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        黔產(chǎn)道地金釵石斛不同部位多糖含量的測定*

        2021-03-08 10:13:22楊婷婷黃芯琦
        貴州科學(xué) 2021年1期

        楊婷婷,鐘 可,黃芯琦,劉 珂

        (貴州中醫(yī)藥大學(xué),貴州 貴陽 550025)

        金釵石斛(DendrobiumnobileLindl.)為蘭科多年生草本植物,是珍稀名貴中藥石斛的來源之一,具有滋陰養(yǎng)腎,清熱生津的功效[1]。主要分布于我國貴州、四川、廣西、云南和海南等省,在貴州主產(chǎn)于赤水市,有“赤水金釵石斛”之稱,為道地藥材[2-3]。金釵石斛化學(xué)成分有生物堿類、多糖、倍半萜、聯(lián)芐、芴酮、酚酸、苯丙素、菲類、木脂素類化合物,多糖是金釵石斛主要活性成分之一[3-4],現(xiàn)代藥理研究發(fā)現(xiàn)多糖具有抗腫瘤、抗疲勞、降血糖、抗衰老、抗氧化等作用[5-7],因此建立金釵石斛多糖有效、簡便、可靠的測定方法有重要的實踐意義。水提醇沉回流提取法是多糖常用傳統(tǒng)提取方法[8],苯酚-硫酸法也常用于多糖含量的測定。本實驗選取貴州赤水金釵石斛為實驗對象,通過正交設(shè)計對提取溶劑加入量、提取溫度、提取時間、顯色劑用量、顯色反應(yīng)時間進行考察,優(yōu)選最佳提取條件及顯色條件,確定金釵石斛多糖最佳測定方法。金釵石斛的傳統(tǒng)藥用部位為莖,目前研究也集中在金釵石斛莖,對金釵石斛花和葉的研究相對較少,市場上有金釵石斛花茶作為保健品使用,金釵石斛花和葉的開發(fā)利用具有極其廣闊的市場前景。通過建立的方法對金釵石斛莖、花、葉中的多糖含量進行測定,可為金釵石斛的開發(fā)利用提供參考依據(jù)。

        1 材料

        實驗所用12批金釵石斛藥材均采自貴州省赤水市,北緯28°30′50″,東經(jīng)105°52′43″,海拔510 m。均為仿野生栽培品,隨機取樣,樣品來源見表1。經(jīng)貴州中醫(yī)藥大學(xué)鐘可副教授鑒定為蘭科石斛屬植物金釵石斛DendrobiumnobileLindl.。采收后的莖除去雜質(zhì),用開水略燙或烘軟,再邊搓邊烘曬至葉鞘搓凈,于烘箱60 ℃烘干;金釵石斛葉經(jīng)洗凈處理后,于烘箱60 ℃烘干;將金釵石斛花鮮品低溫烘干。以上樣品均粉碎過3號篩備用。D-無水葡萄糖(中國食品藥品檢定研究院,批號110833-201808,僅供國家藥品標準檢驗用),石油醚、無水乙醇、苯酚均為分析純,濃硫酸;實驗用水均為娃哈哈純凈水。紫外分光光度計(上海元析儀器有限公司,UV-5900);電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱(上海博訊公司,GZX-9070MBE);水浴鍋(上海雙捷實驗設(shè)備有限公司,DRHH-S8);超聲機(上海喬躍電子有限公司,JOYN-10A);十萬分之一天平(日本島津公司,ADW120D)、萬分之一天平(梅特勒-托利多上海有限公司,ME204E)。

        表1 樣品來源表

        2 方法與結(jié)果

        2.1 標準曲線的繪制

        以蒸餾水為空白,分別各精密量取濃度為0.10 mg/mL的葡萄糖對照品溶液0.3 mL、0.4 mL、0.5 mL、0.6 mL、0.7 mL,置10 mL具塞試管中,加水至1.0 mL,精密加入臨用配制的5%苯酚溶液l mL,再精密加4 mL硫酸,搖勻,于90 ℃水浴鍋中加熱15 min,取出試管冰浴冷卻5 min。以蒸餾水為空白,按照紫外-可見分光光度法(通則0401),在488 nm 處測定吸光度,以吸光度為縱坐標,濃度為橫坐標,繪制標準曲線,計算回歸方程為A=9.33x+0.0355,r2=0.999。

