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        miR-548c-5p靶向Notch通路增強胃癌SGC7901/VCR細胞對紫杉醇的敏感性

        2020-08-26 10:41:38黃河魏童
        實用醫(yī)學(xué)雜志 2020年15期
        關(guān)鍵詞:紫杉醇耐藥胃癌

        黃河 魏童

        新疆醫(yī)科大學(xué)第五附屬醫(yī)院1胃腸外科,2 血管腫瘤介入科(烏魯木齊830054)

        癌癥是全球死亡的主要原因之一。化療是治療癌癥的主要方法之一。癌細胞對化療的耐藥性仍然是臨床上治療癌癥的主要障礙[1]。近年來,越來越多的研究表明,microRNA 在腫瘤細胞的藥物敏感或耐受中發(fā)揮了重要作用,為深入了解腫瘤耐藥機制并尋找腫瘤治療的新靶點提供了新的思路[2-3]。據(jù)報道,miRNA 在多種腫瘤中的表達水平發(fā)生異常[4],在腫瘤中發(fā)揮原癌基因或腫瘤抑制因子的功能,使miRNA 在腫瘤診斷、預(yù)后和治療中展現(xiàn)出了一定的潛力[5]。miR-548c-5p 在多種腫瘤細胞中表達下調(diào),在肝癌、結(jié)直腸癌中發(fā)揮了抑癌基因的作用。目前,miR-548c-5p 在胃癌中的調(diào)控機制尚未見報道。本研究發(fā)現(xiàn)miR-548c-5p 在胃癌耐藥細胞株SGC7901/VCR 中顯著下調(diào),生物信息學(xué)分析表明Notch 通路是潛在靶點,需要進一步通過分子、細胞實驗證實miR-548c-5p 通過Notch通路參與胃癌細胞增殖、侵襲和耐藥的調(diào)控。本研究首次證實了miR-548c-5p參與Notch通路調(diào)控,與胃癌細胞的耐藥密切相關(guān),這將為解決胃癌化療耐藥問題提供新的理論依據(jù)和手段。

        1 材料與方法

        1.1 實驗材料SGC7901 細胞和SGC7901/VCR 細胞系均購自ATCC 公司;細胞培養(yǎng)試劑(DMEM 培養(yǎng)基、OPTI-MEM 培養(yǎng)基、胎牛血清和雙抗)購自Gibco 公司;miR-548c-5p mimics 和miR-NC 由廣州博銳合成;pcDNA3.1-Notch1 質(zhì)粒載體、pLUC-3′-UTR-Notch1 和pLUC-突變3′-UTR 質(zhì)粒載體由上海生工構(gòu)建;Lipofectamin2000、TRIzol 試劑和逆轉(zhuǎn)錄酶(RevertAid Reverse Transcriptase)購自Thermo;2×SGExcel FastSYBR Mixture 和miRNA qPCR master mix 購自上海生工;紫杉醇購自sigma;Notch1 抗體、Hes1 抗體和β-actin 抗體均購自Abcam 公司。

        1.2 細胞培養(yǎng)和細胞轉(zhuǎn)染SGC7901 細胞和SGC7901/VCR 細胞在含10%胎牛血清和100 U/mL青霉素和100 mg/mL 鏈霉素的DMEM 培養(yǎng)基中培養(yǎng),培養(yǎng)條件為37 ℃、含5% CO2的細胞培養(yǎng)箱。細胞接種于6 孔板中,當長至培養(yǎng)板底部的80%以上時,參考lipofectamine 的說明書,進行microRNA mimics 或質(zhì)粒轉(zhuǎn)染。

        1.3 TRIzol 法提取細胞總RNA采用PBS 緩沖液沖洗貼壁細胞2 次,向細胞加入500 μL TRIzol試劑,裂解細胞。將細胞裂解液轉(zhuǎn)移至1.5 mL EP管中,每管加入100 μL氯仿,劇烈震蕩15 s,室溫靜置2 min,4 ℃,12 000 r/min離心15 min。取上層水相,加入新的EP管中,加入等體積的異丙醇,顛倒混勻,室溫靜置10 min,4 ℃,12 000 r/min 離心15 min,去上清液。用70%的無水乙醇洗滌2次,4 ℃,7 000 r/min 離心5 min,去上清液,自然條件下,充分干燥。加入30~50 μL DEPC 水溶解,采用分光光度計(NanoDrop ND-1000,Thermo)檢測RNA 的吸光度,分析RNA 的純度及濃度,要求A260/A280>2.0,A230/A260>1.8。保存于-80 ℃冰箱。

