孫豪杰,王雅琪,胡婷婷,萬(wàn) 娜,袁 恩,伍振峰,楊 明
江西中醫(yī)藥大學(xué) 現(xiàn)代中藥制劑教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江西 南昌 330004
黃芩為唇形科植物黃芩Scutellaria baicalensisGeorgi的干燥根,具有清熱燥濕、瀉火解毒、止血安胎的功效[1]?!吨袊?guó)藥典》2020年版收載黃芩和酒黃芩2個(gè)品種:生黃芩清熱瀉火,解毒力強(qiáng),常須炮制后使用;酒黃芩可借酒升騰之力,用于治療上焦肺熱及四肢肌表之濕熱[2]。本課題組前期對(duì)黃芩炮制前后的化學(xué)成分進(jìn)行分析,發(fā)現(xiàn)黃芩酒炙后,黃酮苷類成分含量下降,黃酮苷元含量上升,苷類成分與苷元的比例變化趨勢(shì)明顯,可作為區(qū)分黃芩炮制前后的化學(xué)標(biāo)志物[3-6],表明酒炙后黃芩藥材發(fā)生化學(xué)成分等內(nèi)在變化,影響藥物的性質(zhì)及作用方向。目前針對(duì)黃芩酒炙對(duì)內(nèi)源性成分、代謝通路等調(diào)控作用的研究較少,開(kāi)展關(guān)于黃芩酒炙升提清肺熱的機(jī)制研究對(duì)闡述酒炙內(nèi)涵具有重要意義。
急性肺損傷(acute lung injury,ALI)是由多種肺內(nèi)(肺炎、感染等)或肺外致病因素導(dǎo)致的急性彌漫性炎性肺損傷,進(jìn)而引起急性呼吸衰竭的臨床綜合征[7-8]。全球急性肺損傷或急性呼吸窘迫綜合征(acute respiratory distress syndrome,ARDS)的病死率高達(dá)40%以上,為威脅人類健康的重要疾病。本研究對(duì)生、酒黃芩治療脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)誘導(dǎo)的ALI小鼠的藥效作用差異及其糞便中差異性內(nèi)源性代謝物進(jìn)行研究,闡明生、酒黃芩抑制肺部炎性反應(yīng)潛在的生物標(biāo)志物及相關(guān)代謝通路,為酒炙黃芩“行上焦、清濕熱”的作用機(jī)制研究提供依據(jù)。
SPF級(jí)雄性C57BL/6小鼠,體質(zhì)量(20±2)g,購(gòu)自山東斯科貝斯生物科技股份有限公司,動(dòng)物許可證號(hào)SCXK(魯)20160001。動(dòng)物于相對(duì)濕度(50±10)%、溫度(20±2)℃、自然節(jié)律光照的SPF級(jí)動(dòng)物房適應(yīng)性飼養(yǎng)1周,自由進(jìn)食飲水。動(dòng)物實(shí)驗(yàn)經(jīng)江西中醫(yī)藥大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物倫理委員會(huì)批準(zhǔn)(批準(zhǔn)號(hào)JZSYDWLL-20200611)。
生黃芩飲片(批號(hào)18062101)購(gòu)自天津盛實(shí)百草藥業(yè)有限公司,經(jīng)江西中醫(yī)藥大學(xué)現(xiàn)代中藥制劑教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室楊明教授鑒定為唇形科植物黃芩S.baicalensisGeorgi的干燥根,酒黃芩飲片由生黃芩按《中國(guó)藥典》標(biāo)準(zhǔn)規(guī)范炮制而成;LPS(批號(hào)MB5198)購(gòu)自美國(guó)Sigma公司;地塞米松磷酸鈉注射液(批號(hào)1901082)購(gòu)自湖北天藥藥業(yè)有限公司;小鼠白細(xì)胞介素-6(interleukin-6,IL-6)、IL-8、IL-10、腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)ELISA試劑盒(批號(hào)2020-06R)購(gòu)自江蘇酶免實(shí)業(yè)有限公司;質(zhì)譜級(jí)甲醇、乙腈購(gòu)自上海羅恩公司;色譜級(jí)甲酸購(gòu)自德國(guó)Merck公司。
