李澤民 秦曉芳 李霞 田舒媛 張妍 王鑫
摘 要:目的:采用正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)優(yōu)化超聲輔助提取黃芪總黃酮的工藝。方法:在單因素實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)上,考察因素選定乙醇濃度、提取溫度、料液比、提取時(shí)間等方面,考察指標(biāo)是以總黃酮提取率為標(biāo)準(zhǔn),應(yīng)用正交法優(yōu)選最佳提取工藝條件。結(jié)果:其最佳工藝條件為:乙醇體積分?jǐn)?shù)60%,提取溫度60 ℃,料液比為1∶25(g∶mL),提取時(shí)間為40 min,總黃酮提取率0.446%。
關(guān)鍵詞:黃芪;黃酮;超聲波法;正交法
Abstract:Ultrasonic assisted extraction of total flavonoids in Astragalus membranaceus was optimized by orthogonal experimental design. Methods: Based on the single factor experiment, the factors selected were ethanol concentration, extraction temperature, material-liquid ratio, extraction time, etc. The investigation indicators were based on the total flavonoid extraction rate. The orthogonal extraction method was used to optimize the optimal extraction conditions. Results: The best process conditions were: etanol volume fraction 60%, extraction temperature 60 ℃, material-liquid ratio 1:25(g∶mL), extraction time 40 minutes, and total flavonoid extraction rate 0.446%.
Key words:Radix astragali; Flavonoids; Ultrasonic method; Orthogonal test
黃芪為豆科植物蒙古黃芪的根及膜莢黃芪的干燥根[1],主要生產(chǎn)于我國(guó)的北方地區(qū)。黃芪是一種益氣補(bǔ)虛作用的中藥。現(xiàn)代藥學(xué)研究表明,黃芪中含有黃酮類、多糖類、環(huán)黃芪醇類、皂苷類等多種生理活性成分[2]。在國(guó)內(nèi)外的研究中發(fā)現(xiàn),黃芪具有調(diào)節(jié)免疫力[3-6]、抑制腫瘤生長(zhǎng)[7-10]、抗動(dòng)脈粥樣硬化[11]、降低血糖[12]、抗病毒[13]、治療代謝紊亂[14]、遲發(fā)性神經(jīng)退行性疾病以及延緩衰老[15]等作用。
黃酮類化合物的提取方式主要有有機(jī)溶劑萃取法[16]、超聲波提取法[17]、微波萃取法[18]、酶萃法[19]、雙水相提取法[20]和超臨界萃取法[21]等。利用超聲波提取法并設(shè)計(jì)正交實(shí)驗(yàn),研究影響提取黃芪中黃酮類化合物的主要因素,對(duì)黃芪總黃酮的提取工藝條件進(jìn)行不斷的篩選,探求一種省時(shí)、省力、高效的黃芪總黃酮最佳提取工藝,對(duì)黃芪新型藥品和功能食品的開(kāi)發(fā)具有重要意義[22]。
1 材料與方法
1.1 材料與試劑
黃芪(根狀)、蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品、乙醇溶液、NaOH、NaNO3、NaNO2、Al(NO3)3·9H2O等均為分析純品。
1.2 實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1 黃芪總黃酮的提取
將黃芪樣品用粉碎機(jī)攪碎,并將粉末過(guò)篩(60目篩),用石油醚連續(xù)脫脂3次,待脫脂完成后用烘干機(jī)干燥。稱取0.50 g脫脂干燥黃芪粉末,放入100 mL的三角燒瓶中,加入一定量的乙醇,在一定條件下提取,過(guò)濾待檢測(cè)。
1.2.2 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制
