李偉慇
自噬是亞細胞膜結構發(fā)生動態(tài)變化并經溶酶體介導對細胞內蛋白質和細胞器降解的過程。通過平衡細胞合成和分解代謝,自噬穩(wěn)定細胞內環(huán)境,維持細胞存活。據(jù)有關研究,自噬于心肌缺血期和再灌注期起不同作用,缺血初期主要有保護作用,而再灌注期則做成細胞損傷而致死亡。40 多年前,就有關于缺血再灌注后自噬體誘導產生的報道[1]。模擬狀態(tài)一過性缺血再灌注可引起自噬泡增加。通過增強自噬作用,胎鼠心臟在無糖培養(yǎng)液中可長達4 h 無損傷。Decker 等[2]發(fā)現(xiàn),離體灌流兔心后再灌注能引起顯著的自噬作用及心功能的恢復,而激起細胞修復過程。上述實驗均證明急性心肌缺血過程中存在自噬,且自噬泡產生與之后心肌功能的恢復是互隨的。但另有研究指出,缺血再灌注過程中的自噬作用,有不利心肌細胞存活的作用,特別在再灌注過程中。通過3-MA 阻斷饑餓誘導的自噬在H9C2 轉化心肌細胞中,能夠降低細胞死亡[3]。因此本課題旨在探討自噬作用增強對缺氧引起的H9C2心肌細胞損傷的影響。
1.1 材料
1.1.1 儀器 電子天平為瑞士Mettler Toledo 生產的AL104 電子天平,超凈臺由蘇州凈化生產,中型冷凍臺式離心機Universal 32R Hettich zentrifugen 來自德國Hettich,移液器為德國Eppendorf 制造。MTT:Costar 48孔細胞培養(yǎng)板采用美國CORNING-COSTAR,日本Sanyo細胞培養(yǎng)箱,酶標儀為Labsystems Dragon 的Wellscan MK3 臺盼藍染色:Corning 細胞培養(yǎng)皿為美國Corning生產,顯微鏡為日本Olympus CKX41-A32FL/PH 倒置顯微鏡。
1.1.2 藥品與試劑 DMEM 培養(yǎng)基與0.25%胰蛋白酶均為美國gibco 的產品,磷酸緩沖鹽溶液(PBS)為武漢博士德生物工程有限公司生產,Rapamycin 購于美國Sigma。MTT:凱基生物生產的MTT 細胞增殖及細胞毒性檢測試劑盒KGA311。臺盼藍染色:曲利本蘭購自廣州瑞舒生物科技有限公司。
1.2 方法
1.2.1 細胞的培養(yǎng) 待H9C2 心肌細胞密度接近90%進行傳代:棄瓶中原液,用PBS 液清洗細胞表面2 次,加0.25%的胰蛋白酶消化液(含EDTA),令消化液恰好覆蓋細胞表面,入37℃CO2孵箱中消化1 min 左右,倒置于顯微鏡下見細胞成片收縮變圓、邊界清楚時,即加入含10%FBS 的DMEM 培養(yǎng)液終止消化,并反復輕輕吹打瓶底,使細胞脫壁,把細胞懸液移入離心管,1100 r/min 離心10 min,棄上清,加入含有10%FBS 的DMEM 培養(yǎng)液重懸細胞。鏡下計數(shù),以1∶3 左右比例分裝接種于新培養(yǎng)瓶中,靜置于37℃的CO2孵育箱中。24 h 后可見細胞重新貼壁生長,換新鮮培養(yǎng)基以去除組織塊與死細胞。
1.2.2 實驗分組 本次試驗用H9C2 轉化心肌細胞來模擬乳鼠心肌細胞,造模:乳鼠心肌細胞。分為Con組(正常培養(yǎng)12 h),C-R1組(正常培養(yǎng)12 h+1 mM rapamycin),C-R10組(正常培養(yǎng)12 h+10 mM rapamycin),C-R100組(正常培養(yǎng)12 h+100 mM rapamycin),C-R1000組(正常培養(yǎng)12 h+1000 mM rapamycin),N組(缺氧12 h),N-R1組(缺氧12 h+1 mM rapamycin),N-R10組(缺 氧12 h+10 mM rapamycin),N-R100組(缺氧12 h+100 mM rapamycin),N-R1000組(缺氧12 h+1000 mM rapamycin)。
1.2.3 實驗方法