Triple TOFTM5600型液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜儀(LC-MS,美國(guó)AB SCIEX公司);Multiskan GO 1510型多功能酶標(biāo)儀(美國(guó)Thermo Fisher Scientific公司);BSA124型萬(wàn)分之一電子分析天平、BT25S型十萬(wàn)分之一電子分析天平(德國(guó)Sartorius公司);TGL-20MC型臺(tái)式高速冷凍離心機(jī)(湖南湘鑫儀器儀表有限公司);KQ5200B型超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司);V3S025型漩渦儀(德國(guó)IKA公司);Medium-E400UF型實(shí)驗(yàn)室純水系統(tǒng)(上海和泰儀器有限公司)。
稱取生黃芩50 g,分別加入10、8倍量的水回流提取2 h,經(jīng)紗布濾過(guò),合并2次濾液,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)濃縮至50 mL,得到含生藥量1 g/mL的生黃芩提取物。酒黃芩按同法制得酒黃芩提取物。
C57BL/6小鼠隨機(jī)分為對(duì)照組、模型組、地塞米松(5 mg/kg)組、生黃芩(15 g/kg)組和酒黃芩(15 g/kg)組,每組8只。生黃芩組和酒黃芩組ig相應(yīng)藥物,對(duì)照組和模型組ig等體積蒸餾水,1次/d,連續(xù)7 d;地塞米松組第1~6天ig等體積蒸餾水,第7天ip地塞米松磷酸鈉注射液。末次給藥30 min后,小鼠吸入異氟烷麻醉,模型組和各給藥組小鼠口咽后壁滴入50 μL LPS溶液(1 mg/mL),對(duì)照組滴入生理鹽水,迅速捏住小鼠鼻孔,維持30 s,等待出現(xiàn)輕微氣管羅音,即造模成功。造模16 h后,于無(wú)菌條件下手持小鼠,擠壓小鼠肛門刺激排便,用無(wú)菌凍存管收集,于液氮中保存。
小鼠吸入CO2安樂(lè)死,行頸部手術(shù)暴露氣管,在甲狀腺位置做T型切口,用22 G靜脈穿刺針做氣管插管,以0.5 mL PBS溶液灌洗左肺3次,回抽灌洗液即得BALF,1500 r/min離心10 min,取上清液,按ELISA試劑盒說(shuō)明書測(cè)定BALF中IL-6、IL-8、IL-10和TNF-α水平。
取小鼠右肺下葉,稱定質(zhì)量,計(jì)算肺干濕質(zhì)量比;取胸腺、脾臟,稱定質(zhì)量,計(jì)算小鼠臟器指數(shù)。
肺干濕質(zhì)量比=肺干質(zhì)量/肺濕質(zhì)量
臟器指數(shù)=臟器質(zhì)量/小鼠體質(zhì)量
取小鼠右肺上葉浸泡于組織固定液中,室溫放置24 h以上,進(jìn)行蘇木素-伊紅(HE)染色,于顯微鏡下觀察并拍照。
2.6.1 糞便樣本處理 稱取各組小鼠糞便樣本20 mg,加入120 μL甲醇,勻漿1 min,4 ℃、14 000 r/min離心10 min,取上清液100 μL,4 ℃、14 000 r/min離心10 min,取上清液50 μL,進(jìn)行超高效液相色譜-飛行時(shí)間質(zhì)譜聯(lián)用(UPLC-Q-TOF-MS)分析。稱取各糞便樣本10 mg,按上述方法處理后作為質(zhì)控樣品。分析前連續(xù)進(jìn)樣3次確保儀器穩(wěn)定性良好,分析過(guò)程中每進(jìn)8針樣品后進(jìn)1針質(zhì)控樣品。
