黃 露,譚清群,李添瓊,唐靖文,秦智慧,王國立,吳石平
(1 貴州省農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護(hù)研究所,貴陽,550009;2 貴州省修文縣農(nóng)業(yè)局,貴州修文,550200;3 貴州省修文縣獼猴桃產(chǎn)業(yè)發(fā)展局,貴州修文,550200)
貴州自1988年起開始種植獼猴桃,目前種植面積已超過3.33萬hm2。修文縣2016年種植面積已達(dá)1.06萬hm2,且在不斷擴(kuò)大,是貴州的獼猴桃主產(chǎn)區(qū),但近幾年獼猴桃生產(chǎn)上受到病害的制約,其中,危害最大的是獼猴桃潰瘍病。獼猴桃潰瘍病是一種極具毀滅性的細(xì)菌性病害,病原菌為丁香假單胞桿菌獼猴桃致病變種(Pseudomonassyringaepv.actinidiae,Psa),其為害獼猴桃植株的枝干、葉片及花等部位,造成枝蔓、葉枯死,花蕾萎蔫脫落,果實(shí)干縮、脫落,整株枯死,造成果園大量減產(chǎn),嚴(yán)重的甚至毀園[1-2]。新西蘭、意大利及我國陜西、四川等地的獼猴桃園,由于潰瘍病的爆發(fā)及流行,短時間內(nèi)造成了巨大的經(jīng)濟(jì)損失[3-5]。由于不同地區(qū)分離到的獼猴桃潰瘍病菌在致病力、抗藥性、生長狀況等生物學(xué)特性上差異較大,因此研究病菌的群體遺傳多樣性具有重要意義。Lee等[6]采用RAPD方法研究發(fā)現(xiàn),日本及韓國的Psa具有不同的系統(tǒng)發(fā)育起源。Ferrante等[7]利用ERIC-PCR和BOX-PCR分析發(fā)現(xiàn),意大利的Psa菌株與20世紀(jì)危害嚴(yán)重的Psa菌株表現(xiàn)出不同的指紋圖譜。有研究認(rèn)為,Psa分為4個生物型,Psa1型病菌分布于日本、意大利,Psa2型病菌分布于韓國,Psa3型廣泛分布于歐洲、新西蘭、智利、中國,Psa4型僅在新西蘭和澳大利亞有分布[8-10]。Cunty等[11]通過4個基因(gapA、gltA、gyrB和rpoD)進(jìn)行多樣性分析,發(fā)現(xiàn)Psa1、Psa2和Psa3在基因上有很大的相關(guān)性,且與Pseudomonassyringaepv.theae同源關(guān)系較近,而Psa4則與其同源關(guān)系較遠(yuǎn)。高小寧等[12]通過Rep-PCR分析發(fā)現(xiàn),陜西省獼猴桃潰瘍病菌基因組存在豐富的遺傳多樣性。目前,貴州修文獼猴桃潰瘍病菌還沒有系統(tǒng)性地進(jìn)行分離鑒定及遺傳多樣性研究。本研究系統(tǒng)地對貴州修文的獼猴桃潰瘍病菌進(jìn)行分離鑒定,并利用ERIC-PCR分析病菌群體的遺傳多樣性,可為病菌檢測、發(fā)生流行規(guī)律研判、抗病種選育和病害防控等提供參考。
1.1.1 獼猴桃潰瘍病菌分離材料 2016—2017年,在貴州修文多個貴長獼猴桃果園采集感染潰瘍病的獼猴桃枝條、葉片、花蕾等材料,進(jìn)行潰瘍病菌的分離。
1.1.2 培養(yǎng)基 LB培養(yǎng)基:蛋白胨10 g,酵母粉5 g,NaCl 10 g,蒸餾水1 000 mL,pH值7.0~7.2,固體培養(yǎng)基則加入15 g/L的瓊脂,121 ℃滅菌20 min,用于獼猴桃潰瘍病菌的分離純化。
1.1.3 引物 細(xì)菌16S rDNA通用引物:27F: 5’-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3’,1492R: 5’-TACGGCTACCTTGTTACGACTT-3’。ERIC引物:ERIC1:5’-ATGTAAGCTCCTGGGGATTCAC-3’,ERIC2:5’-AAGTAAGTGACTGGGGTGAGCG-3’。所有引物均由上海捷瑞生物工程有限公司合成。
1.1.4 試劑和儀器 細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒購自天根生化科技(北京)有限公司;無水乙醇、 異丙醇均為國產(chǎn)分析純等級;凝膠成像儀為Gel Doc-ItTMUVP凝膠成像系統(tǒng);PCR儀為BIO-RAD。
1.2.1 獼猴桃潰瘍病菌分離保存 采用平板劃線法進(jìn)行分離。分別取感染潰瘍病的貴長獼猴桃枝條、葉片、花蕾等材料,用75%酒精和2%次氯酸鈉溶液進(jìn)行表面消毒,用滅菌去離子水洗3次,取少量病健交界處的組織轉(zhuǎn)移到含有0.5 mL無菌生理鹽水無菌培養(yǎng)皿中,靜置10~15 min,形成細(xì)菌懸浮液。采用滅菌移植環(huán)蘸取少量懸浮液在LB平板培養(yǎng)基上劃線,28 ℃培養(yǎng)48 h,觀察結(jié)果,并挑取單菌落在LB培養(yǎng)基上轉(zhuǎn)接純化2~3次后,-80 ℃保存[13]。
