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        內質網(wǎng)應激凋亡途徑對H9C2細胞縫隙連接蛋白43表達的影響及穩(wěn)心顆粒的干預研究△

        2020-12-16 08:41:48黃涯劉珂珂呂夢婁利霞程涓聶波張冬梅吳愛明趙明鏡商洪才
        中國現(xiàn)代中藥 2020年10期

        黃涯,劉珂珂,呂夢,婁利霞,程涓,聶波,張冬梅,吳愛明*,趙明鏡,商洪才

        1.北京中醫(yī)藥大學 東直門醫(yī)院 中醫(yī)內科學教育部和北京市重點實驗室,北京 100700;2.北京中醫(yī)藥大學 東直門醫(yī)院 病理科,北京 100700

        惡性心律失常是諸多心臟疾病中最常見的并發(fā)癥之一[1]。目前臨床上所使用的抗心律失常藥物多以離子通道阻滯劑為主,存在一些不良反應,并且在降低死亡風險及改善預后方面尚不令人十分滿意[2]。心肌縫隙連接重構是心肌損傷后惡性心律失常發(fā)生的重要病理學基礎之一[3],其核心是縫隙連接蛋白(Cx)表達的異常,其中在心肌中表達最多的為Cx43。因此,研究Cx43的病理變化及其發(fā)生機制對心律失常的防治具有積極意義[4]。

        穩(wěn)心顆粒經(jīng)過長期臨床實踐,在心律失常的防治方面表現(xiàn)出良好的療效。前期動物實驗發(fā)現(xiàn)穩(wěn)心顆粒具有減輕心肌損傷、抑制凋亡的作用[5]。心肌凋亡被抑制時能夠逆轉Cx的降解過程[6],而內質網(wǎng)應激是細胞凋亡的關鍵途徑之一。因此,本研究在細胞水平,采用毒胡蘿卜素(thapsigargin,TG)誘導內質網(wǎng)應激凋亡模型,探討內質網(wǎng)應激凋亡途徑對Cx43表達的影響,同時觀察穩(wěn)心顆粒能否通過內質網(wǎng)應激凋亡途徑調節(jié)Cx43的表達水平,為深入探討穩(wěn)心顆粒防治心律失常的作用機制提供參考。

        1 材料

        1.1 細胞

        大鼠心肌細胞H9C2來源于大鼠胚胎期心臟組織,購自中國醫(yī)學科學院基礎醫(yī)學研究所細胞資源中心。

        1.2 試藥

        穩(wěn)心顆粒(無蔗糖型,山東步長制藥股份有限公司,批號:1806010);TG(批號:67526-95-8)、抑制劑salubrinal(Sal)、二甲基亞砜(DMSO),美國Sigma公司。DMEM培養(yǎng)基、胎牛血清(FBS)、胰蛋白酶,美國Gibco公司;雙抗(美國Caisson公司);磷酸鹽緩沖液(PBS,美國Hyclone公司);Cx43、天冬氨酸胱氨酸特異性蛋白酶-12(Caspase-12)抗體,英國Abcam公司;葡萄糖調節(jié)蛋白78(GRP78)、C/EBP-同源蛋白(CHOP)抗體,美國Proteintech公司;其他試劑均為國產分析純。

        1.3 儀器

        MCO-20AIC型CO2培養(yǎng)箱(日本Sanyo公司);SVE-4AL型垂直流超凈工作臺(新加坡Esco公司);Olympus Bx60型光學倒置顯微鏡(日本Olympus公司);Varioskan LUX型酶標儀(美國Thermo Scientific公司);CytomicsTMFC 500型單激光流式分析儀(美國貝克曼庫爾特公司)。

        2 方法

        2.1 H9C2細胞的培養(yǎng)

        根據(jù)ATCC推薦,使用含糖4.5 g·L-1的DMEM培養(yǎng)液配制成含10%FBS的完全培養(yǎng)基,添加雙抗(青霉素100 U·mL-1,鏈霉素100 μg·mL-1);細胞接種透氣培養(yǎng)瓶或培養(yǎng)皿中,置于37 ℃、5%CO2的恒溫孵育箱中靜置培養(yǎng)。培養(yǎng)24~48 h,待細胞匯合度達到80%~90%并處于穩(wěn)定狀態(tài),進行傳代或給藥處理。

        2.2 溶液配制

        TG粉末用DMSO配制成1 mmol·L-1原液。Sal溶液為DMSO溶解的10 mmol·L-1原液。取穩(wěn)心顆粒粉末配制成100 g·L-1的原液。所有試劑均經(jīng)0.22 μm濾網(wǎng)濾過除菌。