2.6.2 色譜條件 Phenomenex Kinetex C18色譜柱(100 mm×3 mm,2.6 μm),流動(dòng)相為甲酸水溶液(A)-乙腈(B),梯度洗脫:0~4 min,5%~25% B;4~10 min,25%~45% B;10~22 min,45%~95% B;22~25 min,95%~5% B;體積流量為0.3 mL/min;柱溫為40 ℃;進(jìn)樣體積為1 μL。
2.6.3 質(zhì)譜條件 離子化模式為電噴霧正離子模式和負(fù)離子模式;離子源電壓為5500 V;離子源溫度為550 ℃;去簇電壓為100 V/-100 V;碰撞能量為35 eV/-35 eV,碰撞能量擴(kuò)展為20 eV;霧化氣體為N2;輔助氣1為379.225 kPa,輔助氣2為379.225 kPa,氣簾氣為241.325 kPa;一級(jí)質(zhì)譜母離子掃描范圍為m/z50~1250;IDA設(shè)置響應(yīng)值超過(guò)10 cp的峰優(yōu)先進(jìn)行二級(jí)質(zhì)譜掃描,子離子掃描范圍為m/z50~1250,開(kāi)啟動(dòng)態(tài)背景扣除。
使用Markview 1.3.1軟件對(duì)原始數(shù)據(jù)進(jìn)行峰識(shí)別、對(duì)齊、濾噪、峰面積歸一化等預(yù)處理,得到含有代謝物保留時(shí)間(tR)、質(zhì)荷比、強(qiáng)度等信息的數(shù)據(jù)矩陣文件。將其導(dǎo)入SIMCA-P 14.0軟件進(jìn)行主成分分析(principal component analysis,PCA)和正交偏最小二乘判別分析(orthogonal partial least squares discriminant analysis,OPLS-DA),將變量投影重要性值(variable importance in projection,VIP)>1.0和P<0.05的變量視為差異變量。
利用HMDB(http://www.hmdb.ca/)與京都基因與基因組百科全書(Kyoto encyclopedia of genes and genomes,KEGG)數(shù)據(jù)庫(kù)(http://www.kegg.ca/)對(duì)差異變量的二級(jí)碎片離子進(jìn)行鑒定,檢索誤差范圍設(shè)置為0.1;使用MetaboAnalyst 5.0數(shù)據(jù)庫(kù)(http://www.metaboanalyst.ca/)進(jìn)行代謝通路分析,影響值>0.1的代謝通路被認(rèn)為是潛在的靶點(diǎn)路徑。
采用SPSS 25.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,采用單因素方差(One-way ANOVA)分析數(shù)據(jù),多組間兩兩比較采用LSD-t檢驗(yàn)。數(shù)據(jù)以±s表示,采用GraphPad Prism 8軟件繪制統(tǒng)計(jì)圖。
如圖1所示,與對(duì)照組比較,模型組小鼠BALF中IL-6、IL-8和TNF-α水平顯著升高(P<0.01),IL-10水平顯著降低(P<0.01);與模型組比較,生、酒黃芩組小鼠BALF中IL-6、IL-8和TNF-α水平顯著降低(P<0.01),IL-10水平顯著升高(P<0.01);酒黃芩抑制ALI小鼠肺部炎性反應(yīng)作用明顯優(yōu)于生黃芩(P<0.01)。
