲酸處理Fo值的變化趨勢與對照一致,呈逐漸升高的趨勢,35和40 mg·L-1苯甲酸處理的Fo值呈“升高—降低—升高”的波動變化。

        與對照相比,25~40 mg·L-1水楊酸處理聚球藻的Fo值顯著降低,且隨水楊酸濃度的升高,處理3 d時Fo值先升高后降低,處理6和9 d時Fo值逐漸降低。隨著處理時間延長,25 mg·L-1水楊酸處理的Fo值呈逐漸升高的趨勢,30、35和40 mg·L-1水楊酸處理的Fo值呈“升高—降低—升高”的波動變化。

        表2 不同濃度酚酸類化感物質(zhì)對聚球藻葉綠素a含量的影響

        與對照相比,低濃度(30和40 mg·L-1)阿魏酸處理聚球藻的Fo值升高,但總體差異不顯著,而高濃度(50和60 mg·L-1)阿魏酸處理的Fo值顯著降低。隨著處理時間延長,30、40和50 mg·L-1阿魏酸處理的Fo值基本呈升高的趨勢,60 mg·L-1阿魏酸處理的Fo值呈“升高—降低—升高”的波動變化,其中,處理9 d,F(xiàn)o值有一定程度的恢復,這可能與聚球藻細胞的生長阻止效應被解除有關(guān)。

        比較3種酚酸類化感物質(zhì)的抑制效應發(fā)現(xiàn),25、30和35 mg·L-1水楊酸處理9 d,聚球藻的Fo值均低于同濃度苯甲酸,僅在濃度為40 mg·L-1時,2個處理的Fo值均降低至190左右,說明水楊酸對聚球藻Fo值的抑制效應較苯甲酸更強;與對照相比,阿魏酸對聚球藻Fo值的影響仍呈現(xiàn)低促高抑現(xiàn)象。不同濃度的3種酚酸類化感物質(zhì)對聚球藻Fo值的影響與聚球藻的生長響應和葉綠素a含量變化一致。

        2.2.3 對PSⅡ最大光化學效率(Fv/Fm)的影響 不同濃度酚酸類化感物質(zhì)對聚球藻Fv/Fm值的影響見表3。結(jié)果顯示:與對照相比,25~40 mg·L-1苯甲酸處理聚球藻的Fv/Fm值總體上顯著降低,且苯甲酸濃度越高,F(xiàn)v/Fm值降幅越大。隨著處理時間延長,25、30和35 mg·L-1苯甲酸處理的Fv/Fm值總體呈先降低后升高的趨勢,說明這3個苯甲酸處理可抑制聚球藻光系統(tǒng)活性,但處理后期抑制效果減弱;而40 mg·L-1苯甲酸處理9 d時Fv/Fm值降為0。

        25 mg·L-1水楊酸處理3 d,聚球藻的Fv/Fm值與對照相同,處理6和9 d,F(xiàn)v/Fm值較對照有所降低,但差異不顯著;與對照相比,30、35和40 mg·L-1水楊酸處理的Fv/Fm值顯著降低,且水楊酸濃度越高,F(xiàn)v/Fm值降幅越大。隨著處理時間延長,25 mg·L-1水楊酸處理的Fv/Fm值一直在0.23左右,30 mg·L-1水楊酸處理的Fv/Fm值呈先降低后升高的趨勢,而35和40 mg·L-1水楊酸處理的Fv/Fm值持續(xù)下降。

        與對照相比,30和40 mg·L-1阿魏酸處理聚球藻的Fv/Fm值無顯著變化,而50和60 mg·L-1阿魏酸處理的Fv/Fm值顯著降低。隨著處理時間延長,30和40 mg·L-1水楊酸處理的Fv/Fm值一直在0.24左右,50和60 mg·L-1阿魏酸處理的Fv/Fm值總體呈下降趨勢。

