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        響應面優(yōu)化略陽黃精組培快繁技術

        2020-12-05 09:56:20欣1豆佳媛馬存德3琪1彭修娟
        種子 2020年11期
        關鍵詞:優(yōu)化模型

        趙 欣1, 豆佳媛, 馬存德3, 王 琪1, 彭修娟

        (1.陜西國際商貿學院醫(yī)藥學院, 陜西 咸陽 712046;2.陜西國際商貿學院中藥研究院, 陜西 咸陽 712046;3.陜西步長制藥有限公司, 西安 710075)

        略陽黃精,百合科黃精屬(Polygonatum)多年生草本植物,產于陜西省漢中市略陽縣,2017年被評為中國國家地理標志產品。其根莖呈結節(jié)狀彎柱形,單節(jié)雞頭狀,肉質油潤,色澤黃褐透亮,斷面透明,味甜筋少[1]。含有黃精多糖、皂苷、生物堿、維生素、氨基酸、黃酮及蒽醌類化合物、木脂素及微量元素等多種物質,是我國傳統(tǒng)的大宗藥材,具有補氣養(yǎng)陰、健脾、潤肺、益腎、抑制腫瘤細胞、延緩衰老、降血糖血脂、抗病毒、消炎等功效[2-4]。兼具食用、藥用和觀賞價值,也是規(guī)?;?、工業(yè)化生產藥品、保健品的重要原料,具有廣闊的開發(fā)利用前景[5,6]。

        黃精的自然繁殖方式有2種:有性繁殖(種子繁殖)和無性繁殖(根莖芽繁殖),在自然條件下黃精種子發(fā)芽率低,育苗周期長且收集難度大,采用自然繁殖手段生產效率低,無法滿足市場的需求[7]。隨著組培快繁技術的發(fā)展,建立略陽黃精的組培快繁技術體系,利用組織培養(yǎng)方式快速育苗,可有效解決種苗供不應求的問題[8,9]。黃精組培快繁過程中的關鍵點就是培養(yǎng)基,培養(yǎng)基是否合適會影響黃精愈傷組織形成、不定芽增殖以及生根率等。吳宇函等[10]報道,在培養(yǎng)基中添加6-芐基腺嘌呤(6-BA)、萘乙酸(NAA)、2,4-二氯苯氧乙酸(2,4-D)、吲哚丁酸(IBA)、吲哚乙酸(IAA)等激素,可以顯著提高增殖率和生根率。常用的激素主要有細胞分裂素和生長素兩大類,其中細胞分裂素影響細胞的分裂、生長和分化,而生長素誘導刺激細胞分裂和根的分化,二者以不同濃度的配合使用,可以達到誘導分生苗增殖、促進組培苗生長以及誘導根的形成的目的[11,12]。

        關于略陽黃精的研究僅限于資源調查方面,組培方面的研究較少[13]。因此,本實驗在前人研究的基礎上,開展略陽黃精組培技術研究。通過響應面法優(yōu)化組培過程中初代培養(yǎng)基、不定芽誘導培養(yǎng)基及生根培養(yǎng)基的配方,篩選出適合略陽黃精組培苗各個階段生長的最適培養(yǎng)基,優(yōu)化略陽黃精的組培快繁技術體系。

        1 材料與方法

        1.1 實驗材料

        略陽黃精根莖芽取自陜西省漢中市略陽縣,4—6月選取當年生、生長健壯、無病蟲害的植株。

        1.2 實驗方法

        1.2.1外植體預處理及消毒

        預處理:將外植體用洗潔精(5%,w/w)溶液浸泡30 min,然后用流水沖洗30 min,清洗干凈后,切成1 cm×1 cm的帶芽根莖,加入0.5 g·L-1多菌靈處理12 h。

        接種前表皮消毒:將預處理后的外植體轉移至無菌超凈工作臺中并進行如下操作:75%的酒精浸泡30 s→無菌水沖洗3遍→0.2%的HgCl2浸泡6 min→無菌水沖洗3遍→10%的NaClO浸泡5 min→無菌水沖洗3遍→取出用無菌濾紙吸干水分,將與HgCl2接觸的切面部分切掉,接種到MS培養(yǎng)基上進行培養(yǎng)[14]。

        1.2.2根莖芽的初代培養(yǎng)

