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        葛花總黃酮對糖尿病視網(wǎng)膜病變大鼠視網(wǎng)膜Müller細胞的保護作用△

        2020-11-16 05:54:10羅影左中夫張俏薛坤劉暢閔連秋
        眼科新進展 2020年11期
        關(guān)鍵詞:氧化應(yīng)激血糖糖尿病

        羅影 左中夫 張俏 薛坤 劉暢 閔連秋

        近年來,糖尿病視網(wǎng)膜病變(diabetic retinopathy,DR)發(fā)病率逐年增高,一旦防治不當(dāng),患者可出現(xiàn)視力喪失[1]。高血糖癥會觸發(fā)一系列的不良反應(yīng),導(dǎo)致視網(wǎng)膜發(fā)生氧化應(yīng)激反應(yīng)[2]。Müller細胞為視網(wǎng)膜中最主要的神經(jīng)膠質(zhì)細胞,對維持視網(wǎng)膜正常功能尤為重要[3]。DR狀態(tài)下會引起Müller細胞損傷,可導(dǎo)致視網(wǎng)膜細胞外谷氨酸含量異常增加,從而激活谷氨酸受體,對視網(wǎng)膜造成毒性反應(yīng)[4]。葛花總黃酮(total flavonoids of pueraria,TFP)為中藥葛花的提取物,現(xiàn)代藥理學(xué)研究發(fā)現(xiàn),其能降低血糖濃度并發(fā)揮強大的抗氧化應(yīng)激功能[5]。有文獻報道,TFP可有效降低1型糖尿病小鼠血糖濃度及清除體內(nèi)過多的氧自由基,進而緩解糖尿病導(dǎo)致的認知功能障礙[6]。我們前期研究發(fā)現(xiàn),TFP能降低血糖濃度并能對抗氧化應(yīng)激反應(yīng),改善1型糖尿病大鼠腎臟損傷。但TFP對1型糖尿病大鼠視網(wǎng)膜的影響尚不清楚。本研究探討TFP對DR狀態(tài)下Müller細胞的影響及相關(guān)機制,為DR防治尋找新的藥物提供參考資料。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 實驗動物分組及模型制備取SPF級雄性SD大鼠60只,體質(zhì)量為180~220 g [購自錦州醫(yī)科大學(xué),編號:SCXK(遼)2009-2017]。采用單次腹腔注射鏈脲佐菌素(55 mg·kg-1)制作大鼠糖尿病模型,72 h后檢測血糖濃度,將血糖濃度>16.7 mmol·L-1的大鼠作為動物模型。將造模成功的糖尿病大鼠隨機分成糖尿病組、TFP組及TFP+Brusatol組(Brusatol為核因子NF-E2相關(guān)因子信號通路抑制劑),每組15只。另取15只正常大鼠作為對照組。依據(jù)文獻[6]及預(yù)實驗,TFP組給予TFP 200 mg·kg-1灌胃治療,TFP+Brusatol組在TFP組基礎(chǔ)上給予10 μL Brusatol(0.2 mg·L-1)玻璃體內(nèi)注射給藥(雙側(cè)眼球均給藥)[7]。實驗期間檢測大鼠血糖濃度、體質(zhì)量變化。12周后,進行各項指標(biāo)檢測。本實驗遵循國家《實驗動物管理條例》的規(guī)定。

        1.1.2 主要試劑及儀器鏈脲佐菌素(美國Sigma公司),TFP(錦州醫(yī)科大學(xué)化學(xué)實驗室提供,純度大于85%),神經(jīng)膠質(zhì)纖維酸性蛋白(glial fibrillary acidic protein,GFAP)一抗(兔抗大鼠)、谷氨酰胺合成酶(glutamine synthetase,GS)一抗(兔抗大鼠)、細胞保護因子Nrf2一抗(兔抗大鼠)、血紅素氧合酶-1(HO-1)一抗(小鼠抗大鼠)(英國Abcam公司),谷氨酸試劑盒、超氧化物歧化酶(SOD)、丙二醛(MDA)含量試劑盒(北京索萊寶公司),倒置熒光顯微鏡(日本Olympus公司),石蠟切片機(德國SLEE公司),水平電泳儀(美國BIO-RAD公司)。

        1.2 實驗方法

        1.2.1 樣本制備及一般指標(biāo)檢測實驗過程中檢測大鼠空腹血糖、體質(zhì)量。12周后,每組取5只大鼠,用40 g·L-1多聚甲醛固定后取出大鼠眼球進行石蠟包埋、切片,用于免疫組織化學(xué)染色及免疫熒光染色。每組取5只大鼠視網(wǎng)膜,制備上清,-20 ℃保存,用于Western blot檢測。另外,每組取5只大鼠視網(wǎng)膜制成100 g·L-1勻漿液,-20 ℃保存,用于MDA含量、SOD活性及谷氨酸含量檢測,三者均采用試劑盒檢測。

