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        C57BL/6小鼠p38絲裂原活化蛋白激酶通路抑制后抗結(jié)核效應(yīng)

        2020-09-25 09:49:54盛青黃麗軍鄒威鳳周強(qiáng)周曉婷祝濤
        實(shí)用醫(yī)學(xué)雜志 2020年16期
        關(guān)鍵詞:小鼠

        盛青 黃麗軍 鄒威鳳 周強(qiáng) 周曉婷 祝濤

        1廣州市胸科醫(yī)院呼吸內(nèi)科(廣州510095);2宜春市人民醫(yī)院檢驗(yàn)科(江西宜春336000)

        結(jié)核?。╰uberculosis,TB)是由結(jié)核分枝桿菌(mycobacterium tuberculosi,MTB)感染引起的慢性傳染性疾病,以肺結(jié)核最為常見(jiàn)。最新數(shù)據(jù)顯示,2018年全球大約有1 040萬(wàn)新發(fā)結(jié)核病例[1],表明結(jié)核病仍然是威脅人類健康的重大公共衛(wèi)生問(wèn)題。眾所周知,在MTB感染過(guò)程中,宿主分泌的細(xì)胞因子在介導(dǎo)其對(duì)MTB的防御反應(yīng)中發(fā)揮重要的作用,如MTB感染的巨噬細(xì)胞可分泌炎癥因子,介導(dǎo)肉芽腫形成和T細(xì)胞免疫反應(yīng)[2]。在宿主介導(dǎo)MTB感染的細(xì)胞內(nèi)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑中,有絲分裂原激活的蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase,MAPK)是重要的細(xì)胞信號(hào)通路之一,其包括細(xì)胞外信號(hào)調(diào)節(jié)激酶1和2(extracellular signal-regulated kinase1/2,ERK1/2)、p38 MAPK和c-Jun N-末端激酶(Jun N-terminal kinase,JNK)[3]。筆者前期研究發(fā)現(xiàn)[4]:在肺結(jié)核患者和肺結(jié)核小鼠模型中p38 MAPK的磷酸化水平均顯著增加,在巨噬細(xì)胞中p38 MAPK表達(dá)水平隨感染時(shí)間的推移而逐步增高,提示磷酸化活化的p38 MAPK信號(hào)重要參與了抗結(jié)核感染過(guò)程。為進(jìn)一步認(rèn)識(shí)該信號(hào)通路在抗結(jié)核感染中的作用,本研究對(duì)應(yīng)用p38 MAPK 抑制劑(SB203580)抑制小鼠內(nèi)p38 MAPK 通路后的抗結(jié)核作用進(jìn)行了初步研究,現(xiàn)報(bào)道如下。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 動(dòng)物SPF級(jí)8~10周齡雄性C57BL/6小鼠20只,體質(zhì)量(20±0.8)g,由深圳第三人民醫(yī)院肝病研究所提供。

        1.1.2 主要儀器和試劑紅細(xì)胞裂解液(Invitrogen),1640 培養(yǎng)基(Gibco),胎牛血清(Gibco),結(jié)核菌株H37Rv(廣州市胸科醫(yī)院結(jié)核病生物樣本庫(kù)保存株),熒光PCR 儀(Roche),紫外分光光度儀(DeNovix),普通PCR 儀(ABI),高速離心機(jī)(Eppendorf),流式細(xì)胞儀(BD FACSCantoⅡ),SB203580(Invitrogen),氣溶膠感染裝置(Glas-Col),細(xì)菌培養(yǎng)箱(上海合恒儀器設(shè)備有限公司),鼠抗CD11b APC(eBioscience),鼠抗F4/80 FITC(eBioscience),鼠抗Ly6G APC-CY7(eBioscience)。

        1.2 方法

        1.2.1 小鼠結(jié)核病模型構(gòu)建p38 MAPK 抑制劑(SB203580)用DMSO 溶解,且終濃度用DMSO 稀釋成2 mg/mL,將小鼠隨機(jī)分為兩組,每組10只,分別通過(guò)腹腔注射DMSO(對(duì)照組)和SB203580(觀察組),并做好標(biāo)記;將小鼠通過(guò)氣溶膠霧化吸入系統(tǒng)感染約150 CFUs的有毒菌株H37Rv,30 d后處死小鼠[5],收集小鼠肺臟、淋巴結(jié)、脾臟和肝臟等組織進(jìn)行細(xì)菌載量計(jì)數(shù),檢測(cè)小鼠肺組織炎癥細(xì)胞比例、細(xì)胞因子表達(dá)水平以及CD4+、CD8+、CD4+IFN-γ+和CD8+IFN-γ+T細(xì)胞亞群比例。

