趙一鳴,王鳳云,邱曉暉,張欣燕,劉柏玲
(曲阜師范大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院,山東曲阜273165)
豆瓣綠(Peperomia tetraphylla)是草胡椒屬的多年生草本,常叢集而生,因其葉翠綠、寬厚、容易養(yǎng)護(hù)而成為一種備受歡迎的觀賞植物。豆瓣綠主要分布于四川、云南、貴州、廣東、廣西等地,全草可入藥,具有化痰止咳,舒筋活血,消腫止痛的功效,在傳統(tǒng)中藥中,常被用來治療口腔炎、咽喉炎、風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎、支氣管炎、瘡癤腫毒、骨折、跌打損傷、中暑、痢疾、腹瀉、疳積,以及胃癌、肝癌、肺癌和乳腺癌等疾病[1-4]。最近的研究報(bào)道從豆瓣綠中分離到具有抗腫瘤作用的藥用成分[5,6]。例如,Li 等[7]在豆瓣綠植株中提取出一種新型的環(huán)丁烷型降木脂素,能夠有效地抑制人類前列腺癌細(xì)胞的增殖;于大永等[8-10]發(fā)現(xiàn)豆瓣綠的乙醇提取物可以通過阻斷細(xì)胞周期,誘導(dǎo)白血病U937 細(xì)胞凋亡,從而起到治療白血病的效果,并且還能抑制黑色素瘤A375細(xì)胞增殖;Nishanthi 等[11]研究發(fā)現(xiàn),利用豆瓣綠的醇提取物可以有效防治乙二醇導(dǎo)致的小鼠尿石癥。Shi 等[12]在豆瓣綠中提取出了一種叫做Peperobtusin A 的酚類化合物,它可以通過依賴性的半胱天冬酶(Caspase)和p38 MAPK 信號通路誘導(dǎo)U937 淋巴瘤細(xì)胞凋亡。
很多學(xué)者對豆瓣綠的繁殖進(jìn)行了研究。郝靜韋[13]分別利用帶葉柄和腋芽的葉片、縱切后留有傷口的葉片以及帶腋芽的莖段進(jìn)行豆瓣綠的扦插研究;趙蘭枝等[14]利用豆瓣綠頂端枝條,在不同的營養(yǎng)液和添加不同濃度3-IBA 的溶液中進(jìn)行了水培繁殖實(shí)驗(yàn);王濤等[15]分別用具芽莖段、花序和葉片為外植體,建立了豆瓣綠的組織培養(yǎng)體系;蘇平[16]利用豆瓣綠的頂芽,切取莖尖作為外植體,進(jìn)行了豆瓣綠脫毒苗的培育。目前為止,豆瓣綠的組培體系已經(jīng)相對完備,但由于成本和技術(shù)要求過高,難以應(yīng)用于大規(guī)模的商業(yè)化生產(chǎn),組培苗馴化移栽無法成活等問題也造成了巨大的經(jīng)濟(jì)損失。瓶外生根作為一種新興的生根方式,具有較大的發(fā)展?jié)摿?,我們在現(xiàn)有的組培體系基礎(chǔ)上,將瓶外生根應(yīng)用于豆瓣綠的繁殖過程中,添加三種植物生長調(diào)節(jié)劑,進(jìn)行瓶內(nèi)生根和瓶外生根的比較研究,并對生根率、生根數(shù)目、根長、移栽成活率等指標(biāo)進(jìn)行測定,更加直觀的比較瓶內(nèi)生根與瓶外生根兩種生根方式的效果差異,為豆瓣綠的商業(yè)化繁殖提供更詳細(xì)的理論依據(jù)。
1.1.1 外植體消毒。 實(shí)驗(yàn)用豆瓣綠(Peperomia tetraphylla (Forst. f.) Hook. et Arn.)種植在曲阜師范大學(xué)溫室中,選擇健康鮮活的葉片為外植體,用軟毛刷清除表面的浮土,再用稀釋過的洗潔精水浸泡40 min,之后用自來水沖洗1 h。然后用75%的乙醇消毒30 s 后用無菌水沖洗3~5 次。最后,使用0.1%升汞溶液添加少量的吐溫-20 進(jìn)行消毒,時(shí)間為6 min,并用無菌水再次沖洗3~5 次。
