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        自噬標(biāo)志物L(fēng)C3的節(jié)律表達(dá)破壞參與β1-AA誘導(dǎo)的H9c2大鼠心肌細(xì)胞死亡*

        2021-02-05 01:02:22賈微微李朋佳陸潔蓓王曉暉
        中國(guó)病理生理雜志 2021年1期

        賈微微, 寧 娜, 孫 聰, 李朋佳, 陸潔蓓, 張 晟,原 媛 , 王 麗 ,3, 王曉暉 ,3△

        (山西醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院 1病理教研室,2形態(tài)學(xué)實(shí)驗(yàn)室,3基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)研究中心,山西太原030001)

        心功能不全是多種心臟疾病的終末階段,是重要的全球公共健康問(wèn)題,但發(fā)病機(jī)制尚未完全闡明[1]。研究表明,在40%~60%心功能不全患者血清中可檢測(cè)到針對(duì)自身β1-腎上腺素受體(β1-adrenergic receptor,β1-AR)產(chǎn)生的自身抗體(β1-AR autoantibodies,β1-AA)[2]。β1-AA 可以持續(xù)激活 β1-AR 導(dǎo)致心肌細(xì)胞死亡,從而參與心功能不全的發(fā)生發(fā)展[3]。然而,β1-AA引起心肌細(xì)胞死亡的機(jī)制尚不明確。

        自噬是一種細(xì)胞自主的防御機(jī)制,可將細(xì)胞質(zhì)內(nèi)的一些物質(zhì)運(yùn)輸?shù)饺苊阁w內(nèi)進(jìn)行消化降解[4]。自噬被認(rèn)為是細(xì)胞死亡和存活之間的交匯點(diǎn),可以保護(hù)心肌細(xì)胞免于凋亡和其他重大傷害[5]。早在1970年,Pfeifei[6]在電鏡下就觀察到小鼠心肌、視網(wǎng)膜和胰腺等多種組織細(xì)胞中存在自噬體數(shù)量的節(jié)律性波動(dòng)。自噬標(biāo)志蛋白微管相關(guān)蛋白1 輕鏈3(microtubule-associated protein 1 light chain 3,LC3)的表達(dá)水平在小鼠肝臟中也呈現(xiàn)出顯著的震蕩節(jié)律[7-8]。

        特異性敲除小鼠心肌自噬相關(guān)基因ATG5可以使自噬的節(jié)律喪失,誘導(dǎo)心功能下降[9],提示自噬震蕩節(jié)律的異??梢杂绊懶募〖?xì)胞。然而,β1-AA 對(duì)心肌細(xì)胞自噬標(biāo)志物L(fēng)C3 的節(jié)律表達(dá)是否有影響及其對(duì)心肌細(xì)胞死亡的作用目前尚不清楚。因此,本研究用β1-AR 細(xì)胞外第二環(huán)(the second extracellular loop of β1-AR,β1-AR-ECII)抗原肽段主動(dòng)免疫大鼠,再將從大鼠血清中提純的β1-AA作用于H9c2大鼠心肌細(xì)胞,觀察LC3 的節(jié)律性表達(dá),探究自噬節(jié)律的破壞是否參與β1-AA 誘導(dǎo)的心肌細(xì)胞死亡,以期為β1-AA陽(yáng)性心功能不全患者的治療提供實(shí)驗(yàn)參考資料。

        材 料 和 方 法

        1 材料

        1.1 動(dòng)物及細(xì)胞 清潔級(jí)8 周齡雄性Sprague-Dawley(SD)大鼠12只,體質(zhì)量180~200 g,由山西醫(yī)科大學(xué)動(dòng)物中心[許可證號(hào):SCXK(晉)2015-0001]提供。H9c2細(xì)胞系由中國(guó)科學(xué)院上海細(xì)胞庫(kù)提供。