        2.2 紫外檢測波長的確定

        精密量取葡萄糖對照品溶液0.5 mL于10 mL具塞試管中,精密加入0.5 mL蒸餾水,再加入5%苯酚溶液1.0 mL,迅速加入濃硫酸4.0 mL搖勻,置90 ℃水浴中加熱15 min后取出并冰浴5 min后,并以蒸餾水為空白對照,按照紫外-可見分光光度法(通則0401),在200~800 nm波長范圍內(nèi)進行掃描,測得葡萄糖對照品最大吸收峰在488 nm波長處。掃描結(jié)果見圖1。

        圖1 紫外波長掃描結(jié)果

        2.3 正交設(shè)計優(yōu)選多糖顯色條件與提取工藝

        2.3.1 顯色條件

        通過L9(34)正交實驗,對苯酚與濃硫酸的加入量和反應(yīng)時間進行考察,以吸光度為指標確定最佳加入量與反應(yīng)時間。

        分別精密量取葡萄糖對照品溶液0.5 mL置于10 mL具塞試管中,共9份,精密加入0.5 mL蒸餾水,再加入臨用配置5%苯酚溶液,搖勻,迅速加入濃硫酸,搖勻,置90 ℃水浴中加熱不同時間后,取出冰浴5 min,于488 nm波長處測定吸光度。因素水平見表2,正交實驗結(jié)果見表3,方差分析結(jié)果見表4。

        表2 顯色條件試驗因素

        表3 顯色條件正交試驗結(jié)果

        表4 方差分析結(jié)果

        直觀分析可知,各因素對吸光度的影響順序為A>C>B,方差分析結(jié)果發(fā)現(xiàn)A、B、C均無顯著性影響(P>0.05)。綜合直觀分析及方差分析,選取反應(yīng)條件為A2B1C1時,即苯酚用量為1.0 mL,濃硫酸用量為4 mL,反應(yīng)時間為15 min時,吸光度最高。

        2.3.2 提取方法

        根據(jù)多糖性能選用水提醇沉法進行金釵石斛多糖的提取條件考察,選擇提取溶劑加入量、提取溫度、提取時間3個試驗因素,選用L9(34)正交表對金釵石斛進行石斛多糖的提取與測定,多糖百分含量作為考察指標。

        分別稱取金釵石斛莖粉末0.15 g于250 mL圓底燒瓶中,共9份。各加10 mL石油醚回流脫脂1 h,過濾揮干溶媒。藥渣用10 mL 80%乙醇回流除雜 1 h,過濾水浴揮干。藥渣用不同量的蒸餾水按照不同溫度分別提取不同時間,趁熱過濾,定容至250 mL容量瓶中,搖勻,因素水平表見表5。將分別所得金釵石斛供試品溶液,精密吸取0.5 mL于具塞試管中,精密加入0.5 mL蒸餾水,按“2.3.1”所得的最優(yōu)條件反應(yīng),測得吸光度,分別代入“2.1”項所得的回歸方程,計算多糖濃度。實驗結(jié)果見表6。并以多糖百分含量作為衡量提取效率的客觀指標,優(yōu)選最佳提取工藝。方差分析結(jié)果見表7。

        表5 提取條件試驗因素表

        表6 提取條件正交試驗結(jié)果

        表7 方差分析結(jié)果

        由直觀分析可知,各因素對多糖含量的影響順序為A>B>C,方差分析結(jié)果表明,A、B、C對提取的多糖濃度無顯著性影響(P>0.05)。結(jié)合直觀分析結(jié)果,最佳反應(yīng)條件為A2B2C3時,即提取溫度為100 ℃,加水量為150 mL,提取時間為2 h的條件下,提取的多糖百分含量最高。

