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        “雙固一通”艾灸法對糖尿病及糖尿病周圍神經(jīng)病變大鼠海馬BDNF和NT-3蛋白的影響

        2020-06-30 01:15:06曾林向婷王天沛胡霞唐宏圖
        上海針灸雜志 2020年5期
        關鍵詞:海馬血糖

        曾林 ,向婷 ,王天沛 ,胡霞 ,唐宏圖 ,4

        (1.湖北中醫(yī)藥大學針灸骨傷學院,武漢 430061;2.中國解放軍廣州軍區(qū)武漢總醫(yī)院,武漢 430070;3.湖北中醫(yī)藥大學基礎醫(yī)學院,武漢 430065;4.針灸治未病湖北省協(xié)同創(chuàng)新中心,武漢 430061)

        糖尿病(diabetes mellitus, DM)是胰島素分泌的缺陷或(和)胰島素作用障礙所導致的一組以慢性高血糖為特征的代謝性疾病。DM以高血糖為主要標志,誘發(fā)各種嚴重的并發(fā)癥,是DM致死、致殘的主要原因[1]。DM已成為全世界許多國家的常見病和多發(fā)病,其病死率已居腫瘤、心血管病之后的第3位,是工業(yè)發(fā)達國家中僅次于癌癥、艾滋病和心血管疾病之后需優(yōu)先考慮的疾病[2]。據(jù)國家衛(wèi)生部調查顯示,我國每天新增 DM患者3000例,每年約增加120萬[3]。糖尿病周圍神經(jīng)病(diabetic peripheral neuropathy, DPN)是 DM 常見并發(fā)癥,近年來,隨著DM發(fā)病率的提高,其周圍神經(jīng)病變的發(fā)病率也明顯增多。據(jù)統(tǒng)計,DPN的發(fā)生率高達60%~90%[4]。有相關研究表明,糖尿病患者體內缺乏神經(jīng)營養(yǎng)因子及其相關受體,從而導致了 DPN的發(fā)生[5]。而且另有學者指出,神經(jīng)營養(yǎng)因子在神經(jīng)修復的過程中起著重要作用[6],因此缺乏此類因子也是多數(shù)神經(jīng)損傷不可逆轉的主要原因之一。本實驗通過對DM、DPN大鼠血糖及其海馬組織的腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子(brain-derived neurotrophic factor, BDNF)和神經(jīng)營養(yǎng)素-3(neurotrophin-3, NT-3)蛋白表達的觀察,擬探討艾灸對防治DM及DPN的作用機理。

        1 材料與方法

        1.1 實驗動物

        選擇的 SPF級雄性 SD大鼠 105只,體質量為(200±20)g(3月齡),實驗動物由湖北中醫(yī)藥大學實驗動物中心[實驗動物許可證號 syxk(鄂)2017-0067]提供。適應性喂養(yǎng)1周,再行實驗,實驗過程完全符合《關于善待實驗動物的指導性意見》的相關規(guī)定。

        1.2 主要試劑及儀器

        鏈尿佐菌素(S0130,Sigma公司,美國),BDNF抗體(ab108319,Abcam 公司,美國),NT3 抗體(ab216491,Abcam公司,美國),KD-YS3A生物組織自動脫水機(浙江省金華市科迪儀器設備有限公司),KL-Ⅰ型生物組織自動包埋機(湖北康龍電子科技有限責任公司),F(xiàn)inesse325旋轉石蠟切片機(美國賽默飛世爾科技有限公司),BX53型生物顯微鏡(日本奧林巴斯公司),AWL-1001-M艾科浦超純水機(美國艾科浦國際有限公司),動物實驗用艾條(河南南陽漢方艾葉有限公司),ONE TOUCH穩(wěn)豪?倍易型血糖儀(美國強生公司),HPIAS-1000高清晰彩色病理圖文分析系統(tǒng)(武漢千屏影像技術有限公司)。

        1.3 模型制備

        采用隨機數(shù)字表法隨機選取 15只大鼠作為正常對照,另90只大鼠禁食不禁水12 h后,左下腹腔注射鏈脲佐菌素[7],劑量為 50 mg/kg體質量。注射完成后72 h開始測血糖,凡血糖水平在16.7 mmol/L以上者列為DM模型大鼠[8]。