        1.2 主要試劑 β1-AR-ECII 抗原肽段(吉爾生化上海有限公司);抗LC3 抗體和抗Per2 抗體(Abcam);抗GAPDH 抗體、辣根過(guò)氧化酶標(biāo)記的山羊抗小鼠IgG 和辣根過(guò)氧化酶標(biāo)記的山羊抗兔IgG(中杉金橋公司);RNAiso Plus、PrimeScript RT Master Mix 和SYBR Premix Ex TaqTMII(TaKaRa);胎牛血清(中喬新舟公司);Cell Counting Kit-8(CCK-8;Dojindo);地塞米松(索萊寶科技有限公司);慢病毒(lentivirus,LV)-shPer2 和LV-NC(中國(guó)漢恒生物科技有限公司)。

        1.3 主要儀器 Heracell 150i CO2恒溫細(xì)胞培養(yǎng)箱(Thermo Scientific);酶聯(lián)免疫檢測(cè)儀(SoftMax);LR56495 低溫高速離心機(jī)(Thermo Fisher);PCR 擴(kuò)增儀(Stratagene);熱循環(huán)儀(MJ Research);垂直電泳儀和半干轉(zhuǎn)轉(zhuǎn)膜儀(BIO-RAD);BioSpectrum 810 凝膠成像系統(tǒng)(UVP)。

        2 實(shí)驗(yàn)方法

        2.1 建立主動(dòng)免疫大鼠模型 參照文獻(xiàn)進(jìn)行大鼠主動(dòng)免疫[10],誘導(dǎo)其血清中產(chǎn)生β1-AA,具體實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)見(jiàn)圖1A。選取12 只8 周齡雄性SD 大鼠按隨機(jī)數(shù)字表法分為免疫組(β1-AR 組)和對(duì)照(control)組,每組6 只。使用Na2CO3溶液溶解β1-AR-ECII 抗原肽段,按1∶1的比例與完全弗氏佐劑乳化混勻后,于SD大鼠背部皮下多點(diǎn)注射法進(jìn)行首次免疫(0.4 μg/g),隨后將已稀釋的β1-AR-ECII 抗原肽段與不完全弗氏佐劑1∶1乳化,采用單點(diǎn)背部皮下注射,每隔2周加強(qiáng)免疫 1 次,共免疫 8 周;control 組用等量 Na2CO3溶液替代抗原溶液,實(shí)驗(yàn)方案同免疫組。隨后從血清中檢測(cè)并提純?chǔ)?-AA。

        2.2 鏈霉抗生物素蛋白(streptavidin,SA)-酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)檢測(cè)β1-AA 使用β1-AR-ECII 抗原肽段(10 mg/L)包被空白ELISA 板,加入磷酸鹽緩沖液、待測(cè)血清、生物素標(biāo)記的Ⅱ抗和辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的SA,且以上各步驟均在37℃水浴1 h;底物顯色30 min;最后檢測(cè)405 nm 處吸光度(A),計(jì)算P/N 值判定結(jié)果。P/N=(標(biāo)本A值-空白對(duì)照A值)/(陰性對(duì)照A值-空白對(duì)照A值),P/N≥2.1 定為抗體陽(yáng)性,P/N≤1.5定為抗體陰性。

        2.3 純化β1-AA 冰箱取出層析柱放置室溫30 min,三蒸水沖洗保存在柱子中的乙醇,用結(jié)合緩沖液沖洗柱子,使用含有β1-AA 的血清濾過(guò)柱子并用洗脫緩沖液沖洗柱子,使β1-AA 隨同洗脫緩沖液一起滴到EP管中。

        2.4 細(xì)胞培養(yǎng)及處理 培養(yǎng)H9c2 細(xì)胞至匯合度達(dá)80%左右時(shí)用終濃度0.1 μmol/L[11]的地塞米松溶液同步化處理3 h,同步化結(jié)束時(shí)間記為CT0。細(xì)胞隨機(jī)分為 4 組:control 組(1 μmol/L 陰性 IgG 處理細(xì)胞)、β1-AA組(1 μmol/L β1-AA處理細(xì)胞)、LV-NC組(LV-NC 感染細(xì)胞,MOI=30)和 LV-shPer2 組(LV-shPer2 感染細(xì)胞,MOI=30)。各組細(xì)胞分別在同步化并給藥誘導(dǎo)之后于不同時(shí)點(diǎn)(CT0、CT4、CT8、CT12、CT16和CT20)收樣,用于后續(xù)研究。

