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        過表達(dá)硫氧還蛋白-1抑制戊四氮致癲癇大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞凋亡①

        2020-12-23 08:43:34周弟彌
        中國免疫學(xué)雜志 2020年21期
        關(guān)鍵詞:海馬癲癇試劑盒

        甘 露 周弟彌 張 磊 陳 琳

        (南華大學(xué)附屬第二醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)科,衡陽 421001)

        癲癇是全球常見的慢性神經(jīng)系統(tǒng)疾病,發(fā)病機(jī)制復(fù)雜,目前尚未明確。任何引起大腦生理結(jié)構(gòu)或功能紊亂的因素均可能導(dǎo)致癲癇,威脅各年齡階段人群[1,2]。研究報(bào)道,全球約有7 000萬癲癇患者,我國癲癇患者約占全球的13%[3]。目前,癲癇的主要治療方式是抗癲癇藥物治療,但仍有25%~30%的患者發(fā)展為耐藥性癲癇,治療效果并不理想[4]。尋找治療癲癇的新方法成為急需解決的問題。硫氧還蛋白(thioredoxin,Trx)是一種廣泛存在于生物體內(nèi)的抗氧化分子,可通過抗氧化效應(yīng)減輕神經(jīng)元氧化應(yīng)激損傷,具有顯著的神經(jīng)保護(hù)作用[5]。Trx與Trx還原酶(TrxR)及還原型煙酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸(nicotinamide adenine dinucleotide phosphate oxidase,NADPH)組成硫氧還蛋白系統(tǒng),發(fā)揮抗氧化功能,并參與調(diào)控戊四氮(pentylenetet-razol,PTZ)點(diǎn)燃致癲癇小鼠模型氧化應(yīng)激過程[6,7]。Trx-1是Trx蛋白家族中的主要成員,參與氧化還原反應(yīng),并通過凋亡信號(hào)通路調(diào)控細(xì)胞凋亡[8]。本研究擬通過PTZ誘導(dǎo)大鼠癲癇模型,并采用Trx-1過表達(dá)慢病毒進(jìn)行干預(yù),探討其對(duì)大鼠海馬組織神經(jīng)元損傷及細(xì)胞凋亡的影響,以期為癲癇的臨床治療提供新思路。

        1 材料與方法

        1.1材料

        1.1.1實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 40只健康清潔級(jí)SD大鼠(長沙市天勤生物技術(shù)有限公司),動(dòng)物合格證號(hào):SCXK(湘)2014-0010,體質(zhì)量230~250 g,7~8周齡。

        1.1.2試劑 載體(上海吉?jiǎng)P基因化學(xué)技術(shù)有限公司);引物(南京金斯瑞生物科技有限公司);TRIzol、反轉(zhuǎn)錄試劑盒(大連TaKaRa公司);SYBR Green PCR試劑盒(美國KAPA Biosystems公司);BCA蛋白濃度測(cè)定試劑盒(北京康為世紀(jì)公司);兔抗Trx-1多克隆抗體(美國CST公司,貨號(hào):#2298);兔抗B淋巴細(xì)胞瘤-2(B-cell lymphoma-2,Bcl-2)多克隆抗體、兔抗Bcl-2相關(guān)X蛋白(Bcl-2 associated X protein,Bax)多克隆抗體、兔抗磷酸化c-Jun末端激酶(phospho c-Jun N-terminal kinase,p-JNK)單克隆抗體、兔抗凋亡信號(hào)調(diào)節(jié)激酶1(apoptosis signal regulating kinase-1,ASK1)多克隆抗體(美國Abcam公司,貨號(hào):ab 196495、ab53154、ab124956、ab1315 06);TUNEL細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒(美國Promega公司)。

        1.1.3儀器 ChemiDoc Touch系統(tǒng)(美國Bio-Rad公司)。

        1.2方法

        1.2.1Trx-1過表達(dá)重組慢病毒載體設(shè)計(jì)及合成 根據(jù)Trx-1基因序列,設(shè)計(jì)合成含Trx-1和綠色熒光蛋白(green fluorescent protein,GFP)的慢病毒載體(ov-Trx-1-GFP)及陰性對(duì)照慢病毒載體(NC-GFP),慢病毒載體滴度為5×108TU/ml。

