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        布魯氏菌OMP16抗體的間接ELISA方法建立

        2021-03-29 01:46:18田路路李會(huì)玲支飛杰王小雨翟云逸靳亞平王愛(ài)華
        關(guān)鍵詞:血清檢測(cè)

        田路路,李會(huì)玲,支飛杰,王小雨,翟云逸,靳亞平,王愛(ài)華*

        (1.西北農(nóng)林科技大學(xué)動(dòng)物醫(yī)學(xué)院/農(nóng)業(yè)農(nóng)村部動(dòng)物生物技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,陜西楊凌 712100;2.陜西省畜牧技術(shù)推廣總站,陜西西安 710016)

        布魯氏菌病是由布魯氏菌引起的人畜共患病,導(dǎo)致家畜流產(chǎn)和不孕。布魯氏菌可在脾臟、肝臟、淋巴結(jié)等網(wǎng)狀內(nèi)皮系統(tǒng)中持續(xù)存在。其宿主多以牛、羊、豬等家畜為主,也可感染海豚等海洋動(dòng)物及野生動(dòng)物[1]。人感染后主要表現(xiàn)反復(fù)發(fā)熱、關(guān)節(jié)疼痛、骨骼肌肉衰弱[2]。為促進(jìn)畜牧業(yè)健康發(fā)展,布魯氏菌病的防控凈化已成為形勢(shì)所需。對(duì)布魯氏菌病的早期準(zhǔn)確診斷在控制和根除布魯氏菌病以改善公共衛(wèi)生方面起著重要作用[3]?;⒓t平板凝集試驗(yàn)是最常見(jiàn)的布魯氏菌病檢測(cè)方法,但該方法靈敏度低、假陽(yáng)性率高。ELISA是一種用于檢測(cè)特異性抗體和可溶性抗原的免疫測(cè)定技術(shù),該方法敏感度高、操作簡(jiǎn)單、特異性強(qiáng)、適用范圍比較廣泛。該方法對(duì)布魯氏菌病的診斷和血清流行病學(xué)調(diào)查具有重要的作用[4]。布魯氏菌外膜蛋白(outer membrane protein,OMP)16是一種與肽聚糖相關(guān)的保守性脂蛋白,廣泛存在于布魯氏菌的6個(gè)種屬[5]。本試驗(yàn)表達(dá)、純化出布魯氏菌OMP16,并以純化的布魯氏菌OMP16作為包被抗原,建立檢測(cè)布魯氏菌抗體的間接ELISA法,為布魯氏菌病檢測(cè)及疫苗評(píng)價(jià)等提供一種靈敏度高的技術(shù)方法。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 菌株和血清樣本 豬布魯氏菌S2疫苗株,由陜西省動(dòng)物衛(wèi)生與屠宰站惠贈(zèng);大腸埃希氏菌DH5α、BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞由天根生化科技(北京)有限公司生產(chǎn);質(zhì)粒pET-32a由農(nóng)業(yè)農(nóng)村部動(dòng)物生物技術(shù)重點(diǎn)開(kāi)放性實(shí)驗(yàn)室保存;40份布魯氏菌病虎紅平板凝集試驗(yàn)檢測(cè)的陰性血清,100份血清樣本采自陜西省某未免疫布魯氏菌病疫苗的奶山羊場(chǎng)。

        1.1.2 主要試劑 過(guò)氧化物酶標(biāo)記的兔抗羊IgG,西安晶彩生物科技有限公司; His-Tag抗體(小鼠單抗),碧云天生物科技有限公司;ClonExpress?Ⅱ One Step Cloning Kit,南京維諾贊生物科技有限公司;大豆胰蛋白胨瓊脂粉(TSB),北京奧博星生物技術(shù)有限責(zé)任公司;質(zhì)粒小提中量試劑盒、DNA純化回收試劑盒、細(xì)菌基因組提取試劑盒,天根生化科技(北京)有限公司;脫脂奶粉,TMB顯色液和NTA樹(shù)脂層析柱,碧云天生物科技有限公司;布魯氏菌病虎紅平板凝集試驗(yàn)抗原及其相應(yīng)標(biāo)準(zhǔn)陽(yáng)性和陰性血清,中國(guó)獸醫(yī)藥品監(jiān)察所。