        2.5 通過(guò)慢病毒感染敲減Per2基因 參照文獻(xiàn)[12],采用慢病毒感染H9c2 細(xì)胞以敲減Per2基因,進(jìn)而得到LC3 節(jié)律異常的細(xì)胞。由上海漢恒生物科技有限公司協(xié)助構(gòu)建含shPer2 質(zhì)粒同時(shí)帶有GFP 的慢病毒。采取1/2小體積感染法:前一日進(jìn)行細(xì)胞計(jì)數(shù)和傳代,次日細(xì)胞換液后加入1/2 體積培養(yǎng)基,根據(jù)最佳MOI加入適宜體積的慢病毒,感染4 h后加入另外1/2 體積新鮮培養(yǎng)基,12~16 h 后將含病毒的培養(yǎng)基換為普通完全培養(yǎng)液。

        2.6 Western blot 實(shí)驗(yàn) 采用Western blot 法檢測(cè)各時(shí)點(diǎn)LC3 和Per2 蛋白的表達(dá)。同2.4 處理后于各時(shí)點(diǎn)收集細(xì)胞,BCA法測(cè)蛋白濃度,定量的蛋白經(jīng)SDSPAGE分離后,轉(zhuǎn)至PVDF膜,奶粉室溫封閉2 h,相應(yīng)抗體4℃孵育過(guò)夜,TBST 洗膜后加入相應(yīng)Ⅱ抗室溫孵育2 h。利用凝膠成像系統(tǒng)曝光,使用ImageJ 軟件對(duì)圖像進(jìn)行灰度分析。

        2.7 real-time PCR 實(shí)驗(yàn) 采用 real-time PCR 檢測(cè)Per2 mRNA 表達(dá)和各時(shí)點(diǎn)LC3 mRNA 表達(dá)。將各組細(xì)胞處理,充分裂解后收集細(xì)胞,提取總RNA 并反轉(zhuǎn)錄為cDNA,使用SYBR Green 試劑盒擴(kuò)增cDNA 產(chǎn)物。引物設(shè)計(jì)如下:LC3 的上游引物序列為5′-AGCTCTGAAGGCAACAGCAACA-3′,下游引物序列為 5′-GCTCCATGCAGGTAGCAGGAA-3′;GAPDH 的上游引物序列為5′-GGCACAGTCAAGGCTGAGAATG-3′,下游引物序列為 5′-ATGGTGGTGAAGACGCCAGTA-3′;Per2 的上游引物序列為 5′-AGCAACACCACCTTTCACAA-3′,下 游引 物序 列為 5′-CGTAGGCTTAGACCACCATC-3′。所有結(jié)果用control組 CT0 時(shí) GAPDH 的表達(dá)進(jìn)行標(biāo)化,采用 2-ΔΔCt法進(jìn)行相對(duì)定量。

        2.8 CCK-8 法檢測(cè)細(xì)胞活力 將密度為每孔(2~3)×104的細(xì)胞懸液接種于96 孔板,待細(xì)胞貼壁后更換培養(yǎng)基并對(duì)各組細(xì)胞進(jìn)行加藥處理;藥物作用24 h 后每孔加入CCK-8 溶液10 μL,混勻后繼續(xù)孵育1.5 h;最后檢測(cè)450 nm 處A值,對(duì)各組A值進(jìn)行處理分析得到其相較于control 組細(xì)胞的相對(duì)活力。計(jì)算公式為:細(xì)胞相對(duì)活力(%)=(實(shí)驗(yàn)組A值-空白對(duì)照組A值)/(陰性對(duì)照組A值-空白對(duì)照組A值)×100%。

        3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

        實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)采用SPSS 16.0 軟件進(jìn)行分析,以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)誤(mean±SEM)表示。兩組間比較采用兩獨(dú)立樣本t檢驗(yàn);多組間比較采用單因素方差分析,多重比較采用LSD法。檢驗(yàn)水準(zhǔn)α=0.05。