        1.2.2 免疫組織化學(xué)法檢測大鼠視網(wǎng)膜GFAP蛋白表達經(jīng)1.2.1制備的切片脫蠟后用PBS洗3次;取體積分數(shù)3%H2O2在室溫條件下處理切片12 min,用PBS洗3次,每次3 min,隨后采用體積分數(shù)3%山羊血清室溫孵育30 min,不洗,滴加GFAP(1300),4 ℃過夜;用PBS洗3次,每次3 min,滴加二抗,置室溫30 min;用PBS洗3次,每次3 min,滴加SABC試劑,置室溫30 min;用PBS洗3次,每次3 min,DAB顯色,復(fù)染、脫水、透明封片后拍照;應(yīng)用Image J軟件分析GFAP表達陽性率。

        1.2.3 免疫熒光染色檢測大鼠視網(wǎng)膜Nrf2蛋白表達經(jīng)1.2.1制備的切片脫蠟后用PBS洗3次,每次3 min;再用體積分數(shù)3%山羊血清+Triton X-100室溫孵育30 min,不洗,滴加Nrf2(1500),4 ℃過夜;用PBS洗3次,每次3 min,滴加熒光二抗,置室溫1 h;用PBS洗3次,每次3 min,封片后顯微鏡下拍照觀察。

        1.2.4 Western blot檢測大鼠視網(wǎng)膜Nrf2、HO-1及GS蛋白相對表達量BCA法測定蛋白含量,電泳時加入15 μL樣品;經(jīng)120 V電壓電泳后,轉(zhuǎn)膜,用血清白蛋白封閉2 h;加入一抗(Nrf2,16000;HO-1,180 000;GS,110 000),4 ℃孵育過夜;TBST洗4次,每次5 min;加入二抗室溫下孵育2 h,TBST洗4次,每次5 min;ECL顯影,以β-actin為內(nèi)參,用Image J軟件分析灰度值,重復(fù)實驗3次,取平均值。

        1.3 統(tǒng)計學(xué)方法統(tǒng)計分析采用SPSS 22.0 統(tǒng)計軟件進行分析,計量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較用LSD-t檢驗。檢驗水準(zhǔn):α=0.05。

        2 結(jié)果

        2.1 各組大鼠體質(zhì)量、血糖濃度的變化各組大鼠造模前體質(zhì)量和血糖濃度差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。造模12周后, 糖尿病組大鼠血糖濃度高于對照組,且均大于16.7 mmol·L-1;TFP組及TFP+Brusatol組血糖濃度均低于糖尿病組(均為P<0.05);糖尿病組、TFP組及TFP+Brusatol組大鼠體質(zhì)量均低于對照組(均為P<0.05)(見表1)。

        表1 造模前后各組大鼠血糖濃度和體質(zhì)量

        2.2 各組大鼠視網(wǎng)膜谷氨酸和MDA含量以及SOD活性檢測結(jié)果糖尿病組和TFP+Brusatol組大鼠視網(wǎng)膜谷氨酸含量均高于對照組(均為P<0.05);TFP組谷氨酸含量低于糖尿病組(P<0.05)。糖尿病組和TFP+Brusatol組MDA含量均高于對照組,SOD活性均低于對照組(均為P<0.05)。TFP組MDA含量低于糖尿病組,SOD活性高于糖尿病組(P<0.05)(見表2)。

        表2 各組大鼠視網(wǎng)膜谷氨酸和MDA含量及SOD活性

        2.3 各組大鼠視網(wǎng)膜GFAP 和Nrf2蛋白表達情況糖尿病組和TFP+Brusatol組大鼠視網(wǎng)膜GFAP蛋白表達陽性率均高于對照組(均為P<0.05);TFP組GFAP蛋白表達陽性率低于糖尿病組(P<0.05)(見圖1和表3)。將對照組Nrf2蛋白免疫熒光強度設(shè)定為100.00%,糖尿病組Nrf2蛋白免疫熒光強度高于對照組(P<0.05)。TFP組Nrf2蛋白免疫熒光強度高于糖尿病組(P<0.05),而TFP+Brusatol組與對照組相比差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)(見圖2和表3)。