        1.2.2 小鼠細(xì)菌載量計(jì)數(shù)收集小鼠完整的各組織并放置于盛有4.5 mL生理鹽水的離心管中,采用勻漿器勻漿組織片刻,使不見(jiàn)組織碎片為準(zhǔn),重懸后取500 μL組織勻漿液加入另一盛有4.5 mL 無(wú)菌生理鹽水的離心管中,梯度稀釋后分別取100 μL組織勻漿液接種至Middlebrook 7H11 羅氏平板中,輕輕搖勻后放置于細(xì)菌培養(yǎng)箱中,培養(yǎng)4 周左右后計(jì)數(shù)平板中菌落數(shù),并計(jì)算各組織的細(xì)菌載量。

        1.2.3 肺組織淋巴細(xì)胞的分離收集小鼠肺組織并剔除淋巴結(jié),將小鼠肺組織剪成勻漿狀,用Ⅳ型膠原酶混勻后37℃消化30 min,移出吹打片刻,再放置于37℃培養(yǎng)箱20 min,消化后加入12.5 mmol/L EDTA 冰上終止消化5 min,將上述制備的肺組織細(xì)胞懸液通過(guò)細(xì)胞濾網(wǎng)過(guò)濾,制備單細(xì)胞懸液,在4℃,2 000 r/min,離心5 min,收集細(xì)胞后加入3 mL 38%Percoll淋巴細(xì)胞分離液重懸混勻,在4℃,2 000 r/min,離心30 min,收集細(xì)胞見(jiàn)紅細(xì)胞可加入1 mL 紅細(xì)胞裂解液常溫裂解5 min,裂解后加滿PBS 至15 mL,以終止裂解反應(yīng)并在4℃,2 000 r/min,離心5 min,棄細(xì)胞上清,加入2 mL RPMI 1640/5%FBS 培養(yǎng)基重懸細(xì)胞制成單細(xì)胞懸液,將所獲得的細(xì)胞在顯微鏡下計(jì)數(shù)[6]。

        1.2.4 流式檢測(cè)術(shù)將鼠抗CD11b APC,鼠抗F4/80 FITC和鼠抗Ly6G APC-CY7等抗體以400倍稀釋,避光放置于冰上。取1 mL 細(xì)胞懸液,5 000 r/min,離心5 min,棄細(xì)胞上清,加入100 μL 抗體稀釋液,重懸后避光孵育15 min,孵育后加入1 mL PBS常規(guī)離心,棄上清,用100 μL PBS重懸細(xì)胞,上機(jī)檢測(cè)。

        1.2.5 qRT-PCR檢測(cè)將組織勻漿液根據(jù)Total RNA Kit I試劑說(shuō)明書抽提RNA 并利用紫外分光光度儀檢測(cè)提取純度;RNA 被反轉(zhuǎn)錄成cDNA,在熒光PCR 儀上檢測(cè)基因的Ct值,并與內(nèi)參基因GAPDH 對(duì)比,計(jì)算各基因的相對(duì)函數(shù)值。

        1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法采用GraphPad Prism 6.0 軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,以DMSO 對(duì)照組和SB203580 觀察組小鼠肺臟、淋巴結(jié)、脾臟和肝臟等組織的細(xì)菌載量,以及炎癥細(xì)胞比例、細(xì)胞因子表達(dá)水平和CD4+、CD8+、CD4+IFN-γ+和CD8+IFN-γ+T細(xì)胞亞群比例以x±s表示,正態(tài)分布資料的兩組間比較采用t檢驗(yàn),以P<0.05為差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 對(duì)照組和觀察組小鼠各組織中細(xì)菌載量的變化本組研究結(jié)果顯示,觀察組小鼠肺、淋巴結(jié)、脾臟和肝臟等組織細(xì)菌載量均明顯多于對(duì)照組,且差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)表1。