        采用R 統(tǒng)計(jì)軟件包2.10.0 版進(jìn)行JTK_CYCLE算法[13-15]來(lái)識(shí)別數(shù)據(jù)的循環(huán)變量,以查看24 h 節(jié)律。JTK_CYCLE 算法是一種可以從微陣列數(shù)據(jù)中檢測(cè)循環(huán)記錄的非參數(shù)測(cè)試程序,提供每個(gè)循環(huán)記錄的基于置換的P值(校正的P值),其所需的置信區(qū)間為95%。

        結(jié) 果

        1 主動(dòng)免疫大鼠血清中β1-AA的A值顯著升高

        SA-ELISA 結(jié)果顯示,與 control 組(0.65±0.02)相比,β1-AR 組大鼠血清中 β1-AA 的A值(2.47±0.07)顯著升高(P<0.05),進(jìn)一步采用親和層析法提純?chǔ)?-AA,用于后續(xù)細(xì)胞實(shí)驗(yàn),見(jiàn)圖1。

        2 β1-AA顯著降低H9c2細(xì)胞活力

        CCK-8 結(jié)果顯示,與 control 組相比,1 μmol/L 的β1-AA 作用于H9c2心肌細(xì)胞24 h后細(xì)胞活力顯著下降(P<0.05),見(jiàn)圖2。

        3 β1-AA破壞H9c2細(xì)胞LC3的節(jié)律表達(dá)

        real-time PCR 及 Western blot 結(jié)果顯示,control組LC3 mRNA 和蛋白表達(dá)水平均在CT8~CT12 時(shí)升高,CT12 以后開(kāi)始下降;經(jīng)β1-AA 處理后,LC3 的表達(dá)高峰前移至CT8,見(jiàn)圖3。

        使用JTK_CYCLE 算法對(duì)所得數(shù)據(jù)進(jìn)行分析,可得到 control 組 LC3 的 JTK_CYCLEP值小于 0.05,經(jīng)β1-AA 處理后,LC3 的 JTK_CYCLEP值大于 0.05,見(jiàn)表1。

        4 β1-AA破壞H9c2細(xì)胞Per2蛋白的節(jié)律表達(dá)

        Western blot 結(jié)果顯 示 ,control 組 Per2 蛋白在CT8 和 CT16 時(shí)表達(dá)較高,其中以 CT16 時(shí)最高;經(jīng) β1-AA 處理后,Per2 蛋白的生成高峰前移至CT12,見(jiàn)圖4。

        使用JTK_CYCLE 算法對(duì)所得數(shù)據(jù)進(jìn)行分析,結(jié)果表明 control 組 Per2 蛋白的 JTK_CYCLEP值小于0.05,經(jīng)β1-AA 處理后,JTK_CYCLEP值大于0.05,見(jiàn)表1。

        Figure 1.Detection and purification of β1-AA from rat serum.A:diagram of detection and purification of β1-AA;B:serum β1-AA level in control group and β1-AR active immunization group was determined by SA-ELISA.Mean±SEM. n=6. *P<0.05 vs control group.圖1 β1-AR主動(dòng)免疫后檢測(cè)及提純?chǔ)?-AA

        Figure 2.β1-AA decreased the viability of H9c2 cells.Mean±SEM. n=6. *P<0.05 vs control group.圖2 β1-AA顯著降低H9c2細(xì)胞活力

        5 敲減Per2 基因破壞H9c2 細(xì)胞LC3 節(jié)律表達(dá)后細(xì)胞活力顯著降低

        5.1 慢病毒感染成功敲減H9c2 細(xì)胞的Per2基因采用LV-shPer2感染H9c2細(xì)胞,MOI=30時(shí)熒光強(qiáng)度較高且與MOI=50 時(shí)差異不大(圖5A),故選定MOI為30用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。隨后檢測(cè)病毒對(duì)目的基因Per2的敲減效果,結(jié)果顯示,與LV-NC 感染的H9c2 細(xì)胞(3.69±0.26)相比 ,LV-shPer2 感 染 使 H9c2 細(xì)胞Per2 mRNA 表達(dá)水平(1.98±0.37)顯著降低(P<0.05),見(jiàn)圖5B;Per2 蛋白表達(dá)也顯著降低(1.22±0.25vs0.56±0.09,P<0.05),見(jiàn)圖5C。