        將預處理及消毒后的黃精根莖芽轉接到初代培養(yǎng)基中,培養(yǎng)基為MS+30 g·L-1蔗糖+5.0 g·L-1瓊脂粉,同時添加不同濃度組合的植物激素6-BA、NAA和TDZ[15],每個處理接種40個,每瓶接種3個,3次重復,45 d后觀察并統(tǒng)計萌發(fā)率,采用響應面優(yōu)化實驗篩選出適合黃精根莖芽的最佳初代培養(yǎng)基。

        表1 響應面組合因素水平

        1.2.3不定芽的誘導培養(yǎng)

        將萌發(fā)后的健壯根莖芽轉接到誘導培養(yǎng)基中,培養(yǎng)基為MS+30 g·L-1蔗糖+5.0 g·L-1瓊脂粉,同時添加不同濃度組合的植物激素6-BA、NAA和2,4-D[16],每個處理接種30個,每瓶接種3個,3次重復,45 d后觀察并統(tǒng)計不定芽的分化數(shù),采用響應面優(yōu)化實驗篩選出適合黃精不定芽分化的最佳培養(yǎng)基。

        表2 響應面組合因素水平

        1.2.4生根培養(yǎng)

        將粗壯無根苗接入生根培養(yǎng)基中培養(yǎng),培養(yǎng)基為1/2 MS+15 g·L-1蔗糖+5.0 g·L-1瓊脂粉,同時添加不同濃度組合的植物激素IBA、NAA和AC[18],每個處理接種30株,45 d后統(tǒng)計生根率,采用響應面優(yōu)化實驗篩選出略陽黃精最佳生根培養(yǎng)基。

        表3 響應面組合因素水平

        1.2.5培養(yǎng)基及培養(yǎng)條件

        以上培養(yǎng)基均調pH至5.8~6.0,在121 ℃下滅菌20 min。組培室培養(yǎng)溫度除生根暗處理外均是(25±2)℃,光照強度控制在1 600~2 000 lx之間,連續(xù)光照每天16 h,濕度控制在70%左右。

        1.3 統(tǒng)計方法

        萌發(fā)率(%)=(萌發(fā)個數(shù)/接種個數(shù))×100%;

        不定芽平均個數(shù)=誘導出的所有不定芽數(shù)/接種個數(shù);

        生根率(%)=(生根苗數(shù)/接種苗數(shù))×100%。

        1.4 數(shù)據(jù)處理

        采用Design Expert(Version 8.0)軟件進行作圖,采用SPSS(Version 17.0)軟件進行統(tǒng)計學分析。

        2 結果與分析

        2.1 初代培養(yǎng)

        2.1.1響應面優(yōu)化設計與結果

        在Version 8.0軟件中以Box-Behnken中心組合原則進行設計,以6-BA、NAA、TDZ添加量為自變量,黃精萌發(fā)率為響應值,設計三因素三水平響應面優(yōu)化試驗,結果見表4。對表4中實驗數(shù)據(jù)進行二次多項式逐步回歸擬合,得回歸模型方程如下:

        Y=30.88+2.64a+1.09b+1.05c-1.20ab+0.63ac-0.83bc+3.01a2+1.36b2+2.19c2

        2.1.2回歸模型方差分析

        方差分析及相關系數(shù)可以評價模型的可靠性。由表5可知,模型F值為29.78,所得培養(yǎng)基配方萌發(fā)率的回歸方程極顯著(p<0.000 1);失擬項F值為5.60(p>0.05),所以該模型可以對初代培養(yǎng)基配方進行準確的預測和分析。R2=97.45%,說明萌發(fā)率的變化有97.45%來源于6-BA、NAA和TDZ添加量。方差分析結果顯示:一次項和二次項都有顯著性因素,其中a、b、c、ab、a2、b2、c2顯著,說明3種因素對萌發(fā)率具有顯著影響,對萌發(fā)率的貢獻大小依次為6-BA>NAA>TDZ。可以使用該回歸模型確定最佳初代培養(yǎng)基配方。