1.1.2 外植體接種和不定芽獲取。在前人的基礎(chǔ)上,我們使用添加1.0 mg/L 6- 芐氨基腺嘌呤(6-BA)和1.0 mg/L 激動素(Kinetin, KT)的MS 培養(yǎng)基進(jìn)行初代培養(yǎng)。培養(yǎng)6 周后,將葉邊緣誘導(dǎo)出的不定芽接種在添加有1.0 mg/L 6-BA+1.0 mg/L KT+0.05 mg/L 赤霉素(gibberellins, GA3)的MS 培養(yǎng)基上進(jìn)行繼代培養(yǎng)。
1.2.1 瓶內(nèi)生根。在MS 培養(yǎng)基中分別添加0.1、0.2、0.3 mg/L 的吲哚丁酸(indolebutyric acid, IBA),萘乙酸(naphthylacetic acid, NAA),2,4- 二 氯 苯 氧 乙 酸(2,4-Dichlorophenoxyacetic acid, 2,4-D)三種植物生長調(diào)節(jié)劑(表1)。每培養(yǎng)瓶中接種3個(gè)不定芽,每個(gè)處理5 瓶,重復(fù)3 次。
表1 不同濃度IBA,NAA,2,4-D 對豆瓣綠瓶內(nèi)生根的影響
1.2.2 瓶外生根。培養(yǎng)后的試管苗從培養(yǎng)瓶中取出并切割成1~2 cm 至少保留半片葉子的小芽,盡量保證小芽的初始生長狀態(tài)基本一致。然后,使用無菌水浸泡1 h后,在分別添加50、100 和200 mg/L IBA,NAA 和2,4-D的溶液中浸泡30 min,蒸餾水對照,然后將小芽插入蛭石:珍珠巖:泥炭(1:1:2)的混合基質(zhì)中,使用7 cm×7 cm×7 cm 的塑料花盆,每盆3個(gè)小芽,每個(gè)處理5盆,重復(fù)3 次。每天進(jìn)行一次澆水并在植物上方覆蓋透明塑料蓋子保持水分,5 周后,蓋子以每天2、4、6 和8 h的時(shí)間梯度打開,第6 周去掉蓋子再培養(yǎng)3 d。
培養(yǎng)基中均添加了30 mg/L 蔗糖,6.5 mg/L 瓊脂,并將pH 調(diào)節(jié)到5.8~5.9。實(shí)驗(yàn)所涉及到的金屬器械、玻璃器皿、培養(yǎng)基等經(jīng)過121℃高壓蒸汽滅菌15 min 備用。
所有的植物放在25±1℃的培養(yǎng)室中,光照強(qiáng)度40~50 μmol/m2s PPFD,每天12 h 光照(燈管型號為:飛利浦40 W 燈管,NVC 照明,中國,惠州)。
培養(yǎng)6 周后,使用Microsoft Excel 2007 記錄各處理的生根率,生根系數(shù),根長以及整體生長狀態(tài),馴化移栽后,統(tǒng)計(jì)移栽成活率。數(shù)據(jù)用SPSS 22.0 軟件進(jìn)行方差分析,均值采用Duncan's 檢驗(yàn)進(jìn)行多重比較。
把消毒后的葉片切成1 cm2左右大小,并接種在添加有1.0 mg/L 6-BA 和1.0 mg/L KT 的MS 培養(yǎng)基中[15],培養(yǎng)6 周后葉片邊緣誘導(dǎo)出大量的不定芽(圖1A)。繼代培養(yǎng)后,發(fā)育成完整的植株(圖1B)。