        1.4 qRT-PCR將RNA 逆轉(zhuǎn)錄為cDNA。microRNA 定量:按照miRNA qPCR master mix 說明書,配制qPCR 反應(yīng)體系(10 μL 2 × miRNA qPCR master mix +0.5 μL 上游引物+0.5 μL 下游引物+1 μL cDNA,加入超純水補齊至20 μL),以U6 為內(nèi)參;Notch1 和Hes1 定量:按照2 × SGExcel FastSYBR Mixture 說明書,配制qPCR 反應(yīng)體系(25 μL 2 ×SGExcel FastSYBR Mixture+1 μL 上游引物+1 μL 下游引物+1 μL cDNA,加入超純水補齊至50 μL),以β-actin 作為內(nèi)參。上機檢測(StepOnePlusTM實時熒光定量PCR 儀,美國ABI)。目的基因相對表達量變化根據(jù)2-ΔΔCT計算。

        1.5 Western Blot采用RIPA緩沖液裂解細胞,提取總蛋白。樣品經(jīng)SDS-PAGE 分離,轉(zhuǎn)移至PVDF膜上。以1∶100~1∶1 000稀釋后加入一抗。以兔IgGHRP 抗體為二抗。以β-actin 為內(nèi)參。在Fluor Chem Systems 下(ProteinSimple)觀察結(jié)果,采用Alpha View Software 分析目標蛋白(Notch1 和Hes1)的相對表達量。

        1.6 熒光素酶報告基因?qū)嶒灲臃NSGC7901/VCR細胞至6 孔板,采用lipofectamine2000 共轉(zhuǎn)染1 μg質(zhì)粒和miR-548c-5p mimics 或miR-NC。24 h 后,使用熒光素酶檢測試劑盒(Promega)進行熒光素酶活性檢測。

        1.7 細胞增殖分析用含10%胎牛血清的培養(yǎng)基將SGC7901/VCR 細胞配成懸液,以每孔104 個細胞接種96孔板。5%CO2,37 ℃孵育,至細胞單層鋪滿孔底。培養(yǎng)3~5 d 后,每孔加入CCK-8 試劑10 μL繼續(xù)孵育4 h。在酶標儀上測定每孔光吸收值,繪制細胞生長曲線。

        1.8 細胞侵襲檢測細胞侵襲使用Transwell 小室(康寧)進行。將無血清培養(yǎng)基中的1×105個細胞放入涂有基質(zhì)膠的上室(BD Biosciences)。接下來,將含有10%胎牛血清的培養(yǎng)基添加到下室。孵育24 h 后,除去上層膜殘留的細胞,將侵襲通過膜的細胞進行固定,用甲醇固定,用0.1%結(jié)晶紫染色。在IX71 倒置顯微鏡(Olympus)下計數(shù)并成像。

        1.9 統(tǒng)計學(xué)方法采用GraphPad Prism5 統(tǒng)計軟件進行分析,P<0.05 為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 miR-548c-5p、Notch1 和Hes1 在SGC7901/VCR細胞中的表達首先,采用qRT-PCR分析miR-548c-5p、Notch1 和Hes1 在SGC7901 細胞系和SGC7901/VCR 細胞中的表達變化,結(jié)果表明,miR-548c-5p 在SGC7901/VCR 細胞的表達顯著低于SGC7901細胞(P<0.05)(圖1A),而Notch1和Hes1在SGC7901/VCR細胞中mRNA水平顯著高于SGC7901細胞(P<0.05)(圖1B)。進一步Western blot 結(jié)果表明,Notch1 蛋白和Hes1 蛋白在SGC7901/VCR 細胞顯著升高(P<0.05)(圖1C、D)。以上結(jié)果顯示,在SGC7901/VCR 細胞中,miR-548c-5p 與Notch 通路可能存在一定關(guān)聯(lián)。

        圖1 miR-548c-5p、Notch1 和Hes1 在SGC7901 和SGC7901/VCR 細胞中的表達Fig.1 Expression of miR-548c-5p,Notch1 and Hes1 in SGC7901 and SGC7901/VCR cells