        表4 Box-Behnken實驗方案及實驗結果

        表5 回歸模型方差分析

        2.1.3響應面分析

        由圖1可知,在NAA添加量較少時,萌發(fā)率隨著

        6-BA添加量增加呈升高趨勢,隨著NAA添加量逐漸增加,萌發(fā)率隨6-BA添加量變化趨勢逐漸變緩。在6-BA添加量較低時,其萌發(fā)率隨NAA添加量增加呈升高趨勢,隨著6-BA添加量逐漸增高,其萌發(fā)率變化幅度越來越小。由方差分析可知,兩者對黃精萌發(fā)率影響顯著,與其相對應的等高線形狀為橢圓形。結果表明,6-BA和NAA添加量交互作用顯著。根據(jù)實驗所得回歸方程,得到初代培養(yǎng)基最佳配方為:6-BA添加量1.49 mg·L-1,NAA添加量0.31 mg·L-1,TDZ添加量0.60 mg·L-1,由回歸方程預測在此條件下萌發(fā)率為40.8%。

        圖1 6-BA和NAA添加量對萌發(fā)率的影響

        2.2 不定芽的誘導培養(yǎng)

        2.2.1響應面優(yōu)化設計與結果

        在Version 8.0軟件中以Box-Behnken中心組合原則進行設計,以6-BA、NAA、2,4-D添加量為自變量,平均不定芽個數(shù)為響應值,設計三因素三水平響應面實驗,結果見表6。將表6實驗數(shù)據(jù)進行二次多項式逐步回歸擬合,得回歸模型方程為:

        Y=3.19+0.35a+0.18b+0.36c+0.023ab-0.17ac+0.028bc+0.48a2-0.12b2-0.19c2

        2.2.2回歸模型方差分析

        由表7可知,所得模型F值為21.81,平均不定芽個數(shù)的回歸方程極顯著(p<0.0001);失擬項F值為5.06(p>0.05),該模型可以對不定芽誘導培養(yǎng)基配方進行準確的預測和分析。R2=96.56%,說明平均不定芽個數(shù)的變化有96.56%來源于6-BA、NAA和2,4-D添加量。方差分析結果顯示,一次項和二次項都有顯著性因素,其中a、b、c、ac、a2、c2顯著,3種因素對平均不定芽個數(shù)具有顯著影響,對不定芽誘導的貢獻大小依次為2,4-D>6-BA>NAA??梢岳庙憫婊貧w方程確定最佳不定芽誘導培養(yǎng)基配方。

        表6 Box-Behnken實驗方案及實驗結果

        表7 回歸模型方差分析

        2.2.3響應面分析

        由圖2可知,無論6-BA添加量處于何種水平,平均不定芽誘導個數(shù)隨著2,4-D添加量增加呈升高趨勢,無論2,4-D處于何種水平,平均不定芽誘導個數(shù)隨著6-BA添加量增加先保持不變后緩慢增加。由方差分析可知,兩者交互作用對不定芽誘導影響顯著。細胞分裂素6-BA與生長素配合對不定芽分化的促進作用優(yōu)于單獨使用。

        圖2 6-BA和2,4-D添加量對不定芽誘導的影響

        根據(jù)所得模型方程,得到不定芽誘導培養(yǎng)基的最佳配方為:6-BA添加量3.00 mg·L-1,NAA添加量0.49 mg·L-1,2,4-D添加量1.26 mg·L-1,由回歸方程預測在此條件下平均不定芽個數(shù)為4.14個。在該條件下實際測定平均不定芽個數(shù)達4.02個,因此該模型可以很好的反映不定芽誘導培養(yǎng)基的最佳配比。

        2.3 生根培養(yǎng)

        2.3.1響應面優(yōu)化設計與結果

        在Version 8.0軟件中以Box-Behnken中心組合原則進行設計,以IBA、NAA、AC添加量為自變量,生根率為響應值,設計三因素三水平響應面試驗,結果見表8。采用軟件對實驗數(shù)據(jù)進行二次多項式逐步回歸擬合,得回歸模型方程為:

        Y=87.12+2.41a+1.29b+1.33c+0.55ab+0.13ac-0.025bc+1.41a2-1.09b2+0.09c2

        表8 Box-Behnken實驗方案及實驗結果

        注:a和b分別代表不定芽誘導階段的對照組和優(yōu)化組,c和d分別代表生根培養(yǎng)階段的對照組和優(yōu)化組。 圖4 略陽黃精組培苗生長趨勢

        圖3 IBA和NAA添加量對生根率的影響

        2.3.2回歸模型顯著性分析

        由表9可知,模型F值為133.97,所得生根培養(yǎng)基配方生根率的回歸方程極顯著(p<0.0001);失擬項F值為6.40(p>0.05),該模型可以對生根培養(yǎng)基配方進行準確的預測和分析。R2=99.42%,說明生根率的變化有99.42%來源于IBA、NAA和AC添加量。方差分析結果顯示:一次項和二次項都有顯著性因素,其中a、b、c、ab、a2、b2顯著,3種因素對生根率具有顯著影響,對生根率的貢獻大小依次為IBA>AC>NAA??梢岳没貧w方程確定最佳生根培養(yǎng)基配方。