        5.2 慢病毒感染敲減Per2基因破壞H9c2 細(xì)胞LC3的節(jié)律表達(dá) Western blot 結(jié)果顯示,LV-NC 組LC3節(jié)律表達(dá)與control 組類(lèi)似,且JTK_CYCLE 算法分析的P值 小 于 0.05,而 LV-shPer2 組 LC3 的 JTK_CYCLEP值大于0.05,見(jiàn)圖6及表1。

        5.3 LC3 節(jié)律表達(dá)破壞可引起H9c2 細(xì)胞活力下降 CCK-8 結(jié)果顯示,LV-NC 組 H9c2 細(xì)胞活力(96.90%±6.42%)與 control 組(97.50%±1.43%)相比無(wú)顯著差異,而破壞LC3 節(jié)律表達(dá)后,細(xì)胞活力顯著下降(37.95%±3.76%,P<0.05),見(jiàn)圖7。

        討 論

        本研究觀察到,β1-AA 可以誘導(dǎo)H9c2 心肌細(xì)胞自噬標(biāo)志物L(fēng)C3 的節(jié)律表達(dá)破壞。研究表明,自噬節(jié)律表達(dá)受生物鐘基因調(diào)控,于是本研究采用LV-shPer2 敲減生物鐘基因Per2以破壞細(xì)胞自噬標(biāo)志物L(fēng)C3 的節(jié)律表達(dá),觀察到心肌細(xì)胞活力顯著下降,提示自噬標(biāo)志物L(fēng)C3 的節(jié)律表達(dá)破壞促進(jìn)β1-AA 誘導(dǎo)的H9c2心肌細(xì)胞死亡。

        β1-AA 是一種針對(duì)β1-AR-ECII 產(chǎn)生的自身抗體[16],可以持續(xù)激活β1-AR導(dǎo)致心肌細(xì)胞死亡[3]。β1-AA可以通過(guò)結(jié)合β1-AR的構(gòu)象表位而影響受體的構(gòu)象和下游cAMP 信號(hào)傳導(dǎo),進(jìn)而誘導(dǎo)MCP-1 蛋白產(chǎn)生,引起心肌細(xì)胞死亡[17]。β1-AA 還可以通過(guò)誘導(dǎo)CD4+T 細(xì)胞增加,導(dǎo)致心肌細(xì)胞凋亡和心力衰竭[18]。本研究也觀察到β1-AA作用H9c2心肌細(xì)胞24 h可顯著降低心肌細(xì)胞活力,與之前的研究一致。