瓶內(nèi)生根的所有處理均可達(dá)到100%的根誘導(dǎo)率(圖2A),但是不同處理間根系的生長特征出現(xiàn)了明顯的不同(表1)。結(jié)果表明,在添加IBA 的培養(yǎng)基中誘導(dǎo)出的根細(xì)長,分支多,并有少量根毛(圖2C),在添加NAA 的培養(yǎng)基中生長的根相對較短,但主根上具許多細(xì)小分支(圖2D),在添加2,4-D 的培養(yǎng)基中生長出少量肉質(zhì)短根,根毛濃密(圖2E)。在瓶內(nèi)生根中,在MS培養(yǎng)基中添加不同濃度的IBA 誘導(dǎo)根的長度較長且差異不大,0.1 mg/L IBA 達(dá)到了35.5 mm 的平均根長,且培養(yǎng)出的植株生長狀態(tài)良好,移栽后全部成活,0.3 mg·L-1IBA 可以達(dá)到50.9 的平均生根數(shù)目。綜合來看,0.1 mg/L IBA 在豆瓣綠的瓶內(nèi)生根中效果最佳(表1,圖2A)。經(jīng)過馴化移栽以后,瓶內(nèi)生根小苗的綜合成活率為73.1%(圖2B)。
圖1 豆瓣綠葉片誘導(dǎo)不定芽的形成過程
圖2 不同濃度IBA,NAA,2,4-D 對豆瓣綠瓶內(nèi)生根的影響
瓶外生根的小苗,根系均為纖維狀的須根(圖3B)。瓶外生根過程中,IBA 處理過植株的根系生長的更加健康并且有著更多的分枝,而對照中,植株只能生長出少量細(xì)弱的短根(表2)。經(jīng)過IBA 和NAA 處理的小苗,與對照2,4-D 處理相比,地上部分生長的更加健壯、生命力強(qiáng)(圖3A)。瓶外生根過程中,100 mg/L IBA浸泡30 min 是最有效的處理,可以達(dá)到9.8 的平均生根數(shù)和20.3 mm 的平均根長。瓶外生根后的小苗經(jīng)過馴化移栽,成活率可達(dá)100%。
表2 不同濃度IBA,NAA,2,4-D 對豆瓣綠瓶外生根的影響
圖3 不同濃度IBA,NAA,2,4-D 對豆瓣綠瓶外生根的影響
生長素在生根的過程中起著關(guān)鍵作用[17]。研究發(fā)現(xiàn),IBA 在植物體內(nèi)可以轉(zhuǎn)化成IAA 發(fā)揮作用,從而促進(jìn)根原基的形成、根系的生長和側(cè)根的發(fā)育[18,19]。豆瓣綠在IBA 的處理下可以達(dá)到最佳瓶內(nèi)生根效果,這與前人在馬 大 雜 種 相 思 (Acacia mangium ×A.auriculiformis hybrids)、雜種藍(lán)莓(Wild×'Blomidon')等植物中的研究結(jié)果一致[20,21]。研究發(fā)現(xiàn),通常植物會改變他們的根毛和根的直徑等形態(tài)特征以適應(yīng)不同的生長環(huán)境[22]。瓶內(nèi)生根的豆瓣綠植株與瓶外生根相比,具有根系肉質(zhì)、根毛更濃密等特點(diǎn),這可能和試管內(nèi)特殊的營養(yǎng)條件與微環(huán)境有關(guān)。