        2.3 CCK-8比色分析法篩選藥物濃度及作用時間

        采用CCK-8法檢測實驗所用試劑對H9C2細胞增殖活性的影響。將細胞稀釋至6×104個/mL,接種在96孔板中,每孔100 μL,貼壁生長24 h。實驗藥物均用完全培養(yǎng)基進行稀釋,根據(jù)試劑說明書和文獻方法[7],設置TG的濃度梯度為0.01、0.05、0.10、0.50、1.00 μmol·L-1,作用時間為12、24、48、72 h,Sal和穩(wěn)心顆粒的濃度分別為0.1、1.0、10.0、20.0、30.0、40.0、50.0、75.0、100.0 μmol·L-1和0.5、1.0、10.0、50.0 g·L-1,作用時間均為24 h。同時設置本底孔減少誤差,藥物刺激不同時間后加入CCK-8試劑溶液10 μL,反應1.5 h后使用酶標儀在450 nm處測定吸光度(A)值,根據(jù)公式(1)計算細胞存活率。

        細胞存活率=A藥物/A對照×100%

        (1)

        2.4 光鏡下觀察各組H9C2細胞形態(tài)學改變

        將細胞接種在6孔板中,6000個/孔,貼壁生長24 h后分為對照組、模型組、Sal(20 μmol·L-1)組和穩(wěn)心顆粒(10 g·L-1)組。除對照組外,其余各組細胞加入TG 0.10 μmol·L-1誘導內質網(wǎng)應激凋亡模型。各組加入藥物作用24 h后,在光鏡下觀察細胞生長情況及形態(tài)特征,并拍攝圖像。

        2.5 流式細胞術檢測細胞凋亡

        采用Annexin/PI雙染法對細胞進行熒光標記,使用流式分析儀檢測。將細胞接種在6孔板中,6000個/孔,按照2.4項下分組對應處理,藥物作用24 h后收集細胞,胰酶消化,離心,PBS重懸,重復2次,加入Annexin/PI試劑盒中的Binding buffer 500 μL,重懸細胞,混勻,加入Annexin試劑5 μL,混勻,加入PI試劑5 μL,混勻,避光反應15 min,使用流式分析儀檢測分析。

        2.6 Western blotting法檢測蛋白表達

        將細胞接種在6孔板中,6000個/孔,按照2.4項下分組對應處理,藥物作用24 h后棄去上清,PBS沖洗2遍,每孔加入100 μL細胞裂解液,在冰上靜置10 min,每5 min搖晃混勻1次,收集6孔板中的液體在4 ℃條件下離心,收集上清,蛋白采用BCA法定量,SDS-聚丙烯酰胺凝膠(PAGE)進行電泳后將蛋白轉移到NC膜上,使用封閉液室溫孵育1 h,加入一抗GRP78(1∶1000)、CHOP(1∶2000)、Caspase-12(1∶500)、Cx43(1∶8000)、GAPDH(1∶5000),4 ℃孵育過夜,三乙醇胺緩沖鹽水溶液(TBST)沖洗,室溫孵育二抗(1∶5000),TBST沖洗,ECL發(fā)光液顯影,使用Image pro 6.0對目的蛋白表達量進行分析。

        2.7 統(tǒng)計學處理

        3 結果

        3.1 TG、Sal及穩(wěn)心顆粒對H9C2細胞活性的影響

        CCK-8比色分析結果(見圖1)顯示,TG 0.01、0.05、0.10、0.50、1.00 μmol·L-1分別處理H9C2細胞12、24、48、72 h后,對細胞活性的影響呈時間和濃度依賴性。本研究選擇達到半數(shù)抑制濃度(IC50)的條件(即0.10 μmol·L-1TG溶液處理24 h)作為造模條件;Sal溶液濃度大于40 μmol·L-1時,細胞存活率低于95%,對細胞生長產生了一定的毒性作用,因此0.1~40 μmol·L-1為Sal的無毒濃度范圍,本研究選擇Sal 20 μmol·L-1用于后續(xù)實驗;穩(wěn)心顆粒在0.5~10 g·L-1時促進細胞增殖,而在50 g·L-1時細胞存活率大幅降低,本研究選擇10 g·L-1作為穩(wěn)心顆粒組的干預條件。

