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        不同干燥方式對(duì)當(dāng)歸性狀、顯微形態(tài)、活性成分含量和抗氧化物酶活性的影響

        2020-08-31 03:45:48荔淑楠王引權(quán)馬麗麗李淑琪傅金魁
        關(guān)鍵詞:藁本川芎內(nèi)酯

        荔淑楠,王引權(quán),2*,馬麗麗,李淑琪,傅金魁,樊 秦,彭 桐

        1甘肅中醫(yī)藥大學(xué);2甘肅省中藥質(zhì)量與標(biāo)準(zhǔn)研究重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室培育基地,蘭州 730000;3北京華珍烘烤系統(tǒng)設(shè)備工程有限公司工藝部,北京 100029

        當(dāng)歸為臨床常用的大宗中藥材之一,具有補(bǔ)血活血、調(diào)經(jīng)止痛、潤(rùn)腸通便等功效。用于血虛萎黃、眩暈心悸、月經(jīng)不調(diào)、經(jīng)閉痛經(jīng)、虛寒腹痛、腸燥便秘、風(fēng)濕痹痛、跌撲損傷、癰疽瘡瘍[1]。甘肅為當(dāng)歸道地產(chǎn)區(qū),種植歷史悠久、地區(qū)集中。甘肅當(dāng)歸栽培面積約占全國(guó)70%,年產(chǎn)量占全國(guó)90%[2,3]。新鮮當(dāng)歸含有大量有機(jī)酸、多糖、苯酞類化合物及其他次生代謝產(chǎn)物,具有熱敏性、揮發(fā)性、染菌性、高水分、易質(zhì)變等特征[4]。干燥是中藥材生產(chǎn)過(guò)程中最普遍、最關(guān)鍵的加工環(huán)節(jié)。干燥起到殺菌抑菌、改善外觀品質(zhì)、延長(zhǎng)儲(chǔ)存期、減少運(yùn)輸質(zhì)量及便于后續(xù)切片加工等作用[5]。目前當(dāng)歸產(chǎn)區(qū)普遍采用曬干、陰干和熏干等傳統(tǒng)方式[6]。傳統(tǒng)干燥方式存在著規(guī)模小散、技術(shù)裝備落后、干燥過(guò)程難控、干燥周期較長(zhǎng)等問(wèn)題,常造成藥材性味劣變、活性成分(特別是藥用有效成分)損失,導(dǎo)致用藥安全性和有效性下降。且加工費(fèi)時(shí)耗力,易引起環(huán)境污染等問(wèn)題。因此,研究規(guī)?;?、集約化、智能化的當(dāng)歸產(chǎn)地干燥加工技術(shù)勢(shì)在必行。近年來(lái),平衡脫水干燥技術(shù)已在河南焦作的山藥、牛膝,安徽亳州的白芍,甘肅隴西的當(dāng)歸、黃芪、甘草等大宗藥材的產(chǎn)地干燥加工中實(shí)現(xiàn)了產(chǎn)業(yè)化應(yīng)用。課題組前期在龍腦樟葉片干燥中也做過(guò)研究,初步證實(shí)平衡脫水干燥技術(shù)亦適宜于龍腦樟葉片干燥[7]。平衡脫水干燥的核心技術(shù)是在建立不同物料理論干燥曲線的基礎(chǔ)上,通過(guò)智能化控制系統(tǒng)在線精準(zhǔn)調(diào)控不同干燥階段溫度、濕度和時(shí)間三要素,有的放矢地調(diào)控脫水速率,使物料內(nèi)外均衡脫水,進(jìn)而保障干燥產(chǎn)品的高質(zhì)化和穩(wěn)定化。盡管平衡脫水技術(shù)已在甘肅當(dāng)歸產(chǎn)地加工中規(guī)?;瘧?yīng)用,但目前就其對(duì)當(dāng)歸藥材外觀性狀、顯微形態(tài)、活性成分含量及抗氧化酶活性等的影響仍缺乏系統(tǒng)研究。本研究將通過(guò)比較平衡脫水、曬干、陰干及熏干等4種干燥方式對(duì)當(dāng)歸藥材外觀和內(nèi)在品質(zhì)的綜合影響,探究干燥過(guò)程中的抗氧化生理機(jī)制,以期為當(dāng)歸道地產(chǎn)區(qū)產(chǎn)地干燥加工新技術(shù)的引進(jìn)與推廣,體現(xiàn)當(dāng)歸藥材的“優(yōu)形、優(yōu)質(zhì)”,最終實(shí)現(xiàn)藥用的“優(yōu)效”而提供科學(xué)依據(jù)。