        1.1.3 主要儀器 移液器,德國(guó)Eppendorf公司;電子天平,美國(guó)D-I-C公司;臺(tái)式高速低溫離心機(jī),德國(guó)Eppendorf公司;PCR儀,北京賽百奧科技有限公司;核酸電泳儀,美國(guó)Millipore公司;凝膠成像儀,上海天能科技有限公司;電熱恒溫培養(yǎng)箱,上海躍進(jìn)醫(yī)療器械廠;超聲波細(xì)胞粉碎儀,寧波新藝超聲設(shè)備有限公司;酶聯(lián)免疫檢測(cè)儀,北京Bio-Rad公司。

        1.2 方法

        1.2.1 布魯氏菌S2菌株基因組的提取 用無(wú)菌生理鹽水溶解B.suisS2活疫苗株,采用平板畫線法接種到大豆胰蛋白胨瓊脂(TSA)平板上,倒置在37℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)72 h,挑取生長(zhǎng)良好的菌落接種到胰蛋白胨大豆肉湯(TSB)液體培養(yǎng)基,在37℃恒溫?fù)u床培養(yǎng)48 h,按照細(xì)菌基因組提取試劑盒說(shuō)明提取布魯氏菌基因組。

        1.2.2 PCR擴(kuò)增布魯氏菌Omp16基因片段 根據(jù)GenBank上公布的布魯氏菌Omp16基因序列,應(yīng)用Primer Primer 5.0軟件設(shè)計(jì)上、下游引物,引物的上、下游引入EcoRⅠ酶切位點(diǎn),用 Prime-Blast 檢測(cè)所設(shè)計(jì)引物的特異性。引物由西安擎科澤西生物科技有限公司合成。以B.suisS2菌株基因組為模板,進(jìn)行Omp16基因擴(kuò)增,反應(yīng)體系:0.5 μL Prime Star DNA polymerase,4 μL 5×PS buffer, 2.5 μL dNTP mixture,1 μL模板,上、下游引物各0.5 μL,雙蒸水11 μL。反應(yīng)程序:98℃ 2 min;98℃ 20 s,53℃ 15 s,72℃ 45 s,30個(gè)循環(huán);72℃延伸10 min。擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行10 g/L瓊脂糖凝膠電泳鑒定。

        1.2.3 重組原核表達(dá)載體pET32a-Omp16的構(gòu)建 用EcoRⅠ對(duì)原核表達(dá)載體pET-32a進(jìn)行酶切,酶切產(chǎn)物經(jīng)10 g/L的瓊脂糖凝膠電泳。使用DNA純化回收試劑盒進(jìn)行目的片段膠回收。

        將膠回收的目的片段與經(jīng)酶切后的質(zhì)粒pET-32a以1∶1的摩爾比在37℃水浴連接30 min,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化大腸埃希氏菌DH5α,涂布含有氨芐的LA平板,倒置在37℃恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng)12 h后,挑取生長(zhǎng)良好的單個(gè)菌落接種到含有氨芐的LB培養(yǎng)液,37℃恒溫?fù)u床培養(yǎng)12 h,使用質(zhì)粒小提中量試劑盒提取重組載體。將PCR鑒定正確的質(zhì)粒送西安擎科澤西生物科技有限公司測(cè)序。

        1.2.4 重組蛋白OMP16的誘導(dǎo)表達(dá) 取構(gòu)建好的重組質(zhì)粒pET32a-Omp16轉(zhuǎn)化大腸埃希氏菌感受態(tài)BL21(DE3),在搖床復(fù)蘇1 h后,涂布到含有氨芐的LA平板上,倒置在恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)12 h,挑取單個(gè)菌落,接種到含有氨芐的LB培養(yǎng)液,在37℃搖床培養(yǎng)至對(duì)數(shù)期(OD600nm≈0.6)時(shí),加入誘導(dǎo)劑IPTG(終濃度為1.0 mmol/L),22℃條件下誘導(dǎo)8 h,5 000 r/min離心收集菌體,冰上超聲裂解,12% SDS-PAGE電泳檢測(cè)重組蛋白OMP16的表達(dá)。