(1)蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制。精確稱取20 mg蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品,120 ℃干燥至恒重,選取70%濃度的乙醇進(jìn)行溶解,并用100 mL容量瓶定容,搖勻即制成質(zhì)量濃度為0.20 mg·mL-1的蘆丁標(biāo)準(zhǔn)溶液。準(zhǔn)備6個(gè)25 mL的容量瓶,各加入0.00、2.00、4.00、6.00、8.00 mL和10.00 mL蘆丁標(biāo)準(zhǔn)液,再分別加入1 mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)為5%的NaNO2溶液,搖勻靜置5 min;繼續(xù)各加入1 mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)為10%的Al(NO3)3溶液,搖勻靜置5 min;再分別加入4 mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)為4%NaOH溶液,用70%濃度的乙醇溶液定容至25 mL,搖勻放置10 min;將70%乙醇溶液作為空白對(duì)照,測(cè)定其在510 nm波長(zhǎng)的吸光度。得到線性回歸方程為y=0.507 7x+0.041 1,R2=0.995 9。其中y為吸光度值,x為黃酮的質(zhì)量濃度(μg·mL-1)。
(2)樣品中總黃酮得率的計(jì)算。取適量黃芪樣品提取液按1.2.2(1)中方法測(cè)定溶液中總黃酮的含量。按照公式(1)算出總黃酮得率。
(1)式(1)中,C-提取液總黃酮質(zhì)量濃度,單位μg·mL-1;a-稀釋倍數(shù);V-提取液體積,單位mL;W-黃芪粉末質(zhì)量,單位mg。
1.2.3 單因素實(shí)驗(yàn)
(1)超聲功率對(duì)總黃酮得率的影響。在料液比1∶15,乙醇濃度40%,超聲溫度50 ℃,超聲時(shí)間50 min,提取1次的條件下,對(duì)超聲功率進(jìn)行單因素實(shí)驗(yàn)。超聲功率分別設(shè)定60、90、120、150 W和180 W,提取黃芪總黃酮含量并計(jì)算得率。
(2)料液比對(duì)總黃酮得率的影響。在超聲功率120 W,乙醇濃度40%,超聲溫度50 ℃,超聲時(shí)間50 min,提取1次的條件下,對(duì)料液比進(jìn)行單因素實(shí)驗(yàn)。料液比分別選取1∶10、1∶15、1∶20、1∶25和1∶30,提取黃芪總黃酮含量并計(jì)算得率。
(3)超聲時(shí)間對(duì)總黃酮得率的影響。在超聲功率120 W,乙醇濃度40%,料液比1∶15,超聲溫度50 ℃,提取1次的條件下,對(duì)超聲時(shí)間進(jìn)行單因素實(shí)驗(yàn)。超聲時(shí)間分別設(shè)定10、20、30、40 min和50 min,提取黃芪總黃酮含量并計(jì)算得率。
(4)超聲溫度對(duì)總黃酮得率的影響。在超聲功率120 W,料液比1∶15,乙醇濃度40%,超聲時(shí)間50 min,提取1次的條件下,對(duì)超聲溫度進(jìn)行單因素實(shí)驗(yàn)。超聲溫度分別選取40、50、60、70 ℃和80 ℃,提取黃芪總黃酮含量并計(jì)算得率。
(5)乙醇濃度對(duì)總黃酮得率的影響。在超聲功率120 W,料液比1∶15,超聲溫度50 ℃,超聲時(shí)間50 min,提取1次的條件下,對(duì)乙醇濃度進(jìn)行單因素實(shí)驗(yàn)。乙醇濃度分別選取50%、60%、70%、80%和90%,提取黃芪總黃酮含量并計(jì)算得率。
1.2.4 正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)
在單因素實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)上,選取乙醇體積分?jǐn)?shù)、提取溫度、超聲時(shí)間和料液比作為考察因素,設(shè)計(jì)四因素三水平即L9(34)的正交試驗(yàn),實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)見(jiàn)表1。
2 結(jié)果與分析
2.1 單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果與分析
2.1.1 功率對(duì)總黃酮得率的影響
隨著功率的增加,黃酮得率隨其改變,當(dāng)超聲功率為120 W時(shí),黃酮得率達(dá)到最大值,為0.359%;當(dāng)功率繼續(xù)增加時(shí),黃酮得率逐漸降低。功率對(duì)總黃酮得率的影響見(jiàn)圖1。
2.1.2 料液比對(duì)總黃酮得率的影響
為保證原料中的黃酮能完全轉(zhuǎn)移至液相中并獲得較高的提取率,料液比的選取極為重要。由圖2可知,隨料液比的增加,黃酮得率也隨之變化。當(dāng)料液比為1∶25(g∶mL)時(shí),黃酮得率達(dá)到最大值,為0.438%;當(dāng)料液比繼續(xù)增加時(shí),黃酮得率幾乎無(wú)變化,所以最佳料液比為1∶25(g∶mL)。
2.1.3 超聲時(shí)間對(duì)總黃酮得率的影響