胸腺和脾臟指數(shù)通常被用作評(píng)估宿主免疫能力。如圖2所示,與對(duì)照組比較,模型組小鼠胸腺和脾臟指數(shù)均顯著降低(P<0.01);與模型組比較,酒黃芩組小鼠胸腺指數(shù)和脾臟指數(shù)均顯著升高(P<0.05、0.01),生黃芩組小鼠胸腺指數(shù)和脾臟指數(shù)呈升高趨勢(shì),地塞米松組小鼠胸腺指數(shù)和脾臟指數(shù)均顯著降低(P<0.01),表明地塞米松對(duì)機(jī)體免疫器官造成損傷[9]。肺水腫是ALI最主要的病理特征之一,與對(duì)照組比較,模型組小鼠肺干濕質(zhì)量比顯著升高(P<0.01),肺水腫嚴(yán)重;與模型組比較,地塞米松組和酒黃芩組小鼠肺干濕質(zhì)量比顯著降低(P<0.01),生黃芩組小鼠肺干濕質(zhì)量比呈降低趨勢(shì),表明酒黃芩改善ALI小鼠臟器損傷的作用優(yōu)于生黃芩。
圖1 生、酒黃芩對(duì)ALI小鼠BALF中IL-6、IL-8、IL-10和TNF-α水平的影響 ( ±s,n=8)Fig.1 Effect of raw and wine-processed Scutellariae Radix on levels of IL-6,IL-8,IL-10 and TNF-α in BALF of ALI mice ( ±s,n=8)
圖2 生、酒黃芩對(duì)ALI小鼠胸腺指數(shù)、脾臟指數(shù)和肺干濕質(zhì)量比的影響 ( ±s,n=8)Fig.2 Effect of raw and wine-processed Scutellariae Radix on thymus index,spleen index and lung dry-wet weight ratio in ALI mice ( ±s,n=8)
如圖3所示,對(duì)照組小鼠肺組織結(jié)構(gòu)清晰,肺泡間隔及肺泡腔未見(jiàn)明顯病理改變;模型組小鼠肺組織炎性細(xì)胞浸潤(rùn)明顯,肺泡壁明顯增厚和間質(zhì)水腫,表明造模成功;各給藥組肺組織病變程度降低,炎性細(xì)胞浸潤(rùn)和紅細(xì)胞滲出、增生等情況均有所改善,其中酒黃芩組與對(duì)照組小鼠肺組織形態(tài)相似。
正、負(fù)離子模式下,小鼠糞便總離子流圖見(jiàn)圖4。針對(duì)系統(tǒng)穩(wěn)定性,隨機(jī)選取質(zhì)控樣本中的12個(gè)分子離子峰,計(jì)算其tR和峰強(qiáng)度的RSD見(jiàn)表1,選取的12個(gè)分子離子峰tR的RSD為0.02%~0.15%,峰強(qiáng)度的RSD為3.14%~8.78%,表明質(zhì)控樣品中的離子具有良好的質(zhì)量準(zhǔn)確度,符合代謝組學(xué)分析要求。
3.5.1 PCA分析 如圖5所示,正、負(fù)離子模式下,各組樣本之間存在一定的交叉,但對(duì)照組與模型組樣本可較明顯地分開(kāi),表明ALI小鼠糞便中的代謝物發(fā)生了明顯的變化。
圖3 生、酒黃芩對(duì)ALI小鼠肺組織病理變化的影響 (HE,×100)Fig.3 Effect of raw and wine-processed Scutellariae Radix on pathological changes of lung tissues in ALI mice (HE,× 100)
圖4 正離子 (A)、負(fù)離子 (B) 模式下的小鼠糞便總離子流圖Fig.4 Total ion chromatograms in fecal samples obtained in positive mode (A) and negative mode (B)
3.5.2 OPLS-DA分析 采用有監(jiān)督的OPLS-DA方法確定ALI小鼠造模前后及生、酒黃芩治療后糞便中內(nèi)源性差異代謝物,如圖6所示,對(duì)照組和模型組樣本區(qū)分明顯,正離子模式:R2X=0.451,R2Y=0.994,Q2=0.869;負(fù)離子模式:R2X=0.766,R2Y=1.000,Q2=0.814,表明該模型具有較好的魯棒性和預(yù)測(cè)能力。
