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        上調(diào)脂蛋白酯酶基因?qū)穹至寻Y大鼠的干預(yù)效果及作用機制研究

        2021-03-06 04:44:36余軍軍
        關(guān)鍵詞:海馬精神分裂癥模型

        佘 意,余軍軍,呂 媛

        (1.湖南省第二人民醫(yī)院精神科,中國 長沙 410007;2.湖南師范大學(xué)醫(yī)學(xué)院,分子流行病學(xué)湖南省重點實驗室,中國 長沙 410013)

        精神分裂癥屬于一種較為常見的精神疾病,該病以精神活動與環(huán)境不協(xié)調(diào)為主要特征表現(xiàn),患者多存在思維、知覺、情感及行為障礙,目前臨床上認(rèn)為遺傳學(xué)變異、表現(xiàn)遺傳突變、環(huán)境因素相互作用下誘導(dǎo)精神分裂癥的發(fā)生,但其具體作用機制尚不完全明確[1]。研究表明,脂蛋白脂酶(LPL)為甘油三酯水解過程中的一種關(guān)鍵酶,其廣泛存在于大腦組織中的認(rèn)知、記憶、學(xué)習(xí)等區(qū)域中,屬于血脂異常、冠心病、阿爾茲海默病的高危影響因素之一[2]?;谏鲜鲅芯勘尘?,本文研究上調(diào)LPL基因?qū)穹至寻Y大鼠的干預(yù)效果及作用機制,以明確LPL基因與精神分裂癥的作用關(guān)系,為臨床應(yīng)用提供參考。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        選取60只SPF級SD雄性大鼠,8~12周齡,購自慕恩(廣州)生物科技有限公司,動物許可證號:SYXK(粵)2020-0225,體重185~220 g,所有大鼠均在相對濕度為30%~50%、溫度為(23.8±1.5)℃的環(huán)境下預(yù)喂養(yǎng)7 d,每日光照12 h,分籠飼養(yǎng)。本研究獲我院倫理委員會批準(zhǔn),實驗操作嚴(yán)格按照動物實驗倫理要求相關(guān)規(guī)定進(jìn)行。

        主要試劑:LPL載體構(gòu)建及慢病毒載體滴定由上海吉瑪公司完成;MK801購自美國Sigma公司;小鼠抗大鼠CREB抗體、兔抗大鼠p-CREB抗體、兔抗人BDNF抗體、兔抗大鼠TrkB抗體、小鼠抗大鼠p-TrkB抗體購自Cell Signaling Technology。

        1.2 方法

        1.2.1 LPL載體構(gòu)建 使用GenBank查找序列獲得LPL基因序列,構(gòu)建LPL下調(diào)轉(zhuǎn)染質(zhì)粒、LPL上調(diào)轉(zhuǎn)染質(zhì)粒,由上海吉瑪公司設(shè)計并合成,并做慢病毒滴度測定(病毒滴度為1×1012TU·L-1)。LPL引物序列:上游:5’-CTGTGTGGGACTTATTGAGGTGGT-3’,下游:5’-ACTGATGTAGTGTGTGGCTGTTGA-3’;LPL引物序列:上游:5’-CGCTTCTTTGCCAACATCGT-3’,下游:5’-ACACTCCATGCTGTCATCTTGA-3’。

        1.2.2 分組及建模 將所選取的60只大鼠隨機分為正常組、模型組、下調(diào)組、上調(diào)組各15只,模型組、下調(diào)組、上調(diào)組大鼠參照房茂勝等[3]研究中精神分裂癥模型的建立方法構(gòu)建精神分裂癥大鼠模型,取MK801,在使用前先稀釋為0.1 g·L-1的注射藥液,在恒溫狀態(tài)下水浴震蕩20 min,在每日9:00~10:00將0.3 μg·g-1的MK801注射于大鼠左或者右下側(cè)腹腔略靠近外科1/3處(左、右側(cè)每日交替),連續(xù)注射1周。正常組注射等劑量的生理鹽水。

