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        果蠅中egr基因過(guò)表達(dá)的pUAST載體構(gòu)建

        2020-09-10 00:23:40唐鵬程王繼善王永賽

        摘要:果蠅是一種常見(jiàn)的模式生物,在胚胎發(fā)育、疾病的發(fā)病機(jī)制以及基因表達(dá)調(diào)控等研究中發(fā)揮極其重要的作用。果蠅應(yīng)激反應(yīng)最主要涉及的是 JNK 信號(hào)通路,是一種真核生物進(jìn)化保守的信號(hào)通路。因此研究JNK信號(hào)通路中各基因的作用至關(guān)重要。本次實(shí)驗(yàn)主要目的是將果蠅JNK信號(hào)通路中的egr基因進(jìn)行過(guò)表達(dá),觀察其對(duì)果蠅的影響。本文將對(duì)本次實(shí)驗(yàn)中egr基因過(guò)表達(dá)的pUAST載體構(gòu)建做一個(gè)詳細(xì)說(shuō)明。

        關(guān)鍵詞:egr基因;分子克隆;載體構(gòu)建

        果蠅應(yīng)激反應(yīng)最主要涉及的是JNK信號(hào)通路,該通路是指一種由一系列內(nèi)在和外在的應(yīng)激源所誘發(fā)的應(yīng)激活化蛋白激酶途徑,是一種真核生物進(jìn)化保守的信號(hào)通路,調(diào)控廣泛的細(xì)胞過(guò)程如細(xì)胞凋亡等。[1]egr是果蠅中TNF唯一的同源物,啟動(dòng)TNF-JNK通路誘導(dǎo)細(xì)胞死亡。[2]本次實(shí)驗(yàn)?zāi)康氖菢?gòu)建果蠅egr基因的過(guò)表達(dá)質(zhì)粒,并將其導(dǎo)入果蠅體內(nèi)并使其表達(dá),觀察egr基因過(guò)表達(dá)對(duì)細(xì)胞凋亡的影響。

        一、基因序列和pUAST載體信息

        (一) egr基因序列

        從NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)中選擇gene,輸入egr選擇物種為果蠅,查看genbank序列,得到egr基因的兩個(gè)變體isoform A和isoform B,使用較長(zhǎng)的isoform A來(lái)進(jìn)行引物設(shè)計(jì)。

        (二)pUAST質(zhì)粒信息

        下圖為pUAST序列信息,我們可以詳細(xì)看到質(zhì)粒載體的多克隆位點(diǎn)及其序列。

        二、PCR引物設(shè)計(jì)

        引物設(shè)計(jì)是用一小段單鏈DNA或RNA,作為DNA復(fù)制的起始點(diǎn),在核酸合成反應(yīng)時(shí),作為每個(gè)多核苷酸鏈進(jìn)行延伸的出發(fā)點(diǎn)而起作用的多核苷酸鏈,在引物的3′-OH上,核苷酸以二酯鏈形式進(jìn)行合成。

        引物設(shè)計(jì)過(guò)程中有以下注意要點(diǎn):

        (一)引物長(zhǎng)度一般為15—30bp,其有效長(zhǎng)度[Ln=2(G十C)十(A十T)]一般不大于38,否則會(huì)降低產(chǎn)物的特異性。

        (二)G十C含量應(yīng)在40%一60%之間,PCR擴(kuò)增中的復(fù)性溫度一般較Tm值低等于引物的Tm值減去5—10度。

        (三)堿基分布盡量保證隨機(jī)性,應(yīng)避免連續(xù)出現(xiàn)4個(gè)以上的單一堿基,尤其是不應(yīng)在其3’端出現(xiàn)超過(guò)3個(gè)的連續(xù)G或C,否則會(huì)使引物在G十C富集序列區(qū)錯(cuò)誤引發(fā)。

        (四)引物不能含有自身互補(bǔ)序列,否則會(huì)形成發(fā)夾樣二級(jí)結(jié)構(gòu)。

        (五)兩個(gè)引物之間不應(yīng)有多于4個(gè)的互補(bǔ)或同源堿基,不然會(huì)形成引物二聚體,尤應(yīng)避免3’端的互補(bǔ)重疊。

        (六)一個(gè)引物的3‘末端序列不允許結(jié)合到另一個(gè)引物的任何位點(diǎn)上。

        (七)引物應(yīng)當(dāng)超出限制性內(nèi)切酶識(shí)別位點(diǎn)至少3個(gè)核苷酸,起到保護(hù)作用。

        本次引物設(shè)計(jì)使用的軟件為primer premier 5.0。通過(guò)egr基因CDS序列與pUAST的多克隆位點(diǎn)進(jìn)行比對(duì),確定限制性核酸內(nèi)切酶的酶切位點(diǎn),保證在酶切時(shí)不破壞egr基因的編碼區(qū)。

        三、PCR反應(yīng)