超聲時(shí)間會(huì)影響提取的傳質(zhì)過(guò)程,若超聲時(shí)間過(guò)短,傳質(zhì)就不能達(dá)到平衡,其得率會(huì)偏低;當(dāng)超聲時(shí)間適宜,使傳質(zhì)達(dá)到基本平衡,得率最佳。綜合時(shí)間效益,當(dāng)提取時(shí)間為40 min時(shí),傳質(zhì)基本達(dá)到平衡,黃酮得率較高,為0.387%。超聲時(shí)間對(duì)總黃酮得率的影響見(jiàn)圖3。
2.1.4 溫度對(duì)黃芪總黃酮得率的影響
溫度影響分子的擴(kuò)散,為了增加溶質(zhì)的擴(kuò)散和溶劑的滲透,實(shí)驗(yàn)將超聲溫度作為考察指標(biāo),隨著溫度的升高,黃酮類化合物的得率隨提取溫度的升高而迅速增加,溫度為60 ℃時(shí)提取率高達(dá)0.435%;但隨著進(jìn)一步升溫,黃芪活性成分受損,出現(xiàn)大量雜質(zhì),使得后續(xù)步驟受到阻礙,綜合考慮,選取超聲溫度為60 ℃。溫度對(duì)總黃酮得率的影響見(jiàn)圖4。
2.1.5 乙醇濃度對(duì)總黃酮得率的影響
隨著乙醇濃度的增大,得率變化呈現(xiàn)先增加再減少的趨勢(shì)。當(dāng)乙醇濃度為60%時(shí),黃酮得率最高,達(dá)到0.377%;隨著乙醇濃度繼續(xù)增加,得率略有減少。這是因?yàn)辄S酮類化合物是一個(gè)具有廣泛極性的物質(zhì)群。加入一定量的乙醇,使總黃酮的醇溶性和水溶性得到最大程度的溶解。當(dāng)溶液極性過(guò)高或過(guò)低時(shí),會(huì)減少黃酮類化合物的溶解,導(dǎo)致總黃酮的提取率降低。所以最佳乙醇濃度是60%。乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)總黃酮得率的影響見(jiàn)圖5。
2.2 正交試驗(yàn)結(jié)果與分析
單因素實(shí)驗(yàn)是只對(duì)一個(gè)因素進(jìn)行實(shí)驗(yàn),而將其他因素都固定,采用該方法的前提是必需假定各因素之間無(wú)交互作用。如果各因素間存在交互作用,利用這種方法結(jié)論方面會(huì)受到影響。由于試驗(yàn)中大部分因素對(duì)總黃酮提取率的影響不是單一的線性關(guān)系,而是一個(gè)綜合的交叉影響,因此為了尋找黃芪總黃酮的最佳提取條件,在單因素實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)上,選用L9(34)正交表進(jìn)行正交實(shí)驗(yàn),結(jié)合單因素中黃酮得率的實(shí)驗(yàn)結(jié)果選取乙醇體積分?jǐn)?shù)(A)、超聲溫度(B)、超聲時(shí)間(C)和料液比(D)4個(gè)主要因素考察它們對(duì)總黃酮得率的影響。
由表2可知,總黃酮得率的影響程度各不相同,主次順序?yàn)镈>B>C>A,即料液比對(duì)總黃酮的得率影響最大,其次是提取溫度,再次是超聲時(shí)間,而乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)黃酮得率的影響最小。由k值確立的最佳組合為A2B3C3D3,即乙醇濃度70%、提取溫度60 ℃、超聲時(shí)間40 min、料液比1∶25(g∶mL)。由于乙醇濃度對(duì)總黃酮得率的影響最小,且考慮生產(chǎn)成本,故綜合考慮選取的工藝條件為A1B3C3D3,即乙醇濃度60%、提取溫度60 ℃、超聲時(shí)間40 min、料液比1∶25(g∶mL),其總黃酮得率為0.446%。
3 討論
黃芪是我國(guó)傳統(tǒng)的補(bǔ)氣良藥。在保健品中,黃芪多與其他補(bǔ)益性中草藥合用,起到保健作用[23],因此對(duì)黃芪的功能特性進(jìn)行研究,以期擴(kuò)大黃芪的綜合利用??傸S酮是一種很好的天然抗氧化劑,本實(shí)驗(yàn)采用超聲波輔助提取工藝,運(yùn)用單因素試驗(yàn)和正交試驗(yàn)研究超聲功率、料液比、超聲時(shí)間和超聲溫度等方面對(duì)黃芪總黃酮提取含量的影響。從效率和成本上考慮,該提取工藝簡(jiǎn)單可行,穩(wěn)定性和重現(xiàn)性好。因?yàn)樵摲椒梢怨?jié)省大量的時(shí)間和溶劑,降低企業(yè)的生產(chǎn)成本,提高企業(yè)的經(jīng)濟(jì)效益,為該資源的開(kāi)發(fā)利用提供有益的參考,并提供一些方法學(xué)依據(jù)。
參考文獻(xiàn):
[1]國(guó)家藥典委員會(huì).中華人民共和國(guó)藥典(一部)[M].北京:化學(xué)工業(yè)出版社,2000.
[2]陳艷蕊,毛欣月,金文聞,等.黃芪多糖結(jié)構(gòu)及其單糖組成的氣相色譜-質(zhì)譜研究[J].現(xiàn)代生物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2011,11(S1):4632-4635.