        1.2.5 重組蛋白Omp16的純化及鑒定 經(jīng)大量誘導(dǎo)表達(dá)的OMP16分泌表達(dá)菌[大腸埃希氏菌BL21(DE3)]在超聲裂解后離心取上清,按照His蛋白純化試劑盒說(shuō)明書純化重組蛋白OMP16,將純化的OMP16于PBS中透析過(guò)夜,用PEG8000濃縮,120 g/L SDS-PAGE電泳鑒定,并用His-tag單抗作為一抗進(jìn)行Western blot鑒定,同時(shí)使用羊布魯氏菌標(biāo)準(zhǔn)陽(yáng)性血清作為一抗,HRP標(biāo)兔抗羊IgG作為二抗進(jìn)行Western blot,鑒定分析重組蛋白OMP16和羊布魯氏菌血清的免疫反應(yīng)性。

        1.2.6 iELISA方法建立 采用方陣滴定法篩選OMP16包被濃度和陽(yáng)性血清最佳稀釋倍數(shù)。將重組蛋白OMP16用包被液(pH9.6的碳酸鹽緩沖液)分別稀釋成2、1.5、1、0.5 μg/mL包被ELISA板,每孔加樣100 μL,4℃包被過(guò)夜,PBS′T洗滌5次,每次30 s。每孔加入200 μL 50 g/L的脫脂奶粉,37℃封閉1 h, PBS′T洗滌5次后,陰性血清,陽(yáng)性血清用50 g/L的脫脂奶粉按1∶10、1∶100、1∶200倍比稀釋,分別每孔加100 μL,37℃孵育1 h,PBS′T洗滌5次后,每孔加入100 μL兔抗羊酶標(biāo)二抗,37℃避光孵育1 h,PBS′T洗滌5次,每孔加100 μL TMB顯色液,37℃避光顯色30 min,加入50 μL終止液(2 mol/L濃硫酸)終止反應(yīng),10 min內(nèi)在酶標(biāo)儀上測(cè)定OD450 nm值。以陽(yáng)性血清OD450 nm值在1.0左右,且P/N值(P為陽(yáng)性血清孔平均值,N為陰性血清孔平均值)最大時(shí)為最佳的抗原包被濃度和血清稀釋倍數(shù)。

        利用相同方法對(duì)封閉時(shí)間(30、60、120 min),血清與抗原反應(yīng)時(shí)間(30、60、120 min),酶標(biāo)二抗稀釋倍數(shù)(1∶1 000、1∶5 000、1∶100 000、1∶20 000),血清與酶標(biāo)二抗反應(yīng)時(shí)間(30、60、120 min),酶標(biāo)二抗與底物TMB反應(yīng)時(shí)間(15、30、45 min)等反應(yīng)條件進(jìn)行檢測(cè)優(yōu)化,根據(jù)陽(yáng)性血清OD450nm值在1.0左右,P/N值最大確定最佳反應(yīng)條件。

        1.2.8 敏感性試驗(yàn) 將羊布魯氏菌陽(yáng)性血清分別做5、10、20、40、80、160、320、640倍稀釋,依照上述建立的iELISA檢測(cè)方法進(jìn)行檢測(cè),評(píng)估建立的iELISA檢測(cè)方法的靈敏度。

        1.2.9 符合率試驗(yàn) 取從養(yǎng)殖場(chǎng)采集的100份血清樣本,分別使用虎紅平板凝集試驗(yàn)和所建立的iELISA方法進(jìn)行檢測(cè),并對(duì)兩種檢測(cè)方法的結(jié)果進(jìn)行對(duì)比。

        2 結(jié)果

        2.1 布魯氏菌Omp16基因原核表達(dá)載體的構(gòu)建

        以B.suisS2菌株基因組為模板,PCR擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)顯示,在507 bp處出現(xiàn)了一條與預(yù)期大小相符的特異性條帶(圖1)。將構(gòu)建好的重組質(zhì)粒進(jìn)行PCR鑒定,瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)顯示得到了一條與預(yù)期大小相符的507 bp的目的片段(圖2)。陽(yáng)性克隆質(zhì)粒測(cè)序結(jié)果與GenBank上已公布的布魯氏菌Omp16基因序列一致,且開(kāi)放閱讀框連接正確,表明重組原核表達(dá)載體構(gòu)建成功。