        2.4 供試品溶液制備及反應(yīng)條件的確定

        稱取樣品粉末0.15 g,置于250 mL圓底瓶中,加10 mL石油醚回流提取1 h,過濾后揮干溶媒;再加入10 mL 80%乙醇回流1 h,過濾水浴揮干,用150 mL的蒸餾水在100 ℃下回流提取2 h,過濾,殘渣用蒸餾水洗滌,定容至250 mL容量瓶中,搖勻即得供試品溶液。最佳顯色反應(yīng)條件為:取供試品溶液0.5 mL,置10 mL具塞試管中,再加0.5 mL水補至1 mL。取臨用配置5%苯酚溶液l mL,再精密加濃硫酸4 mL,搖勻,于90 ℃水浴鍋中加熱15 min,取出試管冰浴冷卻5 min,在488 nm處測定吸光度。

        2.5 方法學(xué)考察

        2.5.1 精密度試驗

        分別準確量取濃度為0.10 mg/mL的葡萄糖對照品溶液共6份,按“2.4”項下操作,測定對照品溶液吸光度,RSD為1.6%,表明儀器精密度良好。

        2.5.2 重復(fù)性試驗

        精密稱取同一批金釵石斛樣品6份,每份約0.15 g,按“2.4”項下操作,測定每份樣品吸光度,計算多糖的含量為20.14%,RSD為1.83%,表明方法重復(fù)性良好。

        2.5.3 穩(wěn)定性試驗

        精密稱取金釵石斛樣品粉末0.15g,按“2.4”項下操作,分別在0 h、2 h、4 h、8 h、16 h、24 h測定其吸光度,其RSD為1.56%,表明供試品溶液在24 h內(nèi)穩(wěn)定。

        2.5.4 加樣回收率試驗

        精密稱取已知多糖百分比含量為20.14%的金釵石斛莖粉末6份,每份約0.075 g,分別精密加入與樣品中多糖含量相等的D-無水葡萄糖對照品,按“2.4”項下操作,測定樣品吸光度結(jié)果見表8,其RSD為1.32%,平均回收率為100.68%,均符合要求。

        表8 加樣回收率試驗結(jié)果

        2.6 樣品中多糖含量測定結(jié)果

        按“2.4”項下操作,以蒸餾水為空白,對12批樣品進行多糖含量的測定,多糖的百分含量結(jié)果見表9。

        表9 樣品多糖含量測定結(jié)果(n=2)

        由測定結(jié)果可知,12批樣品中,金釵石斛莖中多糖含量最高,為21.88%,莖、花、葉中多糖含量表現(xiàn)為:莖>葉>花。

        3 討論

        實驗通過正交設(shè)計對金釵石斛多糖提取條件以及顯色條件進行考察優(yōu)選。以多糖百分含量為指標,確定最優(yōu)提取條件為:加入蒸餾水150 mL沸騰后回流提取2 h;以吸光度為指標,最佳顯色條件為:加入苯酚1 mL、濃硫酸4 mL,于90 ℃水浴鍋中加熱15 min,取出試管后冰浴冷卻5 min。建立的方法操作簡便,易控制,穩(wěn)定性及精確度高,多糖的得率較高。金釵石斛多糖提取方法多種,如曾雨馨等[8]對金釵石斛多糖超聲提取方法進行了優(yōu)化,荊晶等[9]對微波輔助提取法進行了優(yōu)化,還有酶解輔助提取法等[10],但多糖經(jīng)過超聲或微波處理后其糖苷鍵可能會發(fā)生斷裂,酶解輔助提取法中酶反應(yīng)條件要求嚴格,成本較高[7]。水提醇沉回流提取法一直是金釵石斛多糖常用的傳統(tǒng)提取方法,苯酚-硫酸法也常用于多糖含量的測定,水提法[11-13]目前亦有提取工藝的優(yōu)化,但對苯酚-硫酸法顯色條件的考察較少。本實驗在對水提法的提取工藝優(yōu)化的同時,對顯色條件也進行了優(yōu)選,建立的方法可適用于金釵石斛多糖含量的測定。通過實驗建立的方法,對金釵石斛不同部位多糖的含量進行了測定,金釵石斛的傳統(tǒng)藥用部位為莖,實驗結(jié)果也表明了莖中多糖含量高于葉與花,但金釵石斛葉與花中亦有較高的多糖含量,可為金釵石斛的開發(fā)利用提供參考依據(jù)。

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