1.2.2 獼猴桃潰瘍病菌16s rDNA鑒定 分離到的病菌用細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒提取基因組DNA。對提取的樣品DNA進(jìn)行16s rDNA擴(kuò)增測序。PCR反應(yīng)體系(25 μL)包括:9.5 μL ddH2O,12.5 μL PCR Mix,1 μL 27F/1492R引物(10 mmol·L-1),1 μL模板DNA。PCR循環(huán)參數(shù)為:95 ℃熱變性10 min;95 ℃ 30 s,57 ℃ 40 s,72 ℃ 90 s,35個循環(huán);72 ℃延伸10 min;最后在4 ℃停止反應(yīng)[14]。采用質(zhì)量分?jǐn)?shù)1.2% 的瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR產(chǎn)物,并將有條帶的PCR產(chǎn)物送樣測序。將測序結(jié)果進(jìn)行Blast比對,采用BioEdit軟件對從NCBI數(shù)據(jù)庫中獲取的可信度較高的相似序列進(jìn)行多序列比對,然后用MEGA 6.0軟件進(jìn)行系統(tǒng)發(fā)育樹構(gòu)建和聚類分析。
1.2.3 獼猴桃潰瘍病菌ERIC-PCR多態(tài)性分析 使用Rep-PCR引物ERIC1/ERIC2對分離菌株基因組DNA進(jìn)行擴(kuò)增分析。25 μL PCR 反應(yīng)體系如下:9.5 μL ddH2O,12.5 μL PCR Mix,1 μL ERIC1/ERIC2引物(10 μmol·L-1),1 μL模板DNA。PCR循環(huán)參數(shù)為:95 ℃預(yù)變性7 min;94 ℃ 1 min,52 ℃ 1 min,65 ℃ 8 min,共35個循環(huán);65 ℃延伸15 min。采用質(zhì)量分?jǐn)?shù)2%的瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR產(chǎn)物,上樣量10 μL,電壓100 V,電泳90 min,用Gel Doc-ItTMUVP凝膠成像儀拍攝[12]。使用Quantity One對電泳圖片進(jìn)行分析,以2進(jìn)制統(tǒng)計(jì)各引物對所有樣品的擴(kuò)增條帶,有條帶記1,無條帶記0。使用軟件NTSYS Version 2.1中的Similarity法計(jì)算相似系數(shù),使用軟件SAHN Clusteringz中的UMPGA方法進(jìn)行聚類分析。
通過對貴州修文感染潰瘍病的貴長獼猴桃枝條、葉片、花蕾等材料進(jìn)行獼猴桃潰瘍病病原菌分離,共分離到35株病菌(見表1)。
表1 貴州修文分離到的獼猴桃潰瘍病菌菌株
分析結(jié)果顯示,35株分離病菌的16S rDNA序列與NCBI網(wǎng)站上的Psa菌株的同源性達(dá)到99%,在構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育樹上,35株細(xì)菌均與Psa聚在一支(見圖1)。說明,35株分離的獼猴桃潰瘍病病原菌為Pseudomonassyringaepv.actinidiae。
圖1 貴州修文獼猴桃潰瘍病分離菌株基于16S rDNA序列的系統(tǒng)發(fā)育樹
對分離到的35株病菌進(jìn)行ERIC-PCR引物擴(kuò)增,大小片段100~2 000 bp之間(見圖2)。聚類分析結(jié)果顯示,在相似系數(shù)為0.808時,可將分離到的35株病菌分為4個不同的類群,有30株(占85.7%)屬于第一類群,同一器官(如葉片)分離到潰瘍病菌可分散在不同類群中,同一地區(qū)采集分離到的病原菌也可分散在不同類群中(見圖3)。表明,修文獼猴桃潰瘍病菌遺傳多樣性豐富。
圖2 貴州修文獼猴桃潰瘍病分離菌株ERIC-PCR擴(kuò)增結(jié)果
圖3 貴州修文獼猴桃潰瘍病分離菌株基于ERIC-PCR的聚類分析結(jié)果
在本研究中,對貴州省修文縣貴長獼猴桃感染潰瘍病的枝條、葉片、花蕾等材料進(jìn)行病菌分離,分離到35株病菌,進(jìn)行細(xì)菌16S rDNA鑒定,均為Pseudomonassyringaepv.actinidiae;運(yùn)用ERIC-PCR分析病菌群體的遺傳多樣性,在相似系數(shù)為0.808時,所有菌株可分為4個類群,85.7%的菌株屬于第一類群,同時無明顯的采集地、采集部位聚類現(xiàn)象,表明貴州貴長獼猴桃潰瘍病菌存在豐富的遺傳多樣性。但本研究只在修文縣采集了一個獼猴桃品種(貴長)的潰瘍病菌進(jìn)行遺傳多樣性分析,代表程度有局限性,以后的研究應(yīng)加大采樣品種及地區(qū)數(shù)量,以便更好地闡明貴州獼猴桃潰瘍病病菌遺傳多樣性。