        1 實(shí)驗(yàn)材料

        供試新鮮當(dāng)歸產(chǎn)自道地產(chǎn)區(qū)的甘肅岷縣,品種為“岷歸1號(hào)”。待干燥處理的新鮮當(dāng)歸為大小相近、無(wú)腐爛、無(wú)機(jī)械損傷、無(wú)病蟲(chóng)害的全根,初始含水量為72.87%。

        對(duì)照品為:阿魏酸(批號(hào)H27J7L16718)、洋川芎內(nèi)酯I(批號(hào)P02F9F54166)、洋川芎內(nèi)酯H(批號(hào)P02F9F54165)、洋川芎內(nèi)酯A(批號(hào)P23A9F68613)、正丁基苯酞(批號(hào)S09J9D65229)、藁本內(nèi)酯(批號(hào)Y17S9L70462)、歐當(dāng)歸內(nèi)酯A(批號(hào)P24A9S68617)、阿魏酸松柏酯(批號(hào)Z24D9B78131)均來(lái)源于上海源葉生物科技有限公司,純度≥98%;葡萄糖(SG8510,北京索萊寶科技有限公司);Sigma-alorich甲醇(批號(hào)WXBB6450V,HPLC≥99.9%);Sigma-alorich乙腈(批號(hào)WXBB6406V,HPLC≥99.9%);冰乙酸(批號(hào)20180801,分析純,天津大茂化學(xué)試劑公司);苯酚(批號(hào)20160729,國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司);水合氯醛(中國(guó)醫(yī)藥集團(tuán)上?;瘜W(xué)工業(yè)公司)??偟鞍?TP)測(cè)定試劑盒(帶標(biāo)準(zhǔn):考馬斯亮藍(lán)法)、總超氧化物歧化酶(T-SOD)測(cè)試盒(羥胺法)、過(guò)氧化氫酶(CAT)測(cè)定試劑盒(可見(jiàn)光法)、還原型谷胱甘肽(GSH)測(cè)定試劑盒(分光光度法)、過(guò)氧化物酶(POD)測(cè)定試劑盒(測(cè)植物)(比色法)均來(lái)自南京建成生物工程研究所。

        試驗(yàn)用設(shè)備:智能平衡脫水烘房(SY-4,北京華珍烘烤系統(tǒng)設(shè)備工程有限公司);系統(tǒng)顯微鏡(BX51-31X01,日本奧林巴斯TM);高效液相色譜儀(Agilent1100,美國(guó));電子分析天平(BT125D,賽多利斯科學(xué)儀器北京有限公司);超純水系統(tǒng)(Smart-N15VF,力康生物醫(yī)療科技控股有限公司);數(shù)控超聲波清洗器(KH-500DE,昆山禾創(chuàng)超聲儀器有限公司);Benchmark Plus酶標(biāo)儀(美國(guó)BIO-RAD);SCIENTZ-48高通量組織研磨器(Scientz-48,寧波新芝生物科技股份有限公司)。

        2 實(shí)驗(yàn)方法

        2.1 干燥處理

        試驗(yàn)設(shè)4種干燥方式,即平衡脫水干燥、熏干、曬干和陰干。重復(fù)3次。平衡脫水干燥在北京華珍烘烤系統(tǒng)設(shè)備工程有限公司工藝部按照預(yù)試驗(yàn)優(yōu)化的工藝流程進(jìn)行。熏干、曬干和陰干均在甘肅岷縣當(dāng)?shù)匕凑盏赖禺a(chǎn)區(qū)按傳統(tǒng)干燥工藝干燥。當(dāng)歸不同干燥處理方式的流程與參數(shù)見(jiàn)表1。