        表3 不同濃度酚酸類化感物質(zhì)對聚球藻初始熒光(Fo)和PSⅡ最大光化學效率(Fv/Fm)的影響

        比較3種酚酸類化感物質(zhì)對聚球藻Fv/Fm值的影響發(fā)現(xiàn),處理9 d,40 mg·L-1苯甲酸和水楊酸處理聚球藻的Fv/Fm值均降至0,25、30和35 mg·L-1水楊酸處理的Fv/Fm值低于同一濃度苯甲酸處理,而低濃度阿魏酸處理的Fv/Fm值無顯著變化,高濃度阿魏酸處理的Fv/Fm值顯著降低,說明水楊酸的抑制效果最佳,苯甲酸次之,阿魏酸最差。總體而言,高濃度酚酸類化感物質(zhì)均可顯著降低聚球藻的Fv/Fm值,甚至降為0,但促進聚球藻生長的低濃度阿魏酸并未增加其Fv/Fm值。

        2.2.4 對抗氧化酶活性的影響 由于高濃度酚酸類化感物質(zhì)阻止聚球藻生長,聚球藻細胞的抗氧化酶活性無法測定,故只在促進和抑制聚球藻生長的濃度范圍內(nèi)研究酚酸類化感物質(zhì)處理9 d時聚球藻的抗氧化酶活性。結(jié)果(表4)顯示:25、30和35 mg·L-1苯甲酸處理聚球藻的超氧化物歧化酶(SOD)活性均高于對照,且隨濃度升高SOD活性逐漸下降,其中,25 mg·L-1苯甲酸處理的SOD活性較對照升高53.83%,差異達顯著水平。25 mg·L-1水楊酸處理的SOD活性顯著高于對照,30 mg·L-1水楊酸處理的SOD活性低于對照,但差異不顯著。30、40和50 mg·L-1阿魏酸處理的SOD活性高于對照,且SOD活性隨阿魏酸濃度的升高而升高,分別較對照升高13.33%、49.58%和61.93%。說明同一濃度水楊酸處理對聚球藻SOD活性的影響較苯甲酸更強,且二者均強于阿魏酸。

        聚球藻的過氧化物酶(POD)活性隨苯甲酸濃度升高而升高,但低濃度(25和30 mg·L-1)苯甲酸處理聚球藻的POD活性與對照差異不顯著,而35 mg·L-1苯甲酸處理的POD活性較對照升高24.29%,二者間差異顯著。25 mg·L-1水楊酸處理的POD活性高于對照,而30 mg·L-1水楊酸處理的POD活性低于對照,但差異均不顯著。隨阿魏酸濃度升高,聚球藻的POD活性逐漸升高,且40和50 mg·L-1阿魏酸處理的POD活性顯著高于對照。

        聚球藻的過氧化氫酶(CAT)活性隨苯甲酸濃度升高而升高,且30和35 mg·L-1苯甲酸處理的CAT活性顯著高于對照。25 mg·L-1水楊酸處理的CAT活性較對照顯著升高,30 mg·L-1水楊酸處理的CAT活性與對照差異不顯著,與不同濃度水楊酸處理下聚球藻SOD和POD活性的變化趨勢相似。不同濃度阿魏酸處理的CAT活性基本隨其濃度的升高而升高,與SOD和POD活性變化相似,40和50 mg·L-1阿魏酸處理的CAT活性分別較對照升高55.10%和54.78%,且差異達顯著水平。

        比較3種酚酸類化感物質(zhì)對聚球藻SOD、POD和CAT活性的影響發(fā)現(xiàn),25 mg·L-1水楊酸處理聚球藻的3種抗氧化酶活性均高于同一濃度苯甲酸處理,30 mg·L-1水楊酸處理的3種抗氧化酶活性低于同一濃度苯甲酸處理。阿魏酸處理下聚球藻的3種抗氧化酶活性總體上隨其濃度升高而升高。說明3種酚酸類化感物質(zhì)對聚球藻抗氧化酶活性的影響仍表現(xiàn)為水楊酸最大,苯甲酸次之,阿魏酸最小,與酚酸類化感物質(zhì)對聚球藻葉綠素a含量、Fo值和Fv/Fm值的影響以及聚球藻的生長響應相一致。