表1 系統(tǒng)穩(wěn)定性驗(yàn)證Table 1 System stability investigation
圖5 正離子 (A)、負(fù)離子 (B) 模式下各組小鼠糞便樣品的PCA得分圖Fig.5 PCA score plots of fecal samples of mice in different groups in positive mode (A) and negative mode (B)
基于上述OPLS-DA模型,結(jié)合VIP>1且P<0.05的篩選條件及數(shù)據(jù)庫(kù)匹配結(jié)果,最終在對(duì)照組與模型組小鼠糞便中鑒定出10個(gè)差異代謝物(表2)。與對(duì)照組比較,模型組小鼠糞便中L-蛋氨酸、孕酮、孕烯醇酮、L-谷氨酸、L-苯丙氨酸和鞘氨醇水平顯著升高,花生四烯酸、L-色氨酸、2′-脫氧尿苷和鳥(niǎo)苷水平顯著降低。
影響ALI的代謝通路見(jiàn)圖7,其中影響值>0.1的代謝通路有9條,分別為:①苯丙氨酸、酪氨酸與色氨酸的生物合成;②D-谷氨酰胺與D-谷氨酸代謝;③苯丙氨酸代謝;④花生四烯酸代謝;⑤丙氨酸、天冬氨酸和谷氨酸代謝;⑥鞘脂類代謝;⑦色氨酸代謝;⑧精氨酸的生物合成;⑨半胱氨酸和蛋氨酸代謝。由此可見(jiàn),ALI小鼠體內(nèi)正常的氨基酸代謝與脂質(zhì)代謝水平發(fā)生紊亂。
圖6 正、負(fù)離子模式下小鼠糞便樣品OPLS-DA得分圖 (A、B) 及相應(yīng)模型驗(yàn)證圖 (C、D)Fig.6 OPLS-DA score plots (A,B) and corresponding model validation plot (C,D) of fecal samples in mice in positive and negative modes
表2 ALI小鼠糞便內(nèi)源性差異代謝物Table 2 Different endogenous metabolites in fecal samples of ALI mice
圖7 ALI小鼠糞便代謝通路圖Fig.7 Fecal metabolic pathways analysis in ALI mice
如圖8所示,與模型組比較,生黃芩組小鼠糞便代謝物花生四烯酸、2′-脫氧尿苷、鳥(niǎo)苷和L-色氨酸水平顯著升高(P<0.01),L-谷氨酸、L-苯丙氨酸、孕酮、孕烯醇酮和鞘氨醇水平顯著降低(P<0.01);酒黃芩組小鼠糞便代謝物花生四烯酸、鳥(niǎo)苷和L-色氨酸水平顯著升高(P<0.05、0.01),L-谷氨酸、L-苯丙氨酸、孕酮、孕烯醇酮和鞘氨醇水平顯著降低(P<0.01);生、酒黃芩組L-蛋氨酸水平無(wú)明顯變化。
圖8 生、酒黃芩對(duì)ALI小鼠糞便中差異代謝物的影響 ( ±s,n=8)Fig.8 Effect of raw and wine-processed Scutellariae Radix on differential metabolites in feces of ALI mice ( ±s,n=8)
表3 生、酒黃芩干預(yù)ALI小鼠糞便內(nèi)源性差異代謝物Table 3 Different endogenous metabolites in feces of ALI mice intervened by raw and wine-processed Scutellariae Radix
圖9 生、酒黃芩干預(yù)后ALI小鼠糞便代謝通路圖Fig.9 Fecal metabolism pathway in ALI mice intervened by raw and wine-processed Scutellariae Radix