        表1 當(dāng)歸干燥處理方式及參數(shù)

        2.2 評(píng)價(jià)方法

        2.2.1 性狀鑒別

        按照中藥鑒定學(xué)常規(guī)鑒定方法,從形狀、大小、顏色、表面特征、斷面、質(zhì)地、氣味等方面進(jìn)行評(píng)價(jià)。

        2.2.2 顯微鑒別

        采用徒手切片法。將大小均勻的當(dāng)歸歸身橫切成薄片,滴加番紅染液封片,置顯微鏡下觀察并拍照。在20倍鏡下隨機(jī)選取15個(gè)油室,用顯微鏡自帶標(biāo)尺測(cè)量其直徑。采用常規(guī)粉末制片法,用 Olympus BX51-31X01 型系統(tǒng)顯微鏡觀察具體特征。

        2.2.3 活性物質(zhì)含量測(cè)定

        2.2.3.1 浸出物、揮發(fā)油提取率及多糖含量測(cè)定

        浸出物和揮發(fā)油含量按2015年版《中國(guó)藥典》方法測(cè)定。多糖含量采用苯酚硫酸法[6,8]。重復(fù)3次,取平均值作為結(jié)果。

        2.2.3.2 薄層色譜分析

        參照2015版《中國(guó)藥典》第一部測(cè)定[1]。

        2.2.3.3 阿魏酸和7種苯酞類成分測(cè)定

        采用高效液相色譜法[9,10]:以Merk RP-C18柱(4.6 mm×250 mm,5 μm)對(duì)其進(jìn)行分離,流動(dòng)相為1%乙酸(A):乙腈(B),梯度洗脫:18 min,19.0% B;60 min,100% B;75 min,100% B;檢測(cè)波長(zhǎng)280 nm;流速1.0 mL/min;柱溫30 ℃;進(jìn)樣量20 μL。

        2.2.3.4 混合對(duì)照品溶液的制備

        取對(duì)照品阿魏酸1.54 mg,藁本內(nèi)酯5.56 mg,洋川芎內(nèi)酯A 3.20 mg,洋川芎內(nèi)酯I 0.58 mg,洋川芎內(nèi)酯H 0.20 mg,歐當(dāng)歸內(nèi)酯A 1.10 mg,正丁基苯酞5.05 mg,阿魏酸松柏酯0.27 mg,精密稱定,分別置于5 mL容量瓶中,加甲醇溶解并定容至5 mL,得對(duì)照品貯備液分別精密各貯備液0.5 mL至5 mL容量瓶中,用甲醇定容至5 mL,得混合對(duì)照品溶液,然后精密吸取上述制得的混合對(duì)照品溶液各1.4、1.0、0.6、0.2、0.1 mL,分別用甲醇定容至2 mL容量瓶中,得質(zhì)量濃度不同的混合對(duì)照品溶液,以上對(duì)照品均置于4 ℃冰箱保存,備用。

        2.2.3.5 供試品溶液的制備

        取當(dāng)歸粉末3份(過(guò)3號(hào)篩),每份約0.5 g,精密稱定,置于150 mL磨口具塞錐形瓶中,加入70%甲醇溶液20 mL后稱重,用保鮮膜蓋嚴(yán),在220 W,80 Hz條件下超聲40 min,再稱重,用70%甲醇補(bǔ)足失重,搖勻,用0.22 μm微孔濾膜過(guò)率,取續(xù)濾液,即得。對(duì)照品及供試品溶液的色譜圖見(jiàn)圖1。

        圖1 4不同干燥方式當(dāng)歸的HPLC圖Fig.1 HPLC chromatogram of CA by different drying methods注:S1.空白試劑;S2.混合對(duì)照品;S.曬干;X.熏干;Y.陰干;P.平衡脫水干燥;1.阿魏酸;2.洋川芎內(nèi)酯I;3.洋川芎內(nèi)酯H;4.阿魏酸松柏酯;5.洋川芎內(nèi)酯A;6.正丁基苯酞;7.藁本內(nèi)酯;8.歐當(dāng)歸內(nèi)酯A。Note:S1.Blankreagent;S2.Mixed reference substance;S.Sun-dried CA;X.Fumed CA;Y.Shade-drying CA;P.Drying process on Balance dehydration of CA;1.Ferulic acid;2.Senkyunolide I;3.Senkyunolide H;4.Coniferyl ferulate;5.Senkyunolide A;6.n-Butyl phthalide;7.(Z)-Ligustilide;8.Levistolide A.