        對3種酚酸類化感物質(zhì)濃度與聚球藻細胞密度、葉綠素a含量、Fo值和Fv/Fm值進行曲線擬合,由于酚酸類化感物質(zhì)對聚球藻的生長存在低促高抑的現(xiàn)象,故采用二項式進行曲線擬合。結(jié)果(表5)顯示:3種酚酸類化感物質(zhì)與聚球藻的上述指標間均存在較高的濃度依賴關(guān)系,R2值均在0.8以上,其中水楊酸濃度與細胞密度的曲線方程斜率較小,表明低濃度水楊酸對聚球藻生長的促進效果較弱。

        表4 不同濃度酚酸類化感物質(zhì)對聚球藻抗氧化酶活性的影響

        表5 不同酚酸類化感物質(zhì)濃度與聚球藻部分生理指標的曲線擬合

        3 討 論

        本研究中,隨著處理時間的延長,25 mg·L-1苯甲酸對聚球藻的生長呈現(xiàn)先抑制后促進效應,而30 mg·L-1苯甲酸則顯著抑制聚球藻生長;當苯甲酸濃度為35和40 mg·L-1時,可基本阻止聚球藻的生長。當水楊酸濃度為25~40 mg·L-1時,均抑制聚球藻細胞生長,且抑制效應隨水楊酸濃度的升高而增強。聚球藻對阿魏酸的響應濃度較高,在30和40 mg·L-1濃度下聚球藻的生長被明顯促進,而在50和60 mg·L-1濃度下其生長基本被阻止,體現(xiàn)為低促高抑現(xiàn)象,這與張庭廷等[14]對水華魚腥藻和蛋白核小球藻的研究結(jié)果相似。3種酚酸類化感物質(zhì)的抑藻效果由高至低依次為水楊酸、苯甲酸、阿魏酸。較低濃度的苯甲酸(25 mg·L-1)和阿魏酸(30和40 mg·L-1)可促進聚球藻的生長,可能是因為這2種酚酸類化感物質(zhì)在低濃度下會與藻類的興奮受體結(jié)合,促進藻細胞生長[28],還可能是低濃度酚酸類化感物質(zhì)通過增加酶活性增加了細胞膜的滲透性,藻細胞更容易吸收營養(yǎng)物質(zhì)[29]。通常認為,酚酸類物質(zhì)的自氧化是其化感作用的主要機制之一,酚酸類物質(zhì)自氧化會產(chǎn)生H2O2和醌,H2O2會造成藻細胞膜脂質(zhì)過氧化,而醌經(jīng)過氧化還原循環(huán)會產(chǎn)生活性氧,進一步影響藻細胞生長[30-32]。35 mg·L-1苯甲酸、30 mg·L-1水楊酸和50 mg·L-1阿魏酸對聚球藻生長的抑制效應在實驗后期(處理9 d)出現(xiàn)解除和藻細胞生長恢復現(xiàn)象,可能是由于培養(yǎng)基中酚酸類化感物質(zhì)濃度因藻細胞的吸收和自然降解等作用大大降低,導致抑藻效果減弱[33]。

        光合作用作為初級生產(chǎn)者的重要生理過程,為化感物質(zhì)的主要靶點之一[34]。聚球藻是一類光合自養(yǎng)原核生物,葉綠素是其主要的光合色素,化感物質(zhì)能直接破壞藻細胞葉綠體或通過影響與葉綠素合成相關(guān)物質(zhì)的活性阻礙藻類的葉綠素合成,降低藻細胞內(nèi)的葉綠素含量[35-37],亦或?qū)υ寮毎胁东@和傳遞光能的輔助功能團色素(如藻膽蛋白和別藻藍蛋白等)造成損害[38],間接影響藻細胞光合活性及速率,而葉綠素a含量的降低則會直接抑制藻類的繁殖和生長[39]。李鋒民等[40]的研究發(fā)現(xiàn),2-甲基乙酰乙酸乙酯(EMA)會降解銅綠微囊藻的葉綠素a,使其含量降低,影響銅綠微囊藻的光合作用速率。吳程等[41]研究認為,藻膽蛋白是化感物質(zhì)抑制銅綠微囊藻的關(guān)鍵靶點之一。本研究中,30、35和40 mg·L-1苯甲酸總體顯著降低聚球藻葉綠素a含量,且葉綠素a含量隨苯甲酸濃度的升高而降低,而低濃度苯甲酸(25 mg·L-1)處理的聚球藻葉綠素a含量隨著處理時間的延長呈逐漸升高的趨勢。然而,25、30、35和40 mg·L-1水楊酸均可顯著降低聚球藻葉綠素a含量。阿魏酸對聚球藻葉綠素a含量的影響與其對聚球藻生長的影響基本一致,呈低促高抑的現(xiàn)象??傮w上看,聚球藻葉綠素a的含量對酚酸類化感物質(zhì)的響應與其生長響應相似,表明高濃度酚酸類化感物質(zhì)會阻礙葉綠素a合成或破壞葉綠體,影響藻膽蛋白等輔助功能團色素,從而抑制生長、減少生物量。值得注意的是,35和40 mg·L-1苯甲酸、30 mg·L-1水楊酸以及50和60 mg·L-1阿魏酸處理下的葉綠素a含量在實驗后期回升,說明葉綠素a的合成受阻情況隨培養(yǎng)基中酚酸類化感物質(zhì)濃度的降低而減弱。