        2.2 Notch 通路是miR-548c-5p 的靶點將miR-548c-5p mimics 轉(zhuǎn)染SGC7901/VCR 細胞,轉(zhuǎn)染48 h后,采用qRT-PCR 分析miR-548c-5p、Notch1 和Hes1 的表達變化,結(jié)果表明,與miR-NC 轉(zhuǎn)染組相比,miR-548c-5p 的表達顯著升高(P<0.05)(圖2A)。Western blot 結(jié)果表明,與對照組相比,miR-548c-5p 轉(zhuǎn)染后,細胞中Notch1 和Hes1 在蛋白質(zhì)水平上表達也顯著下降(P<0.05)(圖2B、C)。熒光素酶檢測結(jié)果表明,miR-548c-5p可以顯著降低Notch1野生型3′-UTR 質(zhì)粒的熒光素酶活性(P<0.05)(圖2D)。以上結(jié)果證明,miR-548c-5p 可以通過直接結(jié)合于Notch1 的3′-UTR 序列,抑制Notch 信號通路。

        2.3 miR-548c-5p 通過靶向Notch 通路抑制SGC 7901/VCR 細胞增殖和侵襲為了分析miR-548c-5p 和Notch 通路對SGC7901/VCR 細胞生物學(xué)行為的影響,通過lipofectamine2000 瞬時轉(zhuǎn)染細胞后,采用CCK-8 實驗分析細胞的增殖,采用Twanwell實驗分析細胞的侵襲。CCK-8 結(jié)果表明,在轉(zhuǎn)染后72 h,miR-548c-5p 可以顯著抑制細胞的增殖,而過表達Notch1 可以抵消miR-548c-5p 對SGC7901/VCR 細胞增殖的抑制作用(圖3A)。Twanswell 結(jié)果表明,miR-548c-5p 可以顯著抑制細胞的侵襲,同樣,過表達Notch1 可以逆轉(zhuǎn)miR-548c-5p 對SGC7901/VCR 細胞侵襲的抑制作用(圖3B)。以上結(jié)果表明,miR-548c-5p 可以抑制SGC7901/VCR 細胞的侵襲,Notch1 是miR-548c-5p 的一個重要靶點。

        2.4 miR-548c-5p可以提高SGC7901/VCR 紫杉醇的敏感性CCK-8實驗結(jié)果表明,在轉(zhuǎn)染后的72 h,過表達miR-548c-5p 可以顯著抑制SGC7901/VCR細胞的增殖,而將紫杉醇與miR-548c-5p 聯(lián)合,進一步抑制了細胞增殖(圖4A)。Twanwell結(jié)果表明,紫杉醇與miR-548c-5p 聯(lián)合,對SGC7901/VCR 細胞侵襲的抑制作用最強(圖4B)。以上結(jié)果證實,miR-548c-5p聯(lián)合紫杉醇可以進一步抑制SGC7901/VCR 增殖和侵襲,miR-548c-5p 可以明顯提高SGC7901/VCR 對紫杉醇的敏感性。

        圖2 過表達miR-548c-5p 下調(diào)Notch1 和Hes1Fig.2 Overexpression of miR-548c-5p downregulates Notch1and Hes1

        圖3 miR-548c-5p 抑制SGC7901/VCR 細胞增殖、遷移和侵襲Fig.3 miR-548c-5p suppresses proliferation,migration and envision of SGC7901/VCR cells

        圖4 miR-548c-5p 增強SGC7901/VCR 細胞對紫杉醇的敏感性Fig.4 miR-548c-5p enhances the sensitivity of SGC7901/VCR cells to paclitaxel(PTX)

        3 討論

        在全世界范圍內(nèi),胃癌是致死率最高的疾病之一[6]。盡管在過去的幾十年里,胃癌發(fā)病率和病死率普遍下降,胃癌仍是全球第二大癌癥死亡原因,占新診斷癌癥的10%左右。目前,胃癌的治療手段主要包括手術(shù)治療、化療和放療[7]?;熑匀皇翘岣呖汕谐瓦M展期胃癌患者的整體生存和生活質(zhì)量的主要治療手段。對于晚期患者,化療干預(yù)被認為可以抑制腫瘤侵襲和轉(zhuǎn)移,延長病人的生存期。然而,在許多情況下,治療失敗是因為癌細胞的固有或者獲得性的多藥耐藥(MDR)[8]。當前,藥物耐受被認為是一個多因素參與的過程,主要機制包括降低水溶性藥物的攝取,增強DNA損傷的修復(fù),抑制腫瘤細胞凋亡,改變藥物的代謝和增加化療藥物的能量依賴性泵出等[9-10]。然而,影響胃癌的藥物耐受的機制仍未完全闡明。因此,有必要深入了解胃癌細胞耐藥的分子機制。