        2.2.3.6 線性關(guān)系考察

        按“2.2.3.3”項(xiàng)下色譜條件進(jìn)行測(cè)定,每個(gè)濃度進(jìn)樣3次,取平均值。以進(jìn)樣量(X)為橫坐標(biāo),平均色譜峰面積(Y)為縱坐標(biāo),分別繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得回歸方程。阿魏酸:Y=14.082X-32.553(r=0.999 9),在0.003 1~0.308 0 mg/mL范圍內(nèi)線性關(guān)系良好;洋川芎內(nèi)酯I:Y=70 075X-53.795(r=0.999 6),在0.001 2~0.011 6 mg/mL范圍內(nèi)線性關(guān)系良好;洋川芎內(nèi)酯H:Y=89 289X-14.828(r=0.999 8),在0.000 4~0.004 0 mg/mL范圍內(nèi)線性關(guān)系良好;阿魏酸松柏酯:Y=33 984X+1.656 2(r=0.999 9),在0.000 5~0.054 0 mg/mL范圍內(nèi)線性關(guān)系良好;洋川芎內(nèi)酯A:Y=8 270.8X+6.568 8(r=0.999 7),在0.003 2~0.064 0 mg/mL范圍內(nèi)線性關(guān)系良好;正丁基苯酞:Y=8 833X-2.747 4(r=0.999 8),在0.005 05~0.101 0 mg/mL范圍內(nèi)線性關(guān)系良好;藁本內(nèi)酯:Y=23 451X+16.729(r=0.999 6),在0.003 9~1.112 0 mg/mL范圍內(nèi)線性關(guān)系良好;歐當(dāng)歸內(nèi)酯A:Y=56 521X-6.774 5(r=0.999 8),在0.001 1~0.022 0 mg/mL范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。

        2.2.4 抗氧化活性測(cè)定

        取當(dāng)歸粉末(過(guò)3號(hào)篩)3份,每份約0.2 g,精密稱定,置于研缽中,加3.0 mL 0.05 mol/L pH7.8磷酸鈉緩沖液,加入少量石英砂,置SCIENTZ-48高通量組織研磨器中快速研磨,過(guò)濾,在4 ℃,3500 rpm條件下離心10 min,取上清液于4 ℃冰箱中保存,供抗氧化酶活性測(cè)定。可溶性蛋白采用考馬斯亮藍(lán)G-250法測(cè)定;當(dāng)歸SOD、POD、CAT等酶活性和GSH含量均按南京建成生物工程研究所提供的酶聯(lián)免疫法(ELISA)法試劑盒方法測(cè)定。所有測(cè)定均重復(fù)3次。

        2.3 數(shù)據(jù)處理

        3 結(jié)果與分析

        3.1 性狀鑒別

        由圖2和表2可以看出,4種干燥方式處理下的當(dāng)歸性狀存在明顯差異。相同點(diǎn)在于大小相近、質(zhì)地多脆。不同點(diǎn)在于:P的當(dāng)歸色澤均勻鮮亮、表面皺紋較疏松,而X、S、Y的當(dāng)歸色澤不均勻、表面皺紋致密。X與P的斷面棕色點(diǎn)狀分泌腔明顯,皮部油樣光澤不明顯,而S與Y與之相反。X和S的香氣較濃郁,Y的次之,P的較淡。P有較強(qiáng)的麻舌感。

        圖2 不同干燥方式當(dāng)歸性狀比較Fig.2 Character comparison in CA by different drying methods