        1.2.2動(dòng)物分組及處理 40只SD大鼠隨機(jī)分為4組:對(duì)照組、模型組、Trx-1過表達(dá)組和陰性對(duì)照組,每組10只。大鼠腹腔注射0.5%戊巴比妥鈉溶液(40 mg/kg),麻醉后固定于立體定位儀中,Trx-1過表達(dá)組大鼠兩側(cè)海馬區(qū)注射2.5 μl ov-Trx-1-GFP慢病毒溶液,陰性對(duì)照組大鼠于相同位置注射等量的NC-GFP慢病毒溶液,對(duì)照組和模型組注射等量生理鹽水。慢病毒轉(zhuǎn)染大鼠海馬區(qū)14 d后構(gòu)建PTZ點(diǎn)燃癲癇模型。

        1.2.3建模 除對(duì)照組外,其他組大鼠腹腔反復(fù)注射PTZ(35 mg/kg),對(duì)照組注射等量生理鹽水,1次/d。注射PTZ 1 h后觀察大鼠狀態(tài)及行為變化,記錄大鼠癲癇驚厥情況。根據(jù)Smialowki癲癇發(fā)作分級(jí)標(biāo)準(zhǔn)評(píng)估大鼠癲癇驚厥級(jí)別,0級(jí):無反應(yīng);1級(jí):面部運(yùn)動(dòng),指鼻子、點(diǎn)頭、奔跑;2級(jí):前肢痙攣;3級(jí):前肢痙攣伴后退;4級(jí):前肢痙攣伴后退及摔倒發(fā)作;5級(jí):摔倒、強(qiáng)直發(fā)作[9]。連續(xù)注射3 d PTZ后,大鼠的癲癇發(fā)作級(jí)別均為4~5級(jí)則視為建模成功。模型建立成功后,大鼠麻醉斷頭取腦,分離海馬組織,一部分采用4%多聚甲醛固定,另一部分-80℃保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.2.4RT-PCR檢測(cè)Trx-1 mRNA相對(duì)表達(dá)量 TRIzol提取海馬組織總RNA,試劑盒反轉(zhuǎn)錄為cDNA,以cDNA為模板進(jìn)行RT-PCR擴(kuò)增。Trx-1引物序列為:F:5′-TTCTTTCATTCCCTCTGTG-3′,R:5′-TCCGTAATAGTGGCTTCG-3′,內(nèi)參基因GAPDH引物序列:F:5′-CCACTCCTCCACCTTTG-3′,R:5′-CACCACCCTGTTGCTGT-3′。 2-ΔΔCt法計(jì)算。

        1.2.5Western blot檢測(cè)蛋白相對(duì)表達(dá)量 提取各組海馬組織總蛋白,BCA法測(cè)定蛋白濃度后進(jìn)行SDS-PAGE凝膠電泳,蛋白上樣量為20 μl,轉(zhuǎn)至PVDF膜,5%脫脂奶粉室溫封閉2 h。PBST洗膜后加入一抗稀釋液(1∶1 000),室溫孵育1 h。PBST洗膜,加入二抗稀釋液,室溫孵育1 h。PBST洗膜,滴加化學(xué)發(fā)光試劑顯影,ChemiDoc Touch系統(tǒng)采集圖像,以GAPDH為內(nèi)參計(jì)算其他蛋白相對(duì)表達(dá)量。

        1.2.6HE染色觀察海馬組織形態(tài) 取固定海馬組織,常規(guī)制片:組織脫水,浸蠟包埋,切成4 μm厚片,脫蠟至水。加入蘇木素染液染色3 min,流水沖洗后加入1%鹽酸乙醇分化1 min。流水沖洗,加入促藍(lán)液返藍(lán)1 min,洗滌后加入伊紅染液染色3 min。乙醇脫水,二甲苯通透,中性樹脂封片,顯微鏡下觀察并拍照。