在瓶外生根過程中,使用100 mg/L IBA 浸泡30 min達(dá)到了良好的生根效果。在爬山虎(Parthenocissus tricuspidata)的研究中發(fā)現(xiàn),IBA 和NAA 可以促進(jìn)爬山虎根系的生長并使其根系有更多的分支[23]。在杉木(Cunninghamia lanceolata)的瓶外生根研究中100 mg/L IBA 溶液浸泡1 h 效果最佳,生根率可達(dá)89.6%[24]。在蝴蝶蘭(Phalaenopsis aphrodite)的瓶外生根研究中,使用含不同濃度IBA 和NAA 的培養(yǎng)液對不同品種的蝴蝶蘭進(jìn)行瓶外生根培養(yǎng),發(fā)現(xiàn)在添加100 mg/L IBA 的培養(yǎng)液中,生根率可達(dá)95%[25]。在石榴(Punica granatum)的研究中發(fā)現(xiàn),使用1476 μM/L IBA 處理不定芽的基部5 min 可以達(dá)到85%的生根率[26]。此外,在甘蔗(Saccharum officinarum)的研究中發(fā)現(xiàn),瓶外生根與瓶內(nèi)生根相比,能夠節(jié)省51%的單株成本[27]。研究發(fā)現(xiàn),使用瓶外生根的方式培育10000 株馬大雜種相思小苗增加收益1288.26 元[20]。
從我們的研究結(jié)果來看,瓶內(nèi)生根得到的根系質(zhì)量更高,整體生根率可達(dá)100%,經(jīng)過馴化移栽后,瓶內(nèi)生根的成活率為73.1%;瓶外生根的生根率為95.9%,生根后的植株均能成活,總體而言,瓶外生根的成活率要高于瓶內(nèi)生根。主要原因是瓶內(nèi)生長環(huán)境具有無菌、恒溫、高濕的培養(yǎng)特點(diǎn),試管苗移栽后不能立即適應(yīng)外界的栽培環(huán)境,而瓶外生根中,生長狀態(tài)不佳的弱苗在生根過程中逐漸淘汰,移栽成活的小苗已逐步適應(yīng)了土壤環(huán)境[17,28]。在我們的研究中,瓶內(nèi)生根的小苗生根數(shù)目較多,根系較長,多長有白色根毛,但除IBA 處理生根的小苗外,整體的根系質(zhì)量不高,移栽成活率較低,其中經(jīng)過不同濃度2,4-D 處理后的小苗,綜合成活率僅為43.7%,原因可能是2,4-D 誘導(dǎo)出的肉質(zhì)短根本身含水量過高,難以適應(yīng)土壤中更加復(fù)雜的營養(yǎng)環(huán)境,我們推測這種肉質(zhì)、增粗的變態(tài)短根,其解剖結(jié)構(gòu)已發(fā)生了相應(yīng)的變化,瓶外生根可以減少在馴化移栽時(shí)造成的損失,更加適合于豆瓣綠的商業(yè)化生產(chǎn)。目前來講,豆瓣綠的主要繁殖方式為扦插繁殖和組織培養(yǎng)。扦插生根可以節(jié)省人力、物力,但通常繁殖周期過長,繁殖過程易受季節(jié)和母株限制,繁殖系數(shù)低,這種繁殖方式往往不能提供足夠多的植株。組織培養(yǎng)技術(shù)可以快速地繁殖大量植株,其中,瓶內(nèi)生根與后期的移栽是組培的關(guān)鍵因素,也是組培苗商業(yè)化育苗的重要環(huán)節(jié),但瓶內(nèi)生根通常會面臨成本和操作要求過高、馴化移栽的成活率較低等問題,并不能應(yīng)用于所有的植物[29-32,13,17,24]。而瓶外生根技術(shù)將組織培養(yǎng)技術(shù)和扦插生根進(jìn)行結(jié)合,即將組培得到的大量不定芽進(jìn)行扦插,使植物自養(yǎng)生根,簡化了組培瓶內(nèi)生根程序,降低了操作要求,不僅縮短了育苗周期,降低成本,節(jié)省資源,而且提高了移栽成活率,具有很大的發(fā)展?jié)撃埽档迷诮M培商業(yè)化育苗生根過程中進(jìn)行推廣[17,26,33,34]。