[3]林夢(mèng)感,楊義芳,許海燕.黃芪多糖MAPS-5的化學(xué)結(jié)構(gòu)及其體外淋巴細(xì)胞增殖活性[J].中草藥,2009,40(12):1865-1868.
[4]Yeong L K,Jin J Y.Macrophage activation by polysaccharide isolated from Astragalus membranaceus[J].International Immunopharmacology,2005,5(7-8):1225-1233.
[5]Zhao L H,Ma Z X,Zhu J,et al.Characterization of polysaccharide from Astragalus radix as the macrophage stimulator[J].Cellular immunology,2011,271(2):329-334.
[6]Yuan Y,Sun M,Li K S.Astragalus mongholicus polysaccharide inhibits lipopolysaccharide-induced production of TNF-alpha andinterleukin-8[J].World journal of gastroenterology,2009,15(29):3676-3680.
[7]Li J,Bao Y,Lam W,et al.Immunoregulatory and anti-tumor effects of polysaccharopeptide and Astragalus polysaccharides ontumor-bearing mice[J].Immunopharmacology & Immunotoxicology,2008,30(4):771-782.
[8]Guo L,Bai S P,Zhao L,et al.Astragalus polysaccharide injection integrated with vinorelbine and cisplatin for patients with advanced non-small cell lung cancer: effects on quality of life and survival[J].Medical oncology (Northwood, London, England),2012,29(3):1656-16662.
[9]梁連生,余 靜,宋瑞霞,等.甘肅黃芪黃酮對(duì)AngⅡ致內(nèi)皮細(xì)胞凋亡的保護(hù)作用[J].中國(guó)藥理學(xué)通報(bào),2006(12):1505-1509.
[10]張冬青,汪德清,于 勇.黃芪總黃酮和毛蕊異黃酮對(duì)K562細(xì)胞的抑制作用及其機(jī)制研究[J].中國(guó)中藥雜志,2011,36(24):3502-3505.
[11]Wang Y F,Yang X F,Cheng B,et al.Protective effect of Astragalus polysaccharides on ATP binding cassette transporter A1 in THP1 derived foam cells exposed to tumor necrosis factor-alpha[J].Phytotherapy Research,2010,24(3):393-398.
[12]Mao X Q,Yu F,Wang N,er al.Ouyang,hypoglycemic effect of polysaccharide enriched extract of Astragalus membranaceus in diet induced insulin resistant C57BL/6J mice and its potential mechanism[J].Phytomedicine,2009,16(5):416-425.
[13]Huang X Y,Wang D Y,Hu Y L,et al.Effect of sulfated astragalus polysaccharide on cellular infectivity of infectious bursal disease virus[J].International journal of biological macromolecules,2008,42(2):166-171.
[14]Li S G,Zhang Y Q,Zhao J X.Preparation and suppressive effect of As-tragalus polysaccharide in glomerulonephritis rats[J].International immunopharmacology,2007,7(1):23-28.
[15]Zhang H,Pan N,Xiong S,et al.Inhibition of polyglutamine-me diated proteotoxicity by Astragalus membranaceus polysaccharide through the DAF16/FOXO transcription factor in caenorhabditis elegans[J].Biochemical Journal,2012,441(1):417.
[16]曹春艷.響應(yīng)面法優(yōu)化銀杏葉黃酮提取工藝[J].中國(guó)食品學(xué)報(bào),2014,14(4):78-86.
[17]陳紅梅,謝 翎.響應(yīng)面法優(yōu)化半枝蓮黃酮提取工藝及體外抗氧化性分析[J].食品科學(xué),2016,37(2):45-50.
[18]肖衛(wèi)華,韓魯佳,楊增玲,等.響應(yīng)面法優(yōu)化黃芪黃酮提取工藝的研究[J].中國(guó)農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2007(5):52-56.
[19]薩茹麗.沙蔥黃酮提取工藝優(yōu)化、結(jié)構(gòu)鑒定及其相關(guān)生物活性研究[D].呼和浩特:內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué),2014.
[20]鄧婉婷.烏梅各組分生物活性研究及提取工藝優(yōu)化[D].廣州:廣東藥學(xué)院,2015.
[21]Liu J,Lin S Y,Wang Z Z,et al.Supercritical fluid extraction of flavonoids from Maydis stigma and its nitrite-scavenging ability[J].Food and Bioproducts Prcessing,2010,89(4):333-339.
[22]曹 勇,馬艷梅,商雪嬌,等.響應(yīng)面法優(yōu)化超聲輔助醇提黃芪黃酮最佳工藝[J].食品工業(yè)科技,2014,35(22):278-280,285.
[23]李香串,喬麗芳,任 颯.基于關(guān)聯(lián)規(guī)則法研究黃芪在保健食品配方中的應(yīng)用規(guī)律[J].山西醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2019,50(1):40-49.