        1.2.3 LPL慢病毒載體滴定 建模成功后在下調(diào)組大鼠海馬組織注射含10 μL LPL的下調(diào)質(zhì)粒慢病毒懸液,上調(diào)組大鼠海馬組織注射含10 μL LPL的上調(diào)質(zhì)粒慢病毒懸液。正常組、模型組大鼠注射等量生理鹽水。7 d后觀察大鼠變化。

        1.2.4 LPL慢病毒載體滴定效率鑒定 在LPL慢病毒載體滴定完成7 d后隨機取各組中3只大鼠使用5%苯巴比妥做常規(guī)腹腔注射麻醉后處死,迅速取海馬組織,采用實時熒光定量PCR法檢測LPL慢病毒載體滴定效率,提取并鑒定海馬組織總RNA含量、純度,使用Takara逆轉(zhuǎn)錄試劑盒行逆轉(zhuǎn)錄處理后獲得cDNA,采用Primer 5.0軟件設(shè)計引物序列。以U6為內(nèi)參照,LPL上游序列5’-AGCTGTGCCTGTGATTGTAGCATTC-3’,下游序列:5’-AACATGTGAGTAAGGCTGCCACTAG-3’;U6上游序列5’-GCTTCGGCAGCACATATACTAAAA-3’,下游序列5’-CGCTTCACGAATTTGCGTGTCAT-3’。

        1.2.5 刻板行為評分 依照Sams Dodd和Hoffman標(biāo)準(zhǔn)[4]對各組大鼠進(jìn)行刻板行為評分,10 min·次-1,觀察60 min,共6次,評分標(biāo)準(zhǔn):0分:大鼠靜止不動,無活動或者幾乎不活動;1分:大鼠正?;顒?,偶爾有向前的運動;2分:大鼠活動并伴隨著反復(fù)向前探索現(xiàn)象;3分:大鼠活動并持續(xù)向前探索;4分:大鼠存在重復(fù)旋轉(zhuǎn)、抬頭、搖頭表現(xiàn);5分:大鼠出現(xiàn)快速搖頭、轉(zhuǎn)圈或者頭的背腹運動。

        1.2.6 共計失調(diào)評分 對各組大鼠進(jìn)行共濟失調(diào)評分[5],10 min·次-1,觀察60 min,共6次,評分標(biāo)準(zhǔn):0分:大鼠協(xié)調(diào)運動;1分:大鼠存在輕度搖晃現(xiàn)象,搖擺運動,豎立不倒;2分:大鼠存在中度的不協(xié)調(diào)運動,偶爾跌倒;3分:大鼠無力支撐體重,爬行運動;4分:大鼠無運動,躺向一邊。

        1.2.7 水迷宮試驗 采用水迷宮試驗評價大鼠平均逃避潛伏期、穿越原平臺位置次數(shù)連續(xù)測量3次,取均值。

        1.2.8 樣本采集 在各組大鼠上述操作完成后,使用5%苯巴比妥做常規(guī)腹腔注射麻醉后處死,立即取海馬組織,分為均勻3等份,其中1等份做組織切片行病理組織學(xué)觀察,另外兩份在液氮中保存用于后續(xù)指標(biāo)檢測。

        1.2.9 病理組織學(xué)觀察 取所制備的海馬組織,固定1 d后,使用酒精脫水、二甲苯透明處理后做常規(guī)石蠟包埋,做5 μm切片,做HE染色,樹膠封片后使用光學(xué)顯微鏡觀察大鼠海馬組織病理變化。

        1.2.10 Glu-DA神經(jīng)遞質(zhì)系統(tǒng)指標(biāo)檢測 取1等份液氮中所保存的海馬組織,采用分光光度計檢測海馬組織中NO活性和MDA含量。采用實時熒光定量PCR法檢測海馬組織中nNOS mRNA表達(dá)量;采用HPLC-ECD法測定海馬組織中DA和Glu水平。