        表2 不同干燥方式當(dāng)歸藥材性狀的差異

        3.2 顯微特征

        3.2.1 油室

        油室直徑大小能間接反映當(dāng)歸揮發(fā)油的含量[11]。從圖3看出,不同干燥方式下當(dāng)歸油室的平均直徑P(119.1 μm)>X(113.3 μm)>S(104.2 μm)>Y(89.7 μm)。P的油室直徑比X高5.11%,比S高14.33%,比Y高32.82%,表明P對(duì)當(dāng)歸揮發(fā)油保存較好。

        3.2.2 薄壁細(xì)胞內(nèi)含淀粉粒

        由圖4看出,P與X下當(dāng)歸的淀粉粒密度較高,且與S和Y的差異明顯。淀粉粒為當(dāng)歸薄壁細(xì)胞富含的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)[12],因此,從淀粉粒含量可以反映出P與X對(duì)當(dāng)歸內(nèi)在品質(zhì)的保持具有優(yōu)勢(shì)。

        圖4 不同干燥方式當(dāng)歸薄壁細(xì)胞內(nèi)含淀粉粒Fig.4 Starch granules in parenchyma cells of CA under different drying methods

        圖3 不同干燥方式當(dāng)歸藥材的油室Fig.3 Oil chamber structure of CA under different drying methods

        3.3 活性物質(zhì)含量比較

        測(cè)定結(jié)果表明,4種干燥方式下,P當(dāng)歸的阿魏酸、歐當(dāng)歸內(nèi)酯A和洋川芎內(nèi)酯A含量均為最高,且與其他干燥方式均有顯著性差異(P<0.05),其中阿魏酸含量分別比X、S和Y高57.4%、36.2%和8.0%;歐當(dāng)歸內(nèi)酯A含量分別比X、S和Y高77.8%、14.3%和33.3%;洋川芎內(nèi)酯A含量分別比X、S和Y高64.9%、96.8%和125.9%。藁本內(nèi)酯含量在P和Y無(wú)顯著性差異,分別比X、S和Y高32.5%、49.5%和11.4%(見(jiàn)表3)。

        表3 不同干燥方式當(dāng)歸活性成分含量比較

        3.4 抗氧化酶活性比較

        由圖5可知,SOD、CAT、POD酶活性和GSH含量均以S樣品最高(P<0.5),Y和P最低。其中SOD酶活性分別比P、Y、X高78.60%、77.58%、76.70%,CAT酶活性分別比P、Y、X高86.58%、74.88%、78.63%,POD酶活性分別比P、Y、X高82.60%、80.21%、78.15%,GSH含量分別比P、Y、X高73.77%、52.47%、37.07%,而蛋白含量以P和Y樣品的最高,分別為18.31和17.29 mg prot/g,S的含量最低,為3.05 mg prot/g。表明4種干燥方式顯著影響了當(dāng)歸的抗氧化物酶活性及含量(P<0.05)。預(yù)示著干燥過(guò)程中發(fā)生了由多種酶催化的復(fù)雜生物化學(xué)反應(yīng),其中酚酸類物質(zhì)因發(fā)生酶促氧化而導(dǎo)致?lián)p失。尤其是當(dāng)歸在曬干過(guò)程中長(zhǎng)期暴露于陽(yáng)光下,藥材體內(nèi)酶活性增加,加之與空氣充分接觸,加劇了酚酸類物質(zhì)的大量損失[12],而平衡脫水干燥方式的介質(zhì)溫度、濕度和干燥時(shí)間等條件可控,且處在相對(duì)密閉的工況下,能夠抑制多種氧化酶活性,最大限制地保持藥材的內(nèi)在品質(zhì)。

        圖5 不同干燥方式對(duì)當(dāng)歸抗氧化酶活性比較Fig.5 Comparison of antioxidant enzymes in CA under different drying methods