        2.2 對(duì)照組和觀察組小鼠肺組織炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)程度的變化研究顯示除CD4+、CD8+以及CD8+IFNγ+T細(xì)胞外,觀察組小鼠肺組織單核細(xì)胞、中性粒細(xì)胞、巨噬細(xì)胞、CD4+IFN-γ+T細(xì)胞均顯著低于對(duì)照組,且差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)(表2),提示p38 MAPK 活性被抑制后小鼠肺組織炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)程度發(fā)生了重要變化。

        表1 小鼠各組織中細(xì)菌載量情況Tab.1 The circumstances of bacterial load in various tissues of mice ±s

        表1 小鼠各組織中細(xì)菌載量情況Tab.1 The circumstances of bacterial load in various tissues of mice ±s

        組別觀察組對(duì)照組t值P值肺6.21±0.04 5.76±0.05 7.593 0.000 2淋巴結(jié)5.11±0.07 4.16±0.05 4.700 0.001 5脾4.91±0.06 3.96±0.05 5.868 0.000 2肝4.11±0.07 3.46±0.05 3.178 0.009 9

        2.3 對(duì)照組和觀察組小鼠肺組織炎癥因子表達(dá)水平的變化在發(fā)現(xiàn)觀察組小鼠肺組織炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)顯著低于對(duì)照組之后,我們進(jìn)一步檢測(cè)小鼠肺組織炎癥因子的表達(dá)水平,研究顯示:相對(duì)于內(nèi)參基因,觀察組小鼠肺組織TNF-α、IL-12P40、IL-17A、IFN-γ、CXCL1、CXCL5和CXCL15 基因表達(dá)水平均明顯低于對(duì)照組,且差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)表3。

        表2 小鼠肺組織中炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)情況Tab.2 The ratio of inflammatory cell infiltration in lung tissue of mice ±s,%

        表2 小鼠肺組織中炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)情況Tab.2 The ratio of inflammatory cell infiltration in lung tissue of mice ±s,%

        組別觀察組對(duì)照組t值P值單核細(xì)胞1.82±0.21 2.71±0.31 4.221 0.001 8中性粒細(xì)胞4.01±1.68 7.11±1.88 3.084 0.011 6巨噬細(xì)胞1.92±0.60 3.42±0.68 5.007 0.000 5 CD4+T細(xì)胞31.23±2.44 31.95±1.69 0.241 5 0.814 1 CD8+T細(xì)胞59.95±2.98 59.23±1.38 0.218 4 0.831 5 CD4+IFN-γ+T細(xì)胞0.48±0.09 1.22±0.11 5.248 0.000 4 CD8+IFN-γ+T細(xì)胞0.25±0.06 0.19±0.03 0.871 4 0.404 0

        表3 小鼠肺組織中炎癥因子表達(dá)水平情況(相對(duì)于內(nèi)參基因)Tab.3 Expression levels of inflammatory factors in mouse lung tissue(relative to the reference gene)±s

        表3 小鼠肺組織中炎癥因子表達(dá)水平情況(相對(duì)于內(nèi)參基因)Tab.3 Expression levels of inflammatory factors in mouse lung tissue(relative to the reference gene)±s

        組別觀察組對(duì)照組t值P值TNF-α 0.52±0.07 1.02±0.11 3.893 0.003 7 IL-12P40 0.40±0.07 1.03±0.14 4.458 0.001 6 IL-17A 0.32±0.08 1.11±0.25 3.012 0.016 8 IFN-γ 0.46±0.03 1.01±0.08 7.006<0.000 1 CXCL1 0.59±0.14 1.17±0.14 2.917 0.017 15 CXCL5 0.37±0.21 1.27±0.30 2.500 0.033 8 CXCL15 0.41±0.09 1.08±0.26 2.855 0.021 3