        2.3.3響應面分析

        由圖3可知,無論NAA添加量處于何種水平,生根率隨著IBA添加量增加呈升高趨勢;在IBA含量較低時,生根率隨NAA添加量增加變化不大,隨著IBA含量逐漸升高,生根率隨NAA添加量增加升高趨勢越來越明顯。由方差分析可知,兩者交互作用對生根率影響顯著。

        根據(jù)所得模型方程,得到生根培養(yǎng)基的最佳配方為:IBA添加量0.60 mg·L-1,NAA添加量0.59 mg·L-1,AC添加量0.24 g·L-1,由回歸方程預測在此條件下萌發(fā)率為92.3%。在該條件下實際測定培養(yǎng)基生根率的平均值達91.5%,因此該模型可以很好的反映生根培養(yǎng)基的最佳配比。

        3 討論與結論

        圖4為培養(yǎng)基優(yōu)化前后略陽黃精組培苗生長趨勢,對照圖中a/b和c/d可以明顯看出,優(yōu)化培養(yǎng)基后平均不定芽個數(shù)和生根率明顯升高。優(yōu)化后的初代培養(yǎng)基能夠使黃精萌發(fā)率平均值達39.5%,與直接處理黃精種子并接種到MS培養(yǎng)基中(測定出多花黃精發(fā)芽率僅為27.6%)[18]相比,添加了細胞分裂素和生長素的初代培養(yǎng)基會顯著增加黃精萌發(fā)率。影響組培苗生根的因素有很多,激素種類和濃度、培養(yǎng)基類型、蔗糖濃度、光照、浸蘸濃度以及一些附加物等,其中激素種類和濃度以及培養(yǎng)基類型影響最大[19]。生長素對不定根的形成具有誘導作用,不同種類的生長素誘導效果在不同的植物中表現(xiàn)不同,生長素IBA和NAA對不定根的誘導比較穩(wěn)定,且在多種植物中IBA對不定根的誘導作用效果較好[20]。而培養(yǎng)基中加入活性炭(AC)可使根變得更加粗壯,苗的長勢也更加健壯,陸靜等報道,通過在培養(yǎng)基中添加NAA 1.0 mg·L-1+IBA 0.2 mg·L-1+AC 0.2 g·L-1,生根率達89%[21]。高濃度無機鹽會使組培苗根少,粗又短,且為黃色,不利于組培苗生根[22]。因此,一般不用完全MS誘導生根,而是將大量元素適當減少,其它如微量、有機等元素保持不變。

        表9 回歸模型方差分析

        本研究通過比較細胞分裂素(6-BA、IBA、TDZ)和生長素(NAA、2,4-D、AC)不同濃度配比對略陽黃精組培苗不同生長階段的影響,并通過響應面優(yōu)化實驗對培養(yǎng)基配方進行優(yōu)化,得出最適初代培養(yǎng)基為MS+30 g·L-1蔗糖+5.0 g·L-1瓊脂粉+1.49 mg·L-16-BA+0.31 mg·L-1NAA+0.60 mg·L-1TDZ,萌發(fā)率平均值達39.5%;最適不定芽誘導培養(yǎng)基為MS+30 g·L-1蔗糖+5.0 g·L-1瓊脂粉+3.00 mg·L-16-BA+0.49 mg·L-1NAA+1.26 mg·L-12,4-D,平均不定芽個數(shù)達4.02個;最適生根培養(yǎng)基為1/2 MS+15 g·L-1蔗糖+5.0 g·L-1瓊脂粉+0.60 mg·L-1IBA+0.59 mg·L-1NAA+0.59 mg·L-1AC,生根率的平均值達91.5%。隨著黃精市場需求的持續(xù)旺盛,陜西略陽地區(qū)分布的野生黃精資源蘊藏量下降嚴重,目前國內外對略陽黃精規(guī)范化快速繁殖栽培技術的相關報道極少,因此開發(fā)略陽黃精組培快繁技術具有重要的應用價值,但關于不同激素配比上的組合實驗,以及不同生長階段的組合實驗上有待于得出一個更好的、更加經濟的優(yōu)化配方。

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