1.2.3.1 MTT 在96 孔板加入細胞100 μl/孔(約1×104),置37℃ 5% CO2細胞培養(yǎng)箱培養(yǎng)。然后待細胞密度適合后將需要缺氧的96 孔板放進1% O2細胞培養(yǎng)箱培養(yǎng)12 h。將5×MTT 用 Dilution Buffer 稀釋成1×MTT。每孔加100 μl 1× MTT,37℃孵育4 h,令MTT還原為甲臜。吸出上清液,每孔加150 μl DMSO 使甲臜溶解,用平板搖床搖勻后即可用酶標儀在560 nm波長處檢測每孔的光密度。然后分析細胞存活率,具體方法為將各測試孔的光密度(OD)值減去本底OD 值(完全培養(yǎng)基加MTT,無細胞)或空白藥物孔OD 值(完全培養(yǎng)基加受試藥物的不同稀釋度加MTT,無細胞),各重復孔的OD 值取均數(shù)±標準偏差。細胞的存活率以T/C%表示,T 為加藥細胞的OD 值,C 為對照細胞的OD 值。細胞存活率=(加藥細胞OD/對照細胞OD)×100%。
1.2.3.2 臺盼藍染色 配制4%臺盼藍母液:稱取4 g臺盼藍,加少量蒸餾水研磨,加雙蒸水至100 ml,用濾紙過濾,4℃保存。使用時,用PBS 稀釋至0.4%。然后胰酶消化貼壁細胞,制備單細胞懸液,并作適當稀釋。細胞懸液與0.4%臺盼藍溶液以9∶1 混合混勻。(終濃度0.04%)在3 min 內,分別計數(shù)活細胞和死細胞。鏡下觀察,死細胞被染成明顯的藍色,而活細胞拒染呈無色透明狀。統(tǒng)計細胞活力:活細胞率=活細胞總數(shù)/(活細胞總數(shù)+死細胞總數(shù))×100%。
1.3 觀察指標 分析MTT、臺盼藍染色細胞存活率。
1.4 統(tǒng)計學方法 采用GraphPad Prism 5.0 統(tǒng)計軟件處理,存活率采用單因素方差分析(ANOVA),組間比較用LSD 法。P<0.05 表示差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 MTT 細胞存活率分析 正常處理的Con組與C-R10組,C-R100組的存活率比較,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),缺氧處理中N-R100組存活率最高,為0.068%。見表1,圖1,圖2。
圖1 正常處理
圖2 缺氧無糖12 h
2.2 臺盼藍染色細胞存活率分析 Con組、C-R1組、C-R10組、C-R100組、C-R1000組比較,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。N組、N-R1組、N-R10組、N-R100組、N-R1000組比較,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.05),其中N-R100組存活率最高,為0.058%,與MTT 結果基本吻合。見表2,圖3,圖4。
表2 臺盼藍染色細胞存活率分析(%)
圖3 正常處理
圖4 缺氧無糖12 h
細胞在基礎狀態(tài)下自噬水平較低,用于維持內環(huán)境的穩(wěn)態(tài);但是當細胞處于營養(yǎng)或能量不足、結構重建以及清除損壞的細胞器等狀態(tài)時自噬被顯著激活。從信號調控機制分類自噬的信號途徑分為兩種,其中一種是哺乳類雷帕霉素靶蛋白(mTOR)依賴性途徑,mTOR 是細胞中ATP 和氨基酸等營養(yǎng)物質的感受器,是細胞自噬的重要調節(jié)者。mTOR 的活性受細胞中葡萄糖與氨基酸水平的調節(jié)。當細胞中營養(yǎng)充足時,胰島素與受體結合后,通過激活ClassⅠPI3KPI3K-AKT激酶信號通路,繼而活化蛋白激酶mTOR。mTOR 通過抑制自噬相關蛋白Atg1-Atg13 復合物的形成來抑制細胞自噬的發(fā)生;當處于饑餓時,mTOR 的活性被抑制,導致Atg 家族成員活化,促進自噬泡的形成。而本次實驗用rapamycin 正是通過抑制mTOR 活性而刺激自噬。由結果可知,通過適量的rapamycin 適度刺激自噬作用發(fā)生對缺氧心肌細胞有一定的保護作用。這可能是因為細胞營養(yǎng)不足時,自噬途徑被激活,誘導自噬體形成,并由溶酶體介導降解膜磷脂及胞質內蛋白質等,給細胞提供能量與維持細胞的主要合成代謝。因此它可抑制慢性缺氧導致的凋亡,降低缺氧性心肌損傷,是缺氧過程心肌細胞自我保護的一種機制[4-6]。
綜上所述,本實驗利用H9C2 轉化心肌細胞來模擬乳鼠心肌細胞,采用MTT 與臺盼藍染色來檢查細胞活力,研究自噬增強對缺氧引起的心肌細胞活性的影響。通過本課題的研究可以得出以下結論:適當?shù)淖允稍鰪娍杀Wo缺氧引起的心肌細胞損傷。