圖10 不同組間的糞便差異代謝物韋恩圖Fig.10 Venn diagram of differential metabolites in feces between different groups
生、酒黃芩干預(yù)ALI的糞便差異代謝物見(jiàn)表3,代謝通路見(jiàn)圖9,生、酒黃芩通過(guò)調(diào)節(jié)不同代謝途徑發(fā)揮作用。各組間小鼠糞便差異代謝物韋恩圖見(jiàn)圖10,對(duì)照組與模型組、模型組與生黃芩組重疊的差異代謝物為鞘氨醇和L-谷氨酸;對(duì)照組與模型組、模型組與酒黃芩組重疊的差異代謝物為L(zhǎng)-苯丙氨酸。生黃芩通過(guò)D-谷氨酰胺與D-谷氨酸代謝通路以及鞘脂類代謝通路緩解ALI,而酒黃芩則調(diào)節(jié)苯丙氨酸代謝通路發(fā)揮療效。
本研究通過(guò)小鼠口咽吸入LPS建立ALI模型,發(fā)現(xiàn)模型組小鼠出現(xiàn)免疫臟器損傷以及嚴(yán)重的肺組織損傷,且體內(nèi)炎性因子水平失衡;酒黃芩的療效優(yōu)于生黃芩,與炮制理論一致。采用糞便代謝組學(xué)探究ALI潛在發(fā)病機(jī)制及黃芩酒炙干預(yù)ALI的內(nèi)在機(jī)制,發(fā)現(xiàn)與對(duì)照組相比,ALI小鼠糞便中鑒定得到10個(gè)差異代謝物,主要包括氨基酸類、鞘氨醇及花生四烯酸等,主要涉及多種氨基酸的合成與代謝以及脂質(zhì)代謝,這些潛在的代謝通路與文獻(xiàn)報(bào)道一致[10]。生黃芩組中鑒定得到24個(gè)差異代謝物,酒黃芩組中鑒定得到21個(gè)差異代謝物,結(jié)合通路富集分析和組間差異代謝物的并集分析,發(fā)現(xiàn)生黃芩通過(guò)調(diào)節(jié)D-谷氨酰胺與D-谷氨酸代謝通路和鞘脂類代謝通路發(fā)揮作用,而酒黃芩通過(guò)苯丙氨酸代謝通路發(fā)揮作用。
D-谷氨酰胺與D-谷氨酸代謝通路中主要的代謝物L(fēng)-谷氨酸和L-谷氨酰胺在抗氧化中發(fā)揮著重要作用[11-12]?;钚匝踝杂苫倪^(guò)量產(chǎn)生可引起ALI[13],因此當(dāng)與抗氧化劑相關(guān)的代謝通路激活時(shí),生成抗氧化劑清除過(guò)量氧自由基,恢復(fù)免疫系統(tǒng)的正常運(yùn)行,維持機(jī)體氧化還原平衡。谷氨酸受體重要亞型之一的N-甲基-D-天門冬氨酸(N-methyl-D- aspartate,NMDA)受體可因肺內(nèi)谷氨酸含量升高而過(guò)度激活,使肺組織出現(xiàn)高通透性肺水腫[14]。本研究檢測(cè)到模型組小鼠糞便中谷氨酸水平顯著升高,表明LPS刺激后谷氨酸釋放增多;在生黃芩干預(yù)下,谷氨酸水平顯著下調(diào),提示生黃芩可能通過(guò)阻斷谷氨酸NMDA受體,發(fā)揮維持谷氨酸穩(wěn)態(tài)與抗氧化應(yīng)激的作用。近年來(lái),大量研究表明苯丙氨酸在急性炎性疾病中發(fā)揮作用。體內(nèi)高濃度苯丙氨酸可能增加ARDS的死亡率[15]。嚴(yán)重的肺部炎性反應(yīng)導(dǎo)致苯丙氨酸-4-羥化酶及5,6,7,8-四氫生物蝶呤活性降低,苯丙氨酸累積,從而促進(jìn)炎性反應(yīng)[16]。本研究發(fā)現(xiàn),給予酒黃芩后,ALI小鼠糞便中苯丙氨酸向正常水平回調(diào),提示酒黃芩具有促進(jìn)其轉(zhuǎn)化并抑制炎性反應(yīng)的作用。
綜上,本研究通過(guò)ALI模型模擬上焦?jié)駸岚Y,考察生、酒黃芩干預(yù)ALI小鼠的藥效差異以及內(nèi)源性代謝物的差異影響,探討黃芩酒炙“行上焦、清濕熱”的作用機(jī)制,為解釋中藥炮制機(jī)制提供了一種新模式。
利益沖突所有作者均聲明不存在利益沖突