        我們前期研究結(jié)果表明,β1-AA 可顯著抑制心肌細(xì)胞自噬功能,繼而導(dǎo)致線粒體膜電位下降,參與心功能不全的發(fā)生發(fā)展[19]。自噬在生理過(guò)程中起著“管家”的作用,可以清除長(zhǎng)壽、錯(cuò)誤折疊的蛋白質(zhì)和受損的細(xì)胞器,參與細(xì)胞生長(zhǎng)和衰老的調(diào)節(jié)[20]。已有研究表明,細(xì)胞自噬存在節(jié)律性震蕩[21];早在1970年就觀察到大鼠某些組織自噬空泡的豐度在一日中具有節(jié)律性波動(dòng)[6];另有研究表明,LC3-II 蛋白表達(dá)在小鼠肝臟、骨骼肌及腎臟中也具有節(jié)律性[22]。LC3作為自噬的分子標(biāo)記物位于細(xì)胞質(zhì)中,自噬發(fā)生時(shí)LC3-I 與磷脂酰乙醇胺共價(jià)結(jié)合,形成LC3-II 并定位于自噬體膜上參與自噬小體的形成[23]。在本研究中,我們重點(diǎn)關(guān)注自噬標(biāo)志物L(fēng)C3 的節(jié)律表達(dá)情況。為了對(duì)相關(guān)蛋白在24 h 的節(jié)律變化進(jìn)行分析,我們采用的是公認(rèn)的晝夜節(jié)律震蕩性分析軟件JTK_CYCLE[24-25]。JTK_CYCLE 是一種新穎的非參數(shù)統(tǒng)計(jì)算法,采用R 語(yǔ)言來(lái)識(shí)別樣本的循環(huán)變量。而且本研究以H9c2 大鼠心肌細(xì)胞系為研究對(duì)象,細(xì)胞系的節(jié)律不會(huì)被環(huán)境變化所加強(qiáng),所以節(jié)律性震蕩較低,但是經(jīng)過(guò)與其他算法相比較,JTK_CYCLE 算法能很好識(shí)別這些數(shù)據(jù)中的循環(huán)轉(zhuǎn)錄本。而且JTK_CYCLE算法對(duì)于24 h內(nèi)的樣本數(shù)據(jù)較其他算法相比具有更高的特異性和準(zhǔn)確性[13-15]。我們的結(jié)果顯示,control組LC3 的表達(dá)確實(shí)存在顯著節(jié)律性震蕩,LC3 在CT8~CT12時(shí)升高,CT12開(kāi)始下降,提示在主觀白天LC3 的生成處于較低狀態(tài),心肌細(xì)胞產(chǎn)生的衰老、損傷的蛋白質(zhì)會(huì)出現(xiàn)累積,主觀夜間LC3 的生成增多,自噬開(kāi)始發(fā)揮吞噬降解衰老損傷的蛋白質(zhì)及細(xì)胞器的作用,維持心肌細(xì)胞的正常狀態(tài)。由此可見(jiàn),自噬節(jié)律的正常運(yùn)轉(zhuǎn)對(duì)于心肌細(xì)胞穩(wěn)態(tài)的維持至關(guān)重要。而給予β1-AA 處理后LC3 生成的最高點(diǎn)由CT12提前至CT8,JTK_CYCLE 算法分析得出其節(jié)律性震蕩被破壞。這提示β1-AA可以引起H9c2心肌細(xì)胞自噬標(biāo)志物L(fēng)C3的節(jié)律表達(dá)破壞。

        Figure 3.Autophagy marker LC3 rhythm was disrupted in H9c2 cardiomyocytes by β1-AA.The samples were collected every 4 h within 24 h.A:real-time PCR demonstrated that the LC3 mRNA rhythmic expression in the H9c2 cardiomyocytes was disrupted by β1-AA(1 μmol/L);B,C:Western blot showed that the LC3 protein rhythmic expression in the H9c2 cardiomyocytes was disrupted by β1-AA(1 μmol/L).Mean±SEM. n=6.*P<0.05 vs control group.圖3 β1-AA破壞H9c2心肌細(xì)胞自噬標(biāo)志物L(fēng)C3的節(jié)律表達(dá)

        Figure 4.The rhythmic expression of Per2 protein in H9c2 cardiomyocytes was disrupted by β1-AA(1 μmol/L).The samples were collected every 4 h within 24 h.Mean±SEM. n=6.*P<0.05 vs control group.圖4 β1-AA破壞H9c2心肌細(xì)胞Per2蛋白的節(jié)律表達(dá)

        Figure 5.H9c2 cells were infected with LV-shPer2 to knock down the expression of Per2.A:GFP fluorescence images with MOI of 5,10,30 and 50(scale=1 mm);B:real-time PCR showed that the mRNA expression of Per2 was reduced by LV-shPer2(MOI=30)in the H9c2 cardiomyocytes;C:Western blot showed that the protein expression of Per2 was reduced by LV-shPer2(MOI=30)in the H9c2 cardiomyocytes.Mean±SEM. n=6.*P<0.05 vs LV-NC group.圖5 LV-shPer2感染H9c2心肌細(xì)胞敲減Per2的表達(dá)

        Figure 6.The expression of LC3 rhythm was disrupted after LV-shPer2 infection.The samples were collected every 4 h within 24 h.A:real-time PCR demonstrated that the LC3 mRNA rhythmic expression in the H9c2 cardiomyocytes was disrupted by LV-shPer2(MOI=30);B,C:Western blot showed that the LC3 protein rhythmic expression in the H9c2 cardiomyocytes was disrupted by LV-shPer2(MOI=30)Mean±SEM. n=6.*P<0.05 vs LV-NC group.圖6 LV-shPer2敲減Per2使心肌細(xì)胞自噬標(biāo)志物L(fēng)C3節(jié)律破壞