        注:與TG 0.01 μmol·L-1、Sal 0.10 μmol·L-1、穩(wěn)心顆粒0.5 g·L-1組比較,*P<0.05,**P<0.01;與TG 0.05 μmol·L-1、Sal 1 μmol·L-1、穩(wěn)心顆粒1 g·L-1組比較,#P<0.05,##P<0.01;與TG 0.1 μmol·L-1、Sal 10 μmol·L-1、穩(wěn)心顆粒5 g·L-1組比較,ΔP<0.05,ΔΔP<0.01;與TG 0.5 μmol·L-1、Sal 20 μmol·L-1、穩(wěn)心顆粒10 g·L-1組比較,θP<0.05,θθP<0.01;與Sal 30 μmol·L-1比較,ΦP<0.05,ΦΦP<0.01。圖1 TG、Sal及穩(wěn)心顆粒對H9C2細胞活性的影響

        3.2 穩(wěn)心顆粒對TG誘導的H9C2細胞形態(tài)的影響

        如圖2所示,藥物作用細胞24 h后,倒置相差顯微鏡下觀察細胞生長狀態(tài)的變化。對照組H9C2細胞貼壁生長,呈長梭狀,伸展性良好,細胞呈致密束狀有序排列,無接觸抑制,細胞生長匯合度約90%;模型組細胞生長匯合度明顯降低,細胞輪廓變得不規(guī)則,失去正常鋪展外觀,分布無序,細胞呈片狀或條狀生長;而Sal組和穩(wěn)心顆粒組細胞生長匯合度顯著優(yōu)于模型組,其輪廓形態(tài)明顯改善,大致恢復致密束狀排列。

        圖2 穩(wěn)心顆粒對TG誘導的H9C2細胞形態(tài)的影響(×40)

        3.3 穩(wěn)心顆粒對TG誘導的H9C2細胞內質網(wǎng)應激凋亡的影響

        流式細胞術檢測凋亡的結果提示,與對照組比較,模型組、Sal組及穩(wěn)心顆粒組早期凋亡率都顯著增加(P<0.05,P<0.01)。與模型組比較,Sal組及穩(wěn)心顆粒組早期凋亡率都顯著下降(P<0.01),見表1和圖3。

        表1 穩(wěn)心顆粒對TG誘導的H9C2細胞內質網(wǎng)應激凋亡的影響

        圖3 穩(wěn)心顆粒對TG誘導的H9C2細胞內質網(wǎng)應激凋亡的影響

        3.4 穩(wěn)心顆粒對TG誘導的H9C2細胞內質網(wǎng)應激凋亡后相關蛋白表達的影響

        結果顯示,與對照組比較,模型組細胞GRP78、CHOP、Caspase-12蛋白表達水平顯著升高,Cx43蛋白表達水平顯著降低(P<0.01)。與模型組比較,Sal組和穩(wěn)心顆粒組細胞CHOP和Caspase-12蛋白表達水平均顯著降低,而Cx43蛋白表達水平顯著升高(P<0.01);Sal組細胞GRP78蛋白表達水平差異無統(tǒng)計學意義,穩(wěn)心顆粒組細胞GRP78蛋白表達水平顯著升高(P<0.01),見圖4。

        4 討論

        心肌縫隙連接由Cx構成的六聚體半通道在相鄰細胞間對接形成,縫隙連接發(fā)揮作用依賴于Cx正常表達,Cx是內質網(wǎng)合成的跨膜駐留蛋白,其合成和降解都受到內質網(wǎng)的全面調控[8]。對于心肌Cx的降解,在已經(jīng)報道的研究中,主要為未折疊蛋白反應(UPR)-內質網(wǎng)應激相關蛋白降解(ERAD)級聯(lián)的自噬和泛素途徑,受到多種因素的調控,如自噬相關蛋白的表達影響Cx43磷酸化及其降解的狀態(tài)[9],但UPR-ERAD級聯(lián)并不完全包括Cx的降解路徑。內質網(wǎng)應激UPR通過3條信號通路發(fā)揮減少蛋白合成、增加蛋白降解、限制蛋白轉運的作用,減輕內質網(wǎng)應激以促進細胞生存,而當內質網(wǎng)應激發(fā)展到不可逆階段時,這3條信號通路便由促生存轉向促凋亡。心肌細胞發(fā)生內質網(wǎng)應激是心肌損傷后的主要病理機制之一,持續(xù)不能緩解的內質網(wǎng)應激將誘導細胞啟動凋亡程序[10],心肌細胞凋亡過程中Cx表達的改變可能是心肌損傷后心律失常的重要原因之一[11]。

        注:與對照組比較,*P<0.05,**P<0.01;與模型組比較,##P<0.01。圖4 穩(wěn)心顆粒對TG誘導的H9C2細胞內質網(wǎng)應激凋亡后相關蛋白表達的影響