        miRNA 是內(nèi)源性的非編碼RNA,可以在轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)節(jié)基因的表達,并已被證明可以在不同的生物過程中發(fā)揮關(guān)鍵性作用,包括細胞凋亡、增殖、應(yīng)激反應(yīng)和代謝[11]。已有研究揭示,miRNA 與多種腫瘤細胞化療敏感性或抵抗,包括卵巢癌細胞和乳腺癌細胞[12-13]。然而,關(guān)于miRNA 在胃癌化療耐藥中的作用,目前的研究仍然較少。在最近的研究中發(fā)現(xiàn),有一部分microRNA 在胃癌耐壓細胞系中SGC7901/VCR 細胞和親代細胞系SGC7901中發(fā)生差異性表達。例如,miRNA-106b 基因的染色體7q22 位點,而該位點在SGC7901/VCR 細胞中通常是缺失的。在SGC7901/VCR 細胞中,有研究發(fā)現(xiàn)miR-16 和miR-15b 發(fā)生下調(diào),進一步研究發(fā)現(xiàn),miR-15b 和miR-16 可直接調(diào)控BCL2 的表達,從而調(diào)節(jié)癌細胞對化療藥物誘導(dǎo)凋亡的敏感性[14]。有研究發(fā)現(xiàn),miR-548c-5p 在CD90+HepG2 細 胞中呈低表達,轉(zhuǎn)染miR-548c-5p 可以下調(diào)凋亡蛋白(bcl-2、bcl-XL 和caspase-3)的表達,并可以抑制細胞的增殖、遷移和侵襲,促進凋亡[15]。本研究發(fā)現(xiàn)miR-548c-5p在胃癌耐藥細胞株SGC7901/VCR 中的表達明顯下調(diào),過表達miR-548c-5p 降低Notch1 和Hes1 的表達水平。

        Notch 通路是多種腫瘤微環(huán)境中最重要的通路之一。Notch 受體與其配體的結(jié)合導(dǎo)致蛋白水解并釋放Notch1 激活的胞內(nèi)結(jié)構(gòu)域,該結(jié)構(gòu)域通常移位至細胞核內(nèi),并驅(qū)動多個靶蛋白的表達,如Hes/Hey 家族和c-Myc[16]。大量研究證實,Notch 通路與腫瘤細胞化療藥物耐受密切相關(guān)[17]。然而,Notch 信號通路在胃癌細胞耐藥中的作用尚不清楚。本研究發(fā)現(xiàn),miR-548c-5p 在胃癌耐藥細胞株中的表達顯著降低,通過生物信息學(xué)分析發(fā)現(xiàn),Notch 是其潛在的靶點;Notch1 信號通路關(guān)鍵分子Notch1和Hes1在耐藥細胞株中的表達也明顯低于普通胃癌細胞。另外,通過轉(zhuǎn)染miR-548c-5p mimics,分析SGC7901/VCR 細胞的細胞生物學(xué)行為,結(jié)果發(fā)現(xiàn)miR-548c-5p 對SGC7901/VCR 細胞的增殖和侵襲具有明顯的抑制作用,而過表達Notch1 可以抵消miR-548c-5p 對SGC7901/VCR 細胞的抑制作用。以上研究證實,miR-548c-5p 可以通過靶向Notch1 通路,參與胃癌細胞的增殖、侵襲和耐藥的調(diào)控。而將miR-548c-5p 與紫杉醇聯(lián)合使用,可以進一步抑制SGC7901/VCR 細胞的增殖和侵襲,表明miR-548c-5p 可以提高胃癌細胞對化療藥物的敏感性,有望為提高胃癌化療療效提供新的靶點和策略。

        總之,本研究發(fā)現(xiàn),miR-548c-5p 在胃癌耐藥細胞株中表達發(fā)生下調(diào),過表達miR-548c-5p 可以抑制胃癌耐藥細胞的增殖和侵襲,另外,miR-548c-5p可以顯著提高胃癌耐藥細胞對紫杉醇的敏感性,分析發(fā)現(xiàn),Notch 通路可能是miR-548c-5p 的重要靶點。本研究將為提高胃癌對化療藥物敏感性提供新的實驗依據(jù)及新的靶點。當然,本研究也存在欠缺之處,首先miR-548c-5p 的作用可能是由其不同靶基因的表達綜合作用的結(jié)果,關(guān)于miR-548c-5p 在胃癌中的調(diào)控機制還需要進一步深入研究和闡釋;另外,本研究僅停留在細胞層面上,進一步將補充體內(nèi)實驗并結(jié)合臨床樣本進行驗證。

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