        M.DNA標(biāo)準(zhǔn)DL 1 000; 1.Omp16基因PCR產(chǎn)物M.DNA Maker DL 1 000; 1.PCR products of Omp16 gene

        M.DNA標(biāo)準(zhǔn)DL 1 000; 1.pET32a-Omp16質(zhì)粒PCR產(chǎn)物

        2.2 重組蛋白OMP16的誘導(dǎo)表達(dá)、純化及反應(yīng)原性測(cè)定

        將OMP16表達(dá)菌[大腸埃希氏菌BL21(DE3)]誘導(dǎo)后的表達(dá)產(chǎn)物經(jīng)120 g/L的SDS-PAGE電泳檢測(cè),結(jié)果見(jiàn)圖3,顯示在約34 ku處出現(xiàn)了一條與預(yù)期大小相符的蛋白條帶,表明重組蛋白OMP16成功表達(dá)。

        經(jīng)IPTG誘導(dǎo)后的菌液經(jīng)超聲裂解后,離心收集上清和沉淀,為保持重組蛋白的免疫活性,對(duì)上清中的可溶性蛋白進(jìn)行純化,12%的SDS-PAGE電泳結(jié)果顯示獲得了純度較高的重組蛋白(圖4)。Western blot鑒定分析純化后的重組蛋白,分別用鼠抗6×His-tag(1∶3000)(圖5)和羊布魯氏菌標(biāo)準(zhǔn)陽(yáng)性血清(1∶100)(圖6)為一抗的結(jié)果顯示,大約在34 ku處出現(xiàn)了一條特異性的免疫印跡條帶,與預(yù)測(cè)的重組蛋白大小相符,而陰性對(duì)照沒(méi)有出現(xiàn)特異性的免疫印跡條帶,說(shuō)明純化后的蛋白即為帶有6×His的Omp16融合蛋白,且純化的融合蛋白能與羊布魯氏菌標(biāo)準(zhǔn)陽(yáng)性血清發(fā)生特異性的免疫反應(yīng),可用作ELISA的包被抗原。

        M.蛋白分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn);1.pET-32a未誘導(dǎo);2.pET-32a誘導(dǎo)產(chǎn)物;3.pET32a-Omp16 未誘導(dǎo);4.pET32a-Omp16 誘導(dǎo)產(chǎn)物

        M.蛋白分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn);1.pET32a-Omp16純化產(chǎn)物

        2.3 iELISA反應(yīng)條件優(yōu)化結(jié)果

        根據(jù)方陣滴定法篩選iELISA最佳反應(yīng)條件試驗(yàn)結(jié)果顯示(表1),當(dāng)重組蛋白包被濃度為1 μg/mL,血清稀釋10倍時(shí),檢測(cè)陽(yáng)性血清的OD450nm值接近1.0,且此時(shí)P/N值最大。因此確定OMP16的最佳包被濃度為1 μg/mL,血清稀釋10倍為最佳的血清稀釋倍數(shù)。經(jīng)過(guò)試驗(yàn),確定最終的iELISA反應(yīng)條件,即1 μg/mL的重組蛋白OMP16用pH 9.6的碳酸鹽緩沖液在4℃溫度條件下包被過(guò)夜,用50 g/L的脫脂奶粉37℃封閉1 h,加入10倍稀釋的血清樣本,在37℃條件下孵育1 h;酶標(biāo)二抗做1 000倍稀釋,在37℃條件下孵育1 h,TMB顯示液避光顯色30 min,最后用2 mol/L濃硫酸終止顯色反應(yīng)。

        a.pET32a-Omp16未誘導(dǎo);b.純化的Omp16蛋白a.Not induced pET32a-Omp16;b.Purified protein of Omp16

        a.pET32a-Omp16未誘導(dǎo);b.純化的Omp16蛋白a.Not induced pET32a-Omp16;b.Purified protein of Omp16