        2.4 各組大鼠視網(wǎng)膜Nrf2、HO-1及GS蛋白表達情況糖尿病組大鼠視網(wǎng)膜Nrf2蛋白表達高于對照組,糖尿病組和TFP+Brusatol組大鼠視網(wǎng)膜HO-1和GS蛋白表達均低于對照組(均為P<0.05)。TFP組大鼠視網(wǎng)膜Nrf2、HO-1及GS蛋白表達均高于糖尿病組(均為P<0.05),而TFP+Brusatol組與對照組大鼠視網(wǎng)膜Nrf2蛋白表達差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)(見圖3和表3)。

        圖1 各組大鼠視網(wǎng)膜GFAP蛋白表達變化(×200)

        圖2 各組大鼠視網(wǎng)膜Nrf2蛋白表達變化

        表3 各組大鼠視網(wǎng)膜GFAP、Nrf2、HO-1及GS蛋白表達

        圖3 Western blot 檢測各組大鼠視網(wǎng)膜Nrf2、HO-1及GS蛋白表達情況 A:對照組;B:糖尿病組;C:TFP組;D:TFP+Brusatol組

        3 討論

        預(yù)計到2025年,全球糖尿病患者人數(shù)將高達3億[8]。隨著病程的延長,糖尿病患者發(fā)生DR的概率增高。近年來,氧化應(yīng)激與DR的關(guān)系已經(jīng)被認可[9]。氧化應(yīng)激在DR發(fā)病中的破壞性作用已在糖尿病實驗動物模型中得到證實,而且研究發(fā)現(xiàn),抗氧化劑在一定程度上可有效緩解DR[10]。Müller細胞在DR進程中至關(guān)重要,其損傷不僅可引起微血管病變,亦可造成神經(jīng)損傷[11]。GFAP為一種中間絲結(jié)構(gòu)蛋白,在Müller細胞內(nèi)過度表達后可損傷視網(wǎng)膜神經(jīng)元[12]。

        隨著中醫(yī)藥的發(fā)揚光大,天然中藥提取物在治療DR中扮演重要的角色。葛花為傳統(tǒng)中藥,又名葛條花,可清熱消渴。TFP為葛花的有效活性成分之一,可有效降低1型糖尿病小鼠血糖濃度及清除體內(nèi)過多的氧自由基,進而緩解糖尿病所導(dǎo)致的認知功能障礙。研究發(fā)現(xiàn),具有抗氧化應(yīng)激作用的藥物褪黑素可抵抗氧化應(yīng)激反應(yīng),進而保護受損的Müller細胞[13]。本實驗中,TFP可明顯降低1型糖尿病大鼠血糖濃度,同時可降低MDA含量,增加SOD活性,增加大鼠的抗氧化應(yīng)激能力,最終表現(xiàn)為視網(wǎng)膜GFAP蛋白表達降低,谷氨酸含量明顯下降,說明TFP對1型糖尿病大鼠視網(wǎng)膜的損傷存在抑制作用。

        Nrf2具有促進各種抗氧化基因轉(zhuǎn)錄的作用。Nrf2可與Kelch-ECH結(jié)合蛋白1共價結(jié)合,當(dāng)氧化應(yīng)激增強時,結(jié)合蛋白1被氧化或共價修飾,從而引起Nrf2釋放。隨后,Nrf2進入細胞核并與ARE結(jié)合,調(diào)控抗氧化基因的表達。本研究發(fā)現(xiàn),DR狀態(tài)下大鼠視網(wǎng)膜Nrf2蛋白表達增加,這可能是DR時視網(wǎng)膜本身對氧化應(yīng)激的適應(yīng)性反應(yīng),然而HO-1蛋白表達卻明顯下降,說明DR時氧化應(yīng)激反應(yīng)過度,消耗了機體自身所產(chǎn)生的HO-1蛋白,進而導(dǎo)致氧化應(yīng)激增強,造成Müller細胞損傷。而給予TFP治療后,MDA含量降低,SOD含量增加,機體抗氧化能力增加,同時大鼠視網(wǎng)膜Nrf2、HO-1蛋白表達明顯升高,提示TFP在一定程度上可以激活Nrf2蛋白的表達,上調(diào)HO-1蛋白的表達,進而對抗大鼠DR狀態(tài)下氧化應(yīng)激損傷,保護受損的Müller細胞。為了進一步驗證TFP對DR狀態(tài)下Müller細胞的保護作用機制,本研究在給予TFP的基礎(chǔ)上進一步給予大鼠玻璃體內(nèi)注射Nrf2抑制劑Brusatol,發(fā)現(xiàn)TFP的治療作用被逆轉(zhuǎn),這進一步提示TFP是通過激活Nrf2/HO-1信號通路保護受損的Müller細胞。

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