        1.2.11 海馬組織CREB/BDNF/TrkB信號通路蛋白表達(dá)量檢測 采用Western blot法檢測大鼠海馬組織CREB/BDNF/TrkB信號通路蛋白CREB,p-CREB,BDNF,TrkB及p-TrkB表達(dá)量,取1等份液氮中所保存的海馬組織,將所制備的海馬組織做10 000×g離心處理10 min,提取上清液,BCA進(jìn)行蛋白定量檢測,DAB顯色,定量分析蛋白表達(dá)情況,內(nèi)參為GAPDH。

        1.3 統(tǒng)計學(xué)處理

        采用SPSS 20.0統(tǒng)計軟件進(jìn)行處理。計量資料采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差描述,多組間比較采用完全隨機設(shè)計方差分析,P≤0.05為差異具有統(tǒng)計學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 LPL基因轉(zhuǎn)染效率鑒定

        如表1所示,與正常組相比,模型組、下調(diào)組LPL基因表達(dá)量降低,上調(diào)組LPL基因表達(dá)量升高,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。

        表1 LPL基因轉(zhuǎn)染效率鑒定

        2.2 各組大鼠刻板行為評分、共計失調(diào)評分、平均逃避潛伏期、穿越原平臺位置次數(shù)比較

        如表2所示,與正常組相比,模型組、下調(diào)組、上調(diào)組刻板行為評分、共計失調(diào)評分、平均逃避潛伏期升高,穿越原平臺位置次數(shù)降低,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);與模型組、下調(diào)組相比,上調(diào)組刻板行為評分、共計失調(diào)評分、平均逃避潛伏期降低,穿越原平臺位置次數(shù)升高,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。

        表2 各組大鼠刻板行為評分、共計失調(diào)評分、平均逃避潛伏期、穿越原平臺位置次數(shù)比較

        2.3 病理組織學(xué)觀察

        如圖1所示,正常組大鼠海馬組織結(jié)構(gòu)正常,海馬神經(jīng)元細(xì)胞(箭頭處)正常;模型組大鼠海馬神經(jīng)元變性,細(xì)胞核固縮(箭頭處),神經(jīng)元細(xì)胞層減少;下調(diào)組大鼠海馬神經(jīng)元變性,存在較為明顯的細(xì)胞核固縮現(xiàn)象(箭頭處),神經(jīng)元細(xì)胞層明顯減少。上調(diào)組大鼠存在局灶性的神經(jīng)元變性現(xiàn)象,少量細(xì)胞核固縮(箭頭處),組織學(xué)正常。

        圖1 病理組織學(xué)觀察(HE×400)Fig. 1 Histopathological observation (HE×400)

        2.4 各組大鼠Glu-DA神經(jīng)遞質(zhì)系統(tǒng)指標(biāo)比較

        如表3所示,與正常組相比,模型組、下調(diào)組、上調(diào)組NO活性、MDA含量、nNOS mRNA、DA水平升高,Glu水平降低,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);與模型組、下調(diào)組相比,上調(diào)組NO活性、MDA含量、nNOS mRNA、DA水平降低,Glu水平升高,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。

        表3 各組大鼠Glu-DA神經(jīng)遞質(zhì)系統(tǒng)指標(biāo)比較

        2.5 各組大鼠海馬組織中CREB/BDNF/TrkB信號通路蛋白表達(dá)量比較

        如表4所示,與正常組相比,模型組、下調(diào)組、上調(diào)組的CREB,p-CREB,BDNF,TrkB及p-TrkB蛋白表達(dá)量降低,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);與模型組、下調(diào)組相比,上調(diào)組的CREB,p-CREB,BDNF,TrkB及p-TrkB蛋白表達(dá)量升高,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。