        葉綠素熒光參數(shù)中初始熒光(Fo)是PSⅡ反應中心完全開放時的熒光產(chǎn)量,而PSⅡ最大光化學效率(Fv/Fm)代表藻類的潛在光合能力,反映PSⅡ在脅迫條件下的功能狀態(tài)變化[18,27,42]。Fv/Fm值在外部環(huán)境脅迫下顯著降低,說明環(huán)境脅迫會對PSⅡ造成損害[43]。Zhao等[44]研究認為,桉樹(Eucalyptusgrandis×E.urophylla‘GLGU9’)葉的高濃度提取物處理銅綠微囊藻3 d后,銅綠微囊藻的Fv/Fm值顯著降低。Zhu等[45]研究發(fā)現(xiàn),穗狀狐尾藻的分泌物焦碚酸和沒食子酸會造成銅綠微囊藻葉綠素a含量下降,且抑制PSⅡ的活性,阻斷電子在PSⅡ與PSⅠ之間的傳遞。Wang等[46]研究認為,3.47和5.17 mmol·L-1阿魏酸可完全抑制銅綠微囊藻的光合能力。本研究中,苯甲酸和阿魏酸對Fo值的影響呈低促高抑現(xiàn)象,而不同濃度水楊酸處理均顯著降低聚球藻的Fo值,3種酚酸類化感物質(zhì)濃度較高(35和40 mg·L-1苯甲酸、35和40 mg·L-1水楊酸以及50和60 mg·L-1阿魏酸)時聚球藻的Fv/Fm值顯著降低。說明高濃度酚酸類化感物質(zhì)會造成聚球藻光系統(tǒng)反應中心的損壞,導致其光系統(tǒng)活性受到抑制或破壞。另一方面,3種酚酸類化感物質(zhì)在高濃度處理后期聚球藻的Fo值均出現(xiàn)不同程度回升,與生長響應和葉綠素a含量的變化相符合。