        研究表明,人類(lèi)清醒時(shí),饑餓增加胰島素水平,進(jìn)而激活心臟mTOR 信號(hào)通路,導(dǎo)致自噬節(jié)律異常,從而發(fā)生心功能不全[9,26]。FoxO3 誘導(dǎo)心肌細(xì)胞中幾種自噬相關(guān)基因節(jié)律性異常表達(dá),導(dǎo)致心肌細(xì)胞變小,心功能下降[27]。這些研究表明,自噬節(jié)律異??赡軙?huì)對(duì)心肌細(xì)胞和心功能產(chǎn)生影響。因此,我們需要進(jìn)一步探究β1-AA誘導(dǎo)的H9c2心肌細(xì)胞自噬標(biāo)志物L(fēng)C3的節(jié)律表達(dá)破壞是否參與其細(xì)胞死亡。

        自噬的震蕩節(jié)律受生物鐘調(diào)控[28]。生物晝夜節(jié)律是地球上所有生物體以太陽(yáng)作為參考點(diǎn)將生物周期調(diào)整為近似24 h 的震蕩節(jié)律。轉(zhuǎn)錄-翻譯反饋環(huán)路(transcriptional translation feedback loop,TTFL)是目前公認(rèn)的節(jié)律維持機(jī)制[29]。其中,β-AR活化能夠顯著改變 Per2 蛋白和 mRNA 的節(jié)律性表達(dá)[30],即 β-AR 的激活會(huì)引起生物鐘基因Per2的變化。而且本研究也觀察到,H9c2心肌細(xì)胞control組的Per2蛋白通過(guò)JTK_CYCLE 算法分析表現(xiàn)出顯著的晝夜節(jié)律性震蕩,其表達(dá)量于CT8 和CT16 時(shí)相對(duì)較高,其中以CT16 時(shí)最高;而β1-AA 能夠顯著破壞 Per2 蛋白的晝夜節(jié)律性震蕩,使其生成最高峰前移至CT12。有研究表明,成纖維細(xì)胞Per2基因沉默后,LC3蛋白表達(dá)顯著下降,節(jié)律也出現(xiàn)顯著異常[31]。因此,本研究使用LV-shPer2 感染H9c2 心肌細(xì)胞,降低Per2表達(dá),進(jìn)而破壞自噬標(biāo)志物L(fēng)C3 的節(jié)律表達(dá),結(jié)果細(xì)胞活力出現(xiàn)顯著下降,表明β1-AA 誘導(dǎo)的H9c2 心肌細(xì)胞自噬標(biāo)志物L(fēng)C3 的節(jié)律表達(dá)破壞了參與其細(xì)胞死亡。

        表1 JTK_CYCLE 算法分析LC3 mRNA、LC3 蛋白和Per2蛋白表達(dá)的晝夜節(jié)律參數(shù)Table 1.The circadian parameters of LC3 mRNA,LC3 protein and Per2 protein using JTK_CYCLE algorithm analysis

        Figure 7.The viability of H9c2 cardiomyocytes was reduced after the rhythm of LC3 was destroyed by LV-shPer2.Mean±SEM. n=6.*P<0.05 vs control group;#P<0.05 vs LV-NC group.圖7 LV-shPer2 敲減Per2 基因使心肌細(xì)胞LC3 節(jié)律表達(dá)破壞后心肌細(xì)胞的活力顯著降低

        綜上所述,β1-AA 可引起H9c2 心肌細(xì)胞自噬標(biāo)志物L(fēng)C3 的節(jié)律表達(dá)破壞和細(xì)胞活力降低;敲減生物鐘基因來(lái)破壞H9c2 心肌細(xì)胞LC3 節(jié)律表達(dá)后,細(xì)胞活力顯著下降。由此可見(jiàn),自噬標(biāo)志物L(fēng)C3 節(jié)律表達(dá)的破壞在β1-AA 誘導(dǎo)的心肌細(xì)胞死亡過(guò)程中發(fā)揮重要作用;早期合理調(diào)控自噬標(biāo)志物L(fēng)C3 的節(jié)律表達(dá)有望成為β1-AA 陽(yáng)性心功能不全患者的治療策略。

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