        表1 最佳抗原包被濃度和血清最佳稀釋倍數(shù)確定

        2.4 臨界值的確定

        圖7 陰性樣品檢測(cè)結(jié)果正態(tài)分布圖

        表2 iELISA敏感性試驗(yàn)結(jié)果

        2.5 敏感性試驗(yàn)結(jié)果

        用上述優(yōu)化的iELISA方法檢測(cè)不同倍比稀釋的羊布魯氏菌陽(yáng)性血清(表2),當(dāng)羊布魯氏菌陽(yáng)性血清稀釋80倍時(shí),陽(yáng)性血清的OD450nm低于臨界值,說(shuō)明其敏感性較好。

        2.6 臨床應(yīng)用與符合率試驗(yàn)結(jié)果

        分別使用虎紅平板凝集試驗(yàn)和建立的iELISA方法對(duì)100份羊血清樣本進(jìn)行檢測(cè)。結(jié)果顯示,虎紅平板凝集試驗(yàn)檢出8份陽(yáng)性和92份陰性,建立的iELISA方法檢出11份陽(yáng)性和89份陰性,顯示建立的iELISA敏感性高于虎紅平板凝集試驗(yàn)。iELISA與虎紅平板凝集試驗(yàn)的陽(yáng)性符合率為75.0%(6/8),陰性符合率為94.6%(87/92),總體符合率達(dá)到93%(93/100),說(shuō)明建立的iELISA方法與虎紅平板凝集試驗(yàn)具有良好的一致性。

        3 討論

        目前最常用的異源蛋白表達(dá)系統(tǒng)是原核表達(dá)系統(tǒng),因其原核表達(dá)載體帶有篩選和純化標(biāo)簽,方便了蛋白的純化。但原核表達(dá)載體系統(tǒng)也存在不足之處,會(huì)出現(xiàn)異源表達(dá)的蛋白與大腸埃希氏菌系統(tǒng)不相容,蛋白無(wú)法表達(dá),以及表達(dá)的重組蛋白不可溶的現(xiàn)象[7]。本研究先后嘗試了多種不同的載體,如pGEX-4T-1載體,pET-28a(+)載體,但均出現(xiàn)了重組蛋白未表達(dá)的現(xiàn)象。最終選用pET-32a載體,pET系統(tǒng)是目前E.coli表達(dá)重組蛋白最強(qiáng)大的系統(tǒng)。同時(shí)選用E.coliBL21(DE3)表達(dá)系統(tǒng),因其遺傳背景清楚,能高效表達(dá)具有生物學(xué)活性的蛋白分子[8]。同時(shí),外源基因的高效表達(dá)也會(huì)受到誘導(dǎo)劑濃度、誘導(dǎo)時(shí)間、誘導(dǎo)溫度等多方面因素的影響。試驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),在37℃誘導(dǎo)條件下,重組蛋白OMP16可溶性表達(dá)量較低,主要以包涵體的形式存在。經(jīng)過(guò)多次試驗(yàn)驗(yàn)證,將誘導(dǎo)溫度降低到22℃,誘導(dǎo)時(shí)間設(shè)定為8 h,重組蛋白可溶性的表達(dá)量顯著增加。最終得到了大量純度較高的可溶性重組蛋白OMP16, 經(jīng)SDS-PAGE和 Western blot鑒定分析,該重組蛋白具有良好的反應(yīng)原性,可用作iELISA的標(biāo)記抗原。