        3.5 相關(guān)分析

        從表4不同干燥方式下當(dāng)歸活性成分及抗氧化活性酶相關(guān)性分析結(jié)果看,總蛋白與洋川芎內(nèi)酯H和洋川芎內(nèi)酯I呈極顯著負(fù)相關(guān)(P<0.01),與洋川芎內(nèi)酯A、藁本內(nèi)酯、多糖和揮發(fā)油提取率呈顯著或極顯著正相關(guān)(P<0.05或P<0.01);SOD、CAT和POD酶活性均與洋川芎內(nèi)酯H和洋川芎內(nèi)酯I呈極顯著正相關(guān)(P<0.01),與藁本內(nèi)酯、多糖含量、揮發(fā)油提取率和總蛋白呈顯著或極顯著負(fù)相關(guān)(P<0.05或P<0.01);GSH含量與阿魏酸、洋川芎內(nèi)酯A、藁本內(nèi)酯、多糖、浸出物和總蛋白呈顯著或極顯著負(fù)相關(guān)(P<0.05或P<0.01),與洋川芎內(nèi)酯H和SOD、CAT、POD呈顯著或極顯著正相關(guān)(P<0.05或P<0.01)。結(jié)果表明,當(dāng)歸干燥過(guò)程是藥材內(nèi)在品質(zhì)形成的過(guò)程,其生物化學(xué)本質(zhì)是以初生代謝產(chǎn)物(如多糖、總蛋白等)為底物,以多種酶類為催化劑的復(fù)雜生物化學(xué)過(guò)程,其最終產(chǎn)物為次生代謝產(chǎn)物(藁本內(nèi)酯、阿魏酸、苯肽類等)。

        表4 不同干燥方式下當(dāng)歸活性物質(zhì)與抗氧化物酶相關(guān)性分析

        3.6 主成分分析

        對(duì)11個(gè)活性成分進(jìn)行主成分分析,得到11個(gè)成分的初始特征值及貢獻(xiàn)率(表5)。結(jié)果顯示:前3個(gè)主成分特征值均大于1,說(shuō)明前3個(gè)主成分在當(dāng)歸質(zhì)量評(píng)價(jià)中起著主導(dǎo)作用,3個(gè)主成分的累計(jì)方差貢獻(xiàn)率達(dá)90.965%(>85%),可以代表當(dāng)歸中11個(gè)成分的大部分信息,能夠客觀地反映不同干燥方式當(dāng)歸藥材的綜合質(zhì)量的影響。

        表5 旋轉(zhuǎn)后的主成分特征值及方差貢獻(xiàn)率

        每個(gè)主成分包含的各因子其載荷系數(shù)綜合反映了所測(cè)成分對(duì)各主成分的影響[14],由表6可知,洋川芎內(nèi)酯A和藁本內(nèi)酯對(duì)主成分1有較強(qiáng)的正負(fù)荷,洋川芎內(nèi)酯H對(duì)主成分1有較強(qiáng)的逆負(fù)荷;歐當(dāng)歸內(nèi)酯A對(duì)主成分2有明顯的正負(fù)荷,阿魏酸松柏酯和揮發(fā)油提取率對(duì)主成分2有較強(qiáng)的逆負(fù)荷;正丁基苯酞的載荷因子在主成分3中較大,說(shuō)明干燥方式對(duì)當(dāng)歸藥材的活性成分影響較大。

        表6 旋轉(zhuǎn)后主成分系數(shù)矩陣

        由表6得出各主成分的表達(dá)式:

        Y1=0.658Z1-0.750Z2-0.879Z3-0.311Z4+0.876Z5+0.598Z6+0.874Z7+0.249Z8+0.790Z9+0.577Z10+0.774Z11

        Y2=0.597Z1+0.613Z2+0.407Z3-0.690Z4+0.146Z5+0.475Z6+0.086Z7+0.964Z8-0.516Z9-0.717Z10+0.395Z11

        Y3=-0.417Z1-0.005Z2-0.017Z3+0.471Z4+0.445Z5+0.613Z6-0.302Z7-0.032Z8-0.068Z9-0.259Z10+0.161Z11

        以各主要因子的方差貢獻(xiàn)率與3個(gè)主成分的總貢獻(xiàn)率之比為權(quán)重系數(shù),即各主成分的權(quán)重系數(shù)為:0.535 1、0.349 0、0.115 9,得到主成分綜合線性組合表達(dá)式Y(jié)總得分=0.535 1Y1+0.349 0Y2+0.115 9Y3,由表7可知,當(dāng)歸4種干燥方式下當(dāng)歸綜合質(zhì)量平衡脫水干燥>陰干>煙熏>曬干,且該方法干燥耗時(shí)較短,生產(chǎn)率較高,該方法可作為道地產(chǎn)區(qū)傳統(tǒng)方法的替代。