        本實驗選用內質網(wǎng)應激經(jīng)典刺激劑TG造模。TG是一種有效抑制內質網(wǎng)膜上Ca2+離子泵蛋白活性的物質,能迅速打破鈣穩(wěn)態(tài),導致內質網(wǎng)應激[12],TG也作為許多研究應用的凋亡誘導劑[13-14]。使用TG 0.1 μmol·L-1處理H9C2細胞24 h,結果顯示,細胞匯合度降低,形態(tài)改變,排列紊亂,出現(xiàn)明顯凋亡,且細胞內GRP78、CHOP和Caspase-12蛋白表達水平較對照組顯著提高。內質網(wǎng)分子伴侶GRP78是最經(jīng)典的內質網(wǎng)應激感受蛋白,也是UPR激活的關鍵分子之一。CHOP是UPR在內質網(wǎng)過度應激時啟動的凋亡信號分子,是UPR由促生存向促凋亡轉變的關鍵標志[15],而Caspase-12則是內質網(wǎng)應激UPR中表達的鈣網(wǎng)蛋白直接特異性激活的Caspase蛋白,可進一步誘導激活Caspase級聯(lián)反應,水解包括Cx在內的凋亡細胞內所有蛋白[16]。以上結果表明,在TG刺激下,H9C2細胞出現(xiàn)了內質網(wǎng)應激并激活了凋亡信號分子,形成了內質網(wǎng)應激凋亡狀態(tài)。

        在內質網(wǎng)應激凋亡狀態(tài)下,H9C2細胞中Cx43蛋白的表達顯著減少,這表明Cx43的表達可能與內質網(wǎng)應激凋亡密切相關。因此,本實驗進一步通過經(jīng)典凋亡抑制劑驗證了Cx43與內質網(wǎng)應激凋亡通路之間的關聯(lián),使用凋亡抑制劑Sal與TG共同干預H9C2細胞后,細胞形態(tài)及排列分布明顯改善,Sal組細胞凋亡率顯著下降,Sal對GRP78蛋白的表達無明顯影響,但顯著下調了CHOP和Caspase-12蛋白的表達水平,上調Cx43蛋白的表達水平,說明Cx43蛋白表達量的增加可能與內質網(wǎng)應激凋亡途徑降解的抑制直接相關,進一步驗證了Cx的降解與心肌細胞內質網(wǎng)應激凋亡途徑之間的聯(lián)系。

        穩(wěn)心顆粒能抑制心肌梗死后的心肌細胞凋亡,并且能夠干預Cx的表達,改善心律失常的發(fā)生[17]。本課題組前期實驗也證明了穩(wěn)心顆粒能在基因水平調控Cx43和Cx45 mRNA表達,維持兩者原有比例[18]。本研究使用穩(wěn)心顆粒和TG共同干預H9C2細胞,穩(wěn)心顆粒在一定程度上發(fā)揮了與凋亡抑制劑Sal相似的作用,這也與文獻報道中穩(wěn)心顆粒能抑制心肌細胞凋亡的結論相符合[5]。光學顯微鏡下,可見細胞形態(tài)及排列分布明顯改善,流式細胞術結果提示穩(wěn)心顆粒的干預使H9C2細胞凋亡率顯著下降,Western blotting結果進一步提示穩(wěn)心顆粒顯著上調了GRP78蛋白表達水平。有研究顯示GRP78過表達能激活多種抑制內質網(wǎng)應激的信號通路[19-21],因此穩(wěn)心顆??赡芡ㄟ^上調GRP78而加強細胞的自適應反應。此外,穩(wěn)心顆粒還顯著抑制了CHOP蛋白和Caspase-12蛋白的表達,而上調了Cx43蛋白的表達水平,這與文獻報道中凋亡抑制狀態(tài)下心肌縫隙連接降解過程被逆轉的結論一致[6],說明穩(wěn)心顆??赡芡ㄟ^減輕內質網(wǎng)應激、抑制凋亡程序激活及Caspase水解反應調控了Cx43的降解。

        綜上所述,本研究結果表明,TG誘導內質網(wǎng)應激凋亡途徑的激活能夠影響H9C2細胞Cx43的表達水平,穩(wěn)心顆粒能在一定程度上抑制內質網(wǎng)應激凋亡信號分子的激活,進而抑制Cx43經(jīng)胱天蛋白酶水解途徑降解,從而發(fā)揮保護心肌縫隙連接的作用。

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