        1.2.7TUNEL染色觀察海馬組織細(xì)胞凋亡 將海馬組織切片進(jìn)行脫蠟脫水處理,按照TUNEL凋亡檢測(cè)試劑盒說明書操作,顯微鏡下觀察海馬組織細(xì)胞凋亡情況,統(tǒng)計(jì)3個(gè)切片TUNEL染色陽性細(xì)胞數(shù),取平均值。

        2 結(jié)果

        2.1大鼠行為觀察 PTZ連續(xù)注射8 d后,模型組和陰性對(duì)照組大鼠出現(xiàn)1級(jí)驚厥發(fā)作,15 d后,Trx-1過表達(dá)組大鼠出現(xiàn)驚厥發(fā)作,20 d后,模型組和陰性對(duì)照組大鼠連續(xù)3 d均表現(xiàn)出4~5級(jí)癲癇驚厥行為,說明PTZ成功點(diǎn)燃癲癇模型,PTZ點(diǎn)燃成功后,對(duì)照組大鼠未出現(xiàn)驚厥發(fā)作,模型組與陰性對(duì)照組大鼠驚厥發(fā)作時(shí)間長、級(jí)別高,而Trx-1過表達(dá)組大鼠驚厥時(shí)間明顯縮短,級(jí)別明顯降低(P<0.01)。見表1。

        表1 大鼠癲癇發(fā)作情況比較Tab.1 Comparison of epileptic seizures in

        2.2Trx-1 mRNA及蛋白表達(dá)水平 與對(duì)照組相比,模型組大鼠海馬組織Trx-1表達(dá)顯著降低(P<0.01),與模型組相比,Trx-1過表達(dá)組Trx-1表達(dá)顯著升高(P<0.01),說明Trx-1過表達(dá)重組慢病毒載體轉(zhuǎn)染成功。見圖1。

        圖1 Trx-1 mRNA及蛋白表達(dá)Fig.1 mRNA and protein expressions of Trx-1Note:Compared with control group,**.P<0.01;compared with model group,##.P<0.01.

        2.3Trx-1過表達(dá)對(duì)大鼠海馬組織形態(tài)的影響 對(duì)照組細(xì)胞排列整齊緊密,細(xì)胞輪廓清晰,無明顯病變。模型組和陰性對(duì)照組細(xì)胞形狀不規(guī)則,排列疏松,細(xì)胞核固縮深染,細(xì)胞質(zhì)呈現(xiàn)嚴(yán)重空泡化。與模型組相比,Trx-1過表達(dá)組海馬神經(jīng)元損傷減輕,細(xì)胞輪廓較清晰,排列整齊,細(xì)胞質(zhì)空泡化程度降低。見圖2。

        圖2 HE染色觀察海馬組織形態(tài)(×200)Fig.2 Hippocampus morphology observed by HE staining(×200)

        2.4Trx-1過表達(dá)對(duì)大鼠海馬組織細(xì)胞凋亡的影響 TUNEL染色觀察各組海馬組織細(xì)胞凋亡水平,結(jié)果顯示,與對(duì)照組相比,模型組和陰性對(duì)照組凋亡細(xì)胞數(shù)顯著增加(P<0.01),與模型組相比,Trx-1過表達(dá)組細(xì)胞凋亡數(shù)顯著減少(P<0.01)。見圖3。

        圖3 各組海馬組織凋亡細(xì)胞數(shù)比較Fig.3 Comparison of apoptotic cells in hippocampus of each groupNote:Compared with control group,**.P<0.01;compared with model group,##.P<0.01.

        2.5Trx-1過表達(dá)對(duì)大鼠海馬組織凋亡相關(guān)蛋白的影響 與對(duì)照組相比,模型組Bcl-2蛋白表達(dá)顯著降低(P<0.01),而Bax、ASK1和p-JNK蛋白表達(dá)顯著升高(P<0.01)。與模型組相比,Trx-1過表達(dá)組Bcl-2蛋白表達(dá)顯著升高(P<0.01),而Bax、ASK1和p-JNK蛋白表達(dá)顯著降低(P<0.01)。見圖4。

        圖4 Trx-1過表達(dá)對(duì)Bcl-2、Bax、ASK1和p-JNK蛋白表達(dá)的影響Fig.4 Effect of Trx-1 overexpression on proteins expressions of Bcl-2,Bax,ASK1 and p-JNKNote:Compared with control group,**.P<0.01;compared with model group,##.P<0.01.