        抗氧化酶活性的變化可反映藻細胞所受外界環(huán)境脅迫程度[47-49],當藻類受到外界環(huán)境脅迫時,抗氧化酶活性隨活性氧的增加而升高,當活性氧積累過量時則下降,且對胞內(nèi)物質(zhì)造成氧化損傷[50-53]。酚酸類物質(zhì)自氧化還會產(chǎn)生H2O2和醌,進一步造成活性氧的升高,破壞藻細胞內(nèi)的結(jié)構(gòu)與生物大分子[54]。張庭廷等[15]研究認為,酚酸類物質(zhì)的自氧化是抑制銅綠微囊藻和蛋白核小球藻的主要機制之一。高濃度酚酸類物質(zhì)可能直接導致抗氧化酶系統(tǒng)崩潰,進而阻止銅綠微囊藻的生長[55]。Hua等[4]發(fā)現(xiàn),銅綠微囊藻的抗氧化酶活性在暴露于稻草水提物后呈濃度依賴性,且隨著時間推移先升高后降低。李鋒民等[40]和Hong等[49]研究發(fā)現(xiàn),銅綠微囊藻細胞的抗氧化酶活性隨著化感物質(zhì)濃度升高呈現(xiàn)先升高至峰值后降低的趨勢?;ㄣ懙萚56]研究認為,鄰苯三酚和咖啡酸能顯著抑制銅綠微囊藻的SOD活性。本研究中,聚球藻的SOD活性隨苯甲酸濃度的升高而降低,但均高于對照(不添加酚酸類化感物質(zhì)),苯甲酸處理的CAT活性高于阿魏酸處理;SOD、POD和CAT活性均隨水楊酸濃度的升高而降低,說明高濃度水楊酸處理的活性氧積累過量,影響抗氧化酶功能。然而,阿魏酸處理聚球藻的SOD、POD和CAT活性總體呈現(xiàn)隨濃度升高而升高的趨勢,其中50 mg·L-1阿魏酸處理的3個抗氧化酶活性仍較對照顯著升高,并未出現(xiàn)下降,未造成抗氧化酶功能的破壞,進一步的研究發(fā)現(xiàn),50 mg·L-1阿魏酸是通過抑制聚球藻細胞分裂而抑制其生長。總體上看,聚球藻抗氧化酶體系對3種酚酸類化感物質(zhì)的敏感程度由高到低依次為水楊酸、苯甲酸、阿魏酸。

        化感物質(zhì)脅迫會造成藻細胞膜完整性下降,細胞內(nèi)容物大量滲出[57],抑制藻類生長,最終導致死亡,因此,細胞膜是化感物質(zhì)抑藻的主要部位之一。臭椿〔Ailanthusaltissima(Mill.) Swingle〕提取物和稻草水提物可引起銅綠微囊藻形態(tài)的明顯改變以及細胞破裂和內(nèi)容物外泄[4,58]。酚酸類物質(zhì)自氧化產(chǎn)生的H2O2和醌還會進一步造成細胞膜的損傷和通透性增加[30]。李鋒民等[59]研究發(fā)現(xiàn),EMA會造成銅綠微囊藻和蛋白核小球藻的細胞膜破裂和內(nèi)容物滲出,細胞內(nèi)結(jié)構(gòu)遭到破壞和解體。張庭廷等[17]研究發(fā)現(xiàn),對羥基苯甲酸會造成銅綠微囊藻細胞膜的破裂和溶解,且破碎藻細胞會出現(xiàn)絮凝現(xiàn)象。本研究中,在酚酸類化感物質(zhì)脅迫下,聚球藻細胞膜破裂,細胞周圍出現(xiàn)大量的絮狀物為外滲的內(nèi)容物或吸附的添加物,藻細胞還出現(xiàn)聚團現(xiàn)象,因此對細胞膜的破壞和通透性的改變,也是酚酸類化感物質(zhì)抑藻的機制之一。

        4 結(jié)論和展望

        本研究中,酚酸類化感物質(zhì)對聚球藻的生長抑制效應由高至低依次為水楊酸、苯甲酸、阿魏酸。3種酚酸類化感物質(zhì)一方面可通過阻礙聚球藻葉綠素a合成和抑制PSⅡ活性來抑制藻細胞的繁殖生長,另一方面可通過減少細胞分裂、破裂細胞膜、增加胞外絮狀分泌物等途徑抑制或阻止藻細胞的繁殖。聚球藻抗氧化酶體系對3種酚酸類化感物質(zhì)的敏感程度與其生長抑制效應一致,但不同的抗氧化酶(SOD、POD和CAT)對不同種類和濃度的酚酸類化感物質(zhì)的響應存在差異,其中,SOD活性隨苯甲酸和水楊酸濃度的升高而降低,POD和CAT活性卻隨苯甲酸濃度的升高而升高,隨水楊酸濃度的升高而降低,而SOD、POD和CAT活性基本隨阿魏酸濃度的升高而升高,這一方面可能與處理時間有關(guān),由于實驗后期(處理6~9 d)化感效應減弱,聚球藻恢復生長,從而導致不同抗氧化酶活性的變化,另一方面也可能與不同抗氧化酶的基因或蛋白質(zhì)表達以及相關(guān)調(diào)控因子有關(guān),具體原因有待進一步的研究。

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