        布魯氏菌病檢測(cè)與診斷技術(shù)的研究和開(kāi)發(fā)對(duì)于控制布魯氏菌病的感染至關(guān)重要[9]。傳統(tǒng)細(xì)菌學(xué)技術(shù)是診斷布魯氏菌病的金標(biāo)準(zhǔn),但細(xì)菌培養(yǎng)具有技術(shù)挑戰(zhàn)性和危險(xiǎn)性,需要熟練的技術(shù)人員來(lái)操作。因此在臨床和獸醫(yī)實(shí)驗(yàn)室中,需要使用靈敏、可靠和快速的診斷技術(shù)。目前國(guó)內(nèi)普遍使用虎紅平板凝集試驗(yàn)結(jié)合試管凝集試驗(yàn)進(jìn)行布魯氏菌病的檢測(cè)和診斷,由于耶爾森氏菌等的抗原與布魯氏菌存在交叉性,因此會(huì)造成假陽(yáng)性結(jié)果。ELISA檢測(cè)方法因結(jié)果穩(wěn)定、準(zhǔn)確率高、可批量檢測(cè)等優(yōu)勢(shì)在生產(chǎn)實(shí)踐中被廣泛使用[10]。目前診斷布魯氏菌病的ELISA技術(shù)主要以滅活菌體的LPS作為包被抗原,但革蘭陰性菌的LPS具有較為明顯的交叉反應(yīng),在臨床應(yīng)用中極易出現(xiàn)假陽(yáng)性、假陰性的現(xiàn)象[11]。外膜蛋白是大部分革蘭氏陰性菌重要的免疫原[12]。布魯氏菌OMP16是布魯氏菌第1組外膜蛋白,是布魯氏菌外膜結(jié)構(gòu)中必不可少的成分[13]。有研究表明,在敲除布魯氏菌Omp16后,影響了外膜肽聚糖的連接,從而導(dǎo)致布魯氏菌外膜結(jié)構(gòu)受到破環(huán),最終使得細(xì)胞因外膜通透性增加而溶解死亡[14]。同時(shí),布魯氏菌OMP16具有良好的免疫原性和保護(hù)性,它是一個(gè)不需要添加佐劑就能誘導(dǎo)機(jī)體產(chǎn)生與活疫苗S19相似保護(hù)水平的布魯氏菌蛋白,能引起機(jī)體Th1特異性的免疫應(yīng)答,同時(shí)還能夠激活單核細(xì)胞,誘導(dǎo)產(chǎn)生炎性細(xì)胞因子[15-16]。布魯氏菌OMP16是一種免疫原性蛋白,可刺激機(jī)體產(chǎn)出相應(yīng)的抗體,因此,可以將該蛋白作為布魯氏菌血清學(xué)檢查的標(biāo)記抗原。由于OMP16在免疫方面的顯著優(yōu)勢(shì),缺失Omp16基因的突變株作為一種疫苗成為了研究熱點(diǎn),建立基于布魯氏菌OMP16的iELISA方法即可區(qū)分免疫和野毒株感染,從而可準(zhǔn)確的淘汰野毒感染的家畜[17]。因此,布魯氏菌OMP16作為抗原在臨床診斷上具有重要的現(xiàn)實(shí)意義。

        ELISA方法受多種因素的影響,首先是抗原抗體的反應(yīng)條件。根據(jù)抗原抗體反應(yīng)具有特異性、比例性、可逆性、階段性等特點(diǎn),采用方陣滴定法篩選抗原抗體最佳的反應(yīng)條件。在驗(yàn)證本試驗(yàn)建立的iELISA檢測(cè)方法與虎紅平板凝集試驗(yàn)的符合率時(shí),采集了100份未免疫羊場(chǎng)的羊血清,分別用建立的iELISA和虎紅平板凝集試驗(yàn)(RBT)進(jìn)行檢測(cè),結(jié)果顯示,iELISA的陽(yáng)性檢出率略高于虎紅平板凝集試驗(yàn)(11 vs. 8),同時(shí),血清稀釋40倍仍能檢出,提示iELISA具有較高的敏感性。進(jìn)一步比較兩者的符合率,顯示兩種檢測(cè)方法的總體符合率達(dá)到93%,陽(yáng)性符合率75.0%,陰性符合率為94.6%。出現(xiàn)陰性符合率高而陽(yáng)性符合率低,可能是由于iELISA針對(duì)的是OMP16,特異性高,而虎紅平板凝集試驗(yàn)特異性相對(duì)較低,同時(shí),兩者的敏感性也有差異所造成。另外,本試驗(yàn)所檢測(cè)的樣本數(shù)量較少,也是造成陽(yáng)性符合率低的因素,需要進(jìn)一步進(jìn)行大量臨床樣本檢測(cè)數(shù)據(jù)的比對(duì)和驗(yàn)證??傊?,本試驗(yàn)建立的iELISA檢測(cè)方法具有良好的靈敏度和符合度,具有應(yīng)用于生產(chǎn)實(shí)踐中布魯氏菌病的檢測(cè)的潛力,可為Omp16敲除疫苗的應(yīng)用提供鑒別診斷方法。

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