        3 討論

        人體抗結(jié)核免疫涉及各細(xì)胞群體間的一系列復(fù)雜相互作用[7],各類免疫細(xì)胞對(duì)感染結(jié)核分枝桿菌的吞噬與殺滅[8]、由各種免疫細(xì)胞分泌的細(xì)胞因子所策動(dòng)的抗結(jié)核免疫保護(hù)作用可以控制感染[9],而由趨化因子所衍生的變態(tài)反應(yīng)則可使感染局限化[10-11]。本研究結(jié)果顯示C57BL/6小鼠的p38 MAPK 通路被其抑制劑SB203580 阻斷后,在組織水平、細(xì)胞水平和相關(guān)分子水平上,對(duì)結(jié)核分枝桿菌感染的反應(yīng)均表現(xiàn)出重要的變化:小鼠肺組織單核細(xì)胞、中性粒細(xì)胞、巨噬細(xì)胞、CD4+IFN-γ+T細(xì)胞在數(shù)量上大為減少,小鼠肺組織TNF-α、IL-12P40、IL-17A、IFN-γ、CXCL1、CXCL5和CXCL15表達(dá)水平大為降低,而最終呈現(xiàn)出小鼠肺、淋巴結(jié)、脾、肝等重要臟器的結(jié)核分枝桿菌載量較通路非抑制小鼠大幅升高,這些變化深刻表明p38 MAPK 通路在機(jī)體抗結(jié)核免疫中有著重要的作用。

        從機(jī)體抗結(jié)核免疫的分子層面看,有研究揭示[12-13]:p38 MAPK 可重要影響分枝桿菌早期分泌蛋白ESAT6 誘導(dǎo)的小鼠巨噬細(xì)胞和肺上皮細(xì)胞巨噬細(xì)胞趨化蛋白-1(MCP-1)、腫瘤壞死因子-α(TNF-α)的表達(dá)水平,p38 MAPK 被抑制后MCP-1、TNF-α的表達(dá)水平明顯降低。而MCP-1、TNF-α是結(jié)核病免疫和結(jié)核性肉芽腫形成過(guò)程中的重要分子[14],與本研究結(jié)果一致,即抑制p38 MAPK通路會(huì)降低感染機(jī)體的抗結(jié)核能力。YAO 等[1]的研究指出結(jié)核分枝桿菌Rv2346c 通過(guò)抑制通過(guò)p38/miRNA/NF-κB 途徑產(chǎn)生的TNF-α和IL-6 來(lái)增強(qiáng)巨噬細(xì)胞內(nèi)的分枝桿菌存活,則和本研究的觀察組小鼠肺、淋巴結(jié)、脾、肝等重要臟器的結(jié)核分枝桿菌載量較對(duì)照小鼠大幅升高的結(jié)果相吻合。

        對(duì)于結(jié)核病免疫,有學(xué)者歸結(jié)為由巨噬細(xì)胞、中性粒細(xì)胞等發(fā)揮重要作用的固有免疫應(yīng)答,以及由巨噬細(xì)胞和樹突狀細(xì)胞進(jìn)行抗原提呈、眾多細(xì)胞因子重要參與、各類淋巴細(xì)胞發(fā)揮免疫效應(yīng)的適應(yīng)性免疫應(yīng)答[15-16]。從中可以看到中性粒細(xì)胞、巨噬細(xì)胞和各類淋巴細(xì)胞均重要參與其中,MOGUCHE 等[17]、GRANT 等[18]還指出淋巴細(xì)胞的分化路徑也深刻影響機(jī)體抗結(jié)核免疫結(jié)局,本文觀察組小鼠肺組織單核細(xì)胞、中性粒細(xì)胞、巨噬細(xì)胞、CD4+IFN-γ+T細(xì)胞在數(shù)量上大為減少的研究結(jié)果印證了這些結(jié)論。

        另外,p38 MAPK 通路的抑制對(duì)小鼠抗結(jié)核作用的抑制涉及到小鼠肺、淋巴結(jié)、脾、肝等重要臟器,說(shuō)明其影響是全身性的。本研究對(duì)小鼠肺組織的炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)情況和相關(guān)因子表達(dá)水平進(jìn)行了較為深入地研究,基本闡明了小鼠肺臟結(jié)核分枝桿菌載量與其肺部免疫功能密切相關(guān)。但是,對(duì)于觀察組小鼠淋巴結(jié)、脾、肝等器官的結(jié)核分枝桿菌的載量增加,是源自這些器官的免疫功能降低,還是因?yàn)榉谓M織結(jié)核分枝桿菌載量增加后細(xì)菌的繁殖擴(kuò)張效應(yīng)所致,則有待進(jìn)一步的研究。

        綜上所述,結(jié)合筆者的前期研究[4],從p38 MAPK 通路激活與抑制兩個(gè)相對(duì)的方面證實(shí)了該通路在抗結(jié)核免疫中的重要作用,這將為抗結(jié)核新疫苗的研發(fā)和抗結(jié)核新藥的研制提供新的方向。

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