        表4 各組大鼠海馬組織中CREB/BDNF/TrkB信號通路蛋白表達(dá)量比較

        圖2 CREB/BDNF/TrkB信號通路蛋白表達(dá)WB圖 Fig. 2 WB graph of protein expression of CREB/BDNF/TrkB signaling pathway

        3 討論

        目前臨床上對于精神分裂癥的具體發(fā)病機制仍處于不斷研究中,尚不完全明確,認(rèn)為此病的發(fā)生與神經(jīng)細(xì)胞膜相關(guān),神經(jīng)細(xì)胞膜主要包括花生四烯酸、二十二碳六烯酸,在神經(jīng)發(fā)育的過程中多不飽和脂肪酸水平降低可增強血清、腦組織中PLA2的活性,進(jìn)而誘導(dǎo)精神分裂癥的發(fā)生。

        LPL基因定位于染色體8p22上,其長度大約為36 000 bp,由9個內(nèi)含子和10個外顯子所構(gòu)成,在脊髓、大腦、外周神經(jīng)中廣泛存在,當(dāng)大腦損傷或者周圍神經(jīng)阻滯供血被阻斷后LPL含量顯著升高,修復(fù)損傷的神經(jīng)組織[6-8]。臨床表明精神分裂癥的發(fā)生與人染色體8p22區(qū)域相關(guān),而LPL基因同樣定位于染色體8p22上,因此推測LPL基因與精神分裂癥可能相關(guān)。但目前臨床上對于LPL基因與精神分裂癥的關(guān)系研究較少,僅有邢洪源等[2]發(fā)現(xiàn)LPL基因mRNA在精神分裂癥模型大鼠腦組織中的低表達(dá)。基于此背景,本文推測LPL基因可能作為精神分裂癥的靶點。上調(diào)和下調(diào)LPL基因?qū)穹至寻Y動物模型的影響試驗結(jié)果顯示,LPL基因與精神分裂癥相關(guān),上調(diào)LPL基因可阻止海馬組織進(jìn)一步受損,抑制疾病進(jìn)展。

        CREB/BDNF/TrkB信號通路與神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育相關(guān),維持神經(jīng)系統(tǒng)功能,其中BDNF屬于一種較為重要的腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子,其在神經(jīng)元生長分化、突出可塑性、抗神經(jīng)元凋亡等過程中具有重要的意義[9]。而CREB屬于BNDF的上游轉(zhuǎn)錄因子,其具有對多種記憶相關(guān)蛋白表達(dá)的調(diào)節(jié)功能,其自身及磷酸化后均會在一定程度上抑制BDNF表達(dá),促進(jìn)BDNF下游調(diào)控因子TrkB磷酸化[10]。Guo等[11]在其研究中發(fā)現(xiàn),上調(diào)CREB/BDNF/TrkB信號通路可改善精神分裂癥認(rèn)知障礙。神經(jīng)遞質(zhì)系統(tǒng)紊亂與精神分裂癥發(fā)生后的海馬神經(jīng)元損失相關(guān),Glu-DA神經(jīng)遞質(zhì)系統(tǒng)在精神分裂癥發(fā)生后出現(xiàn)明顯的紊亂表現(xiàn)[12]。本文結(jié)果顯示,上調(diào)LPL基因可能經(jīng)激活CREB/BDNF/TrkB信號通路,穩(wěn)定Glu-DA神經(jīng)遞質(zhì)系統(tǒng),發(fā)揮其改善精神分裂癥認(rèn)知的作用。

        綜上所述,本研究發(fā)現(xiàn)上調(diào)LPL基因后可在一定程度上修復(fù)精神分裂癥大鼠海馬組織損傷,其作用機制可能與激活CREB/BDNF/TrkB信號通路,穩(wěn)定Glu-DA神經(jīng)遞質(zhì)系統(tǒng),改善NO,MDA,nNOS,DA及Glu異常表達(dá)相關(guān)。但由于本研究動物樣本數(shù)量有限,該結(jié)論尚需后續(xù)試驗進(jìn)一步證實。

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