        PCR技術(shù)的基本原理類似于DNA的天然復(fù)制過(guò)程,其特異性依賴于與靶序列兩端互補(bǔ)的寡核苷酸引物。PCR由變性-退火-延伸三個(gè)基本反應(yīng)步驟構(gòu)成:1、模板DNA的變性:模板DNA經(jīng)加熱至93℃左右一定時(shí)間后,DNA雙鏈解離成為單鏈,以便它與引物結(jié)合,為下輪反應(yīng)作準(zhǔn)備;2、模板DNA與引物的退火(復(fù)性):模板DNA經(jīng)加熱變性成單鏈后,溫度降至55℃左右,引物與模板DNA單鏈的互補(bǔ)序列配對(duì)結(jié)合;3、引物的延伸:DNA模板-引物結(jié)合物在72℃、DNA聚合酶的作用下,以dNTP為反應(yīng)原料,靶序列為模板,按堿基互補(bǔ)配對(duì)原則合成一條新的互補(bǔ)鏈;4、重復(fù)循環(huán)變性-退火-延伸三過(guò)程就可獲得更多的“半保留復(fù)制鏈”,每完成一個(gè)循環(huán)需2~4分鐘,2~3小時(shí)就能將待擴(kuò)目的基因擴(kuò)增放大幾百萬(wàn)倍。[4]

        實(shí)驗(yàn)中先將果蠅的總RNA提取出來(lái),然后進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄得到cDNA。在PCR反應(yīng)體系中依次加入以下試劑:10 x PCR buffer 2.5μl,dNTP 2μl,cDNA 2μl,上游引物1μl,下游引物1μl,DNA Polymerase 0.5μl(必須選用高保真的DNA聚合酶),ddH2O 16μl。經(jīng)過(guò)變性、退火、延伸步驟后,得到擴(kuò)增的DNA序列。制作1%瓊脂糖凝膠,用PCR產(chǎn)物進(jìn)行電泳,電泳后進(jìn)行切膠回收。

        四、目的基因插入載體

        先將PCR擴(kuò)增得到的egr基因和pUAST質(zhì)粒進(jìn)行雙酶切,然后進(jìn)行電泳來(lái)分離酶切后的線性質(zhì)粒和未被酶切的質(zhì)粒,通過(guò)凝膠純化來(lái)純化回收。使用DNA連接酶將帶有粘末端的egr基因和線性質(zhì)粒連接,得到egr-pUAST質(zhì)粒。注意最好使連接片段與載體的比為3:1,以保證只有少量的載體發(fā)生自連,提高載體構(gòu)建的效率。然后將egr-pUAST質(zhì)粒導(dǎo)入感受態(tài)的大腸桿菌進(jìn)行復(fù)制轉(zhuǎn)化,將轉(zhuǎn)化后的大腸桿菌涂至含抗生素的瓊脂板上,37℃培養(yǎng)過(guò)夜。成功轉(zhuǎn)化的大腸桿菌可以在瓊脂板上形成菌落,挑取多個(gè)單克隆菌落接種到含培養(yǎng)液的管中,在搖床培養(yǎng)箱中擴(kuò)增。擴(kuò)增后的少量培養(yǎng)物在編號(hào)的瓊脂板上涂板,其余用于質(zhì)粒純化后用限制性核酸內(nèi)切酶進(jìn)行切割,將切割后的產(chǎn)物進(jìn)行凝膠電泳來(lái)確定大腸桿菌轉(zhuǎn)化的使含插入片段的質(zhì)粒而非自連的質(zhì)粒。將確定含插入片段質(zhì)粒的大腸桿菌進(jìn)一步擴(kuò)大培養(yǎng),然后將質(zhì)粒純化。最后將所得的片段進(jìn)行測(cè)序,驗(yàn)證目的基因得到了克隆,然后保種。[3]

        五、總結(jié)

        本次實(shí)驗(yàn)將用到分子克隆這一技術(shù),將egr基因插入到pUAST質(zhì)粒后導(dǎo)入果蠅中,讓egr基因在果蠅中進(jìn)行過(guò)表達(dá),觀察egr基因過(guò)表達(dá)后對(duì)果蠅產(chǎn)生的影響??偨Y(jié)目前所做的工作可以發(fā)現(xiàn),引物設(shè)計(jì)是該實(shí)驗(yàn)中最困難、也是最容易出現(xiàn)問(wèn)題的地方。另外,酶切位點(diǎn)的尋找和選擇也是一項(xiàng)技術(shù)性工作。在今后的實(shí)驗(yàn)中要加強(qiáng)對(duì)相關(guān)內(nèi)容的學(xué)習(xí)和操作,以便能成功學(xué)好分子克隆這項(xiàng)技術(shù)。

        參考文獻(xiàn):

        [1]唐成晨,賈佳.果蠅JNK信號(hào)通路的研究進(jìn)展[J].生物學(xué)雜志,2019,36(03):78-82.

        [2]薛奮勤,許晴,魏華, 等.僅采用 PCR 進(jìn)行分子克隆的方法探索[J].首都醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2014,

        作者簡(jiǎn)介:

        唐鵬程 王繼善 王永賽,臨沂大學(xué)。

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