        3 討論

        癲癇是一種復(fù)雜的神經(jīng)綜合征,具有刻板性、發(fā)作性和反復(fù)性等特點(diǎn),全球90%以上的癲癇發(fā)生于中低收入水平國家,且伴有認(rèn)知、心理及生理學(xué)等方面的并發(fā)癥[10,11]。癲癇主要由多種因素導(dǎo)致大腦神經(jīng)元過度興奮和突然的同步放電引發(fā),發(fā)病機(jī)制復(fù)雜[12]??拱d癇藥物治療效果不理想,對(duì)癲癇發(fā)病機(jī)制及新型治療方法的研究對(duì)改善癲癇治療現(xiàn)狀具有重要意義。

        ASK1在生物體內(nèi)具有重要的生理功能,特別是在應(yīng)激條件下,對(duì)氧化應(yīng)激高度敏感,誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡,可被內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激、氧化應(yīng)激及炎癥信號(hào)等激活,過度活化后的ASK1可激活下游JNK通路,誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡,引起組織形態(tài)學(xué)改變及多種應(yīng)激反應(yīng),進(jìn)而引發(fā)多種疾病[13,14]。JNK是絲裂原活化蛋白激酶家族主要成員,JNK信號(hào)傳導(dǎo)可參與外源性凋亡途徑及線粒體引發(fā)的內(nèi)源性凋亡途徑,是誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡的關(guān)鍵因子,抑制腫瘤發(fā)展[14,15]。研究顯示多種磷酸化信號(hào)通路與遺傳因素和后天性腦損傷引起的癲癇發(fā)病機(jī)制相關(guān),在癲癇動(dòng)物模型中發(fā)現(xiàn)JNK存在過度激活,推測(cè)JNK介導(dǎo)的磷酸化信號(hào)可能是一種新的抗癲癇治療靶點(diǎn)[16]。Trx作為ASK1信號(hào)的調(diào)控成分之一,可通過調(diào)節(jié)ASK1/JNK信號(hào)通路調(diào)控細(xì)胞凋亡[13]。研究發(fā)現(xiàn),Trx-1/Trxr-1系統(tǒng)參與胸腺細(xì)胞內(nèi)ASK1及JNK磷酸化過程,上調(diào)該系統(tǒng)表達(dá)水平及控制細(xì)胞內(nèi)氧化還原狀態(tài)穩(wěn)定對(duì)胸腺細(xì)胞的存活至關(guān)重要[17]。Wong等[18]研究結(jié)果也證實(shí)了Trx-1是一種內(nèi)源性抗凋亡分子,可通過抑制ASK1-JNK/p38信號(hào)通路減少神經(jīng)元細(xì)胞凋亡,減輕腦缺血再灌注損傷。

        PTZ是一種中樞系統(tǒng)興奮劑,在神經(jīng)元完好的情況下,反復(fù)注射PTZ可誘導(dǎo)慢性癲癇動(dòng)物模型[18]。本研究采用PTZ誘導(dǎo)大鼠癲癇模型,模型組大鼠癲癇發(fā)作時(shí)間長、級(jí)別高,海馬組織出現(xiàn)嚴(yán)重?fù)p傷,細(xì)胞凋亡增加,經(jīng)過Trx-1過表達(dá)慢病毒轉(zhuǎn)染干預(yù)后,癲癇大鼠的癲癇驚厥發(fā)作時(shí)間縮短,級(jí)別降低,海馬組織損傷減弱,且細(xì)胞凋亡數(shù)量減少,抗凋亡基因Bcl-2表達(dá)上調(diào),而促凋亡基因Bax、ASK1及p-JNK表達(dá)下調(diào)。綜上,過表達(dá)Trx-1對(duì)癲癇具有較好的治療作用,可減緩海馬組織損傷及細(xì)胞凋亡,其作用機(jī)制可能與下調(diào)ASK1/JNK信號(hào)通路有關(guān)。

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