        表7 旋轉(zhuǎn)后主成分因子及綜合評(píng)價(jià)

        3.7 聚類分析

        采用組間聯(lián)接法對(duì)當(dāng)歸不同干燥方法進(jìn)行聚類分析,結(jié)果見(jiàn)圖6,由圖6可知,當(dāng)臨界值介于5~10時(shí),將當(dāng)歸干燥方式分為3大類,其中X1(熏干)樣品聚為一類,S1、S2、X3、S3、X2聚為一類,Y1、Y2、Y3、P1、P2、P3樣品聚為一類,說(shuō)明陰干和平衡脫水干燥的當(dāng)歸藥材成分含量較為接近。

        圖6 當(dāng)歸不同干燥方式的聚類分析Fig.6 Cluster analysis of different drying methods for CA

        4 討論

        中藥材道地性的內(nèi)涵在藥材表型上體現(xiàn)“優(yōu)形”和“優(yōu)質(zhì)”,在臨床應(yīng)用價(jià)值上實(shí)現(xiàn)“優(yōu)效”[15]。干燥過(guò)程在保障中藥材的“優(yōu)形”和“優(yōu)質(zhì)”和實(shí)現(xiàn)“優(yōu)效”中起到最為關(guān)鍵的作用。根莖類中藥材為多孔介質(zhì)物料,其干燥過(guò)程一般分為升速、恒速和降速三個(gè)階段。物料在干燥過(guò)程中,其介質(zhì)的溫度和含水量不斷發(fā)生變化,屬典型的非穩(wěn)態(tài)不可逆過(guò)程[16]。熏干、曬干、陰干等傳統(tǒng)干燥方式難以精準(zhǔn)控制階段性變溫和調(diào)濕過(guò)程,而平衡脫水干燥技術(shù)可通過(guò)智能化自動(dòng)控制系統(tǒng)調(diào)控階段性變溫和調(diào)濕過(guò)程,實(shí)現(xiàn)藥材內(nèi)外失水速率保持相對(duì)平衡,減少藥材因脫水過(guò)快而發(fā)生的過(guò)度形變,抑制多種氧化酶活性,避免了苯肽類、揮發(fā)油、酚酸類等物質(zhì)的氧化分解,最大限度地保持了藥材的內(nèi)在品質(zhì)。

        平衡脫水干燥的當(dāng)歸色澤鮮亮均勻、表面呈黃棕色,皺紋較疏松,油室大小、淀粉粒含量和活性成分含量均顯著高于其它處理,其皮部油樣光澤不明顯,斷面分泌腔呈棕色點(diǎn)狀分布且較多。這與現(xiàn)行中國(guó)藥典描述的性狀存有差異。其原因可能與該工藝流程中對(duì)所干燥的當(dāng)歸藥材未采用傳統(tǒng)的搓揉工藝有關(guān),需要在系統(tǒng)升級(jí)中加以改進(jìn)。從中藥資源生態(tài)學(xué)的觀點(diǎn)看,中藥材在干燥過(guò)程會(huì)受到許多非生物脅迫(如高溫、高濕、干旱等)的影響,也會(huì)對(duì)活性成分組成及藥效物質(zhì)形成過(guò)程中相關(guān)的次生代謝途徑、非酶促保護(hù)系統(tǒng)形成、抗性蛋白合成、應(yīng)答基因表達(dá)等產(chǎn)生深刻影響。因此今后的研究有必要對(duì)中藥材平衡脫水過(guò)程中的生理生化及分子機(jī)制作深入探究。也要對(duì)平衡脫水過(guò)程中的水分遷移規(guī)律與機(jī)制做進(jìn)一步深入研究。

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