        1.4 實驗分組和處理

        從造模成功的75只DM模型大鼠中采用隨機數(shù)字表法隨機抓取30只,并再次采用隨機數(shù)字表法均分為B組和C組,每組15只;剩余45只DM模型大鼠繼續(xù)正常喂養(yǎng)4周,測定感覺或運動傳導速度減慢超過11%即成DPN大鼠模型[9],共30只,再采用隨機數(shù)字表法隨機均分為D組和E組,每組15只。

        A組:正常對照,不造模,不治療。

        B組:DM模型組,造模成功后不行艾灸治療,正常喂養(yǎng)。

        C組:DM艾灸治療組,造模成功后,取大鼠關元,雙側足三里、胰俞穴[10],用0.5 cm×15 cm的實驗動物用艾條對各穴位先后進行懸灸,艾條距離穴位約5 cm,每穴15 min,每日1次,連續(xù)治療4周后取材檢測。

        D組:DPN模型組,不行艾灸治療,正常喂養(yǎng)。

        E組:DPN艾灸治療組,治療方法同C組。

        1.5 指標觀察與檢測

        1.5.1 血糖檢測

        于造模后72 h、4周治療結束后和8周治療結束后空腹尾靜脈采血,用強生血糖儀及配套試紙檢測血糖。

        1.5.2 BDNF和NT-3蛋白免疫組化檢測

        4周治療結束后和8周治療結束后,用10%水合氯醛將各組大鼠麻醉,迅速斷頭取大腦,剝離海馬部分置于4%的多聚甲醛固定液中固定。常規(guī)石蠟包埋、切片,貼片后于60℃烘片3 h備用。

        免疫組化DAB法檢測海馬組織BDNF和NT-3蛋白的表達水平,具體步驟為脫蠟,PBS浸洗3 min×3次,用微波輻射抗原修復法進行抗原修復,而后等待其自然降至常溫,用 0.3%過氧化氫甲醇液阻斷內源性過氧化物酶,PBS浸洗 5 min×3次,10%正常山羊血清室溫封閉10 min,甩去血清滴加1:250倍稀釋的兔抗BDNF、NT-3單/多克隆抗體,4℃孵育過夜,PBS浸洗5 min×3次,加入辣根過氧化物酶標記二抗IgG多聚體,37℃孵育45 min,PBS浸洗5 min×3次。用新鮮配制的DAB顯色液顯色,在顯微鏡下控制顯色時間,用PBS終止反應,蘇木素復染,鹽酸酒精分化,水洗返藍,梯度乙醇脫水,二甲苯透明,中性樹膠封片晾干,鏡檢拍照。圖片分析采用 HPIAS-1000高清晰彩色病理圖文分析系統(tǒng)進行圖像分析。每鼠取切片5張,400倍鏡下檢測各片的平均光密度值(density),分別測定,累加取其平均值,即為該鼠density值。終值單位為像素點,檢測場面積為15萬個像素點。

        1.6 統(tǒng)計學方法

        數(shù)據(jù)采用SPSS19.0統(tǒng)計軟件進行處理。符合正態(tài)分布的計量資料采用均數(shù)±標準差表示,各組治療前后比較運用配對樣本t檢驗,組間比較運用單因素方差分析。檢驗水準為α=0.05。

        2 結果

        2.1 各組大鼠治療前后血糖比較

        B組、D組與 A組比較,血糖水平明顯升高(P<0.05);C組與B組比較,大鼠在治療后血糖水平均降低(P<0.05);E組與D組比較,大鼠在治療后血糖水平均降低(P<0.05),詳見表1。

        表1 各組大鼠治療前后血糖比較 (±s,mmol/L)

        表1 各組大鼠治療前后血糖比較 (±s,mmol/L)

        注:與A組比較1)P<0.05;與B組比較2)P<0.05;與D組比較3)P<0.05

        組別 n 72 h 4 w 8 w A 組 15 4.78±0.83 5.14±1.08 5.08±0.93 B組 15 19.23±1.421) 23.25±2.181) -C組 15 21.34±2.061) 13.68±2.891)2) -D 組 15 21.73±3.151) 23.58±2.191) 26.39±2.371)E 組 15 20.65±2.721) 22.46±3.481) 13.87±2.571)3)

        2.2 各組大鼠海馬組織BDNF蛋白表達比較

        正常大鼠海馬BDNF蛋白陽性表達呈棕色,B組和D組大鼠陽性表達均減少,經(jīng)“雙固一通”灸法防治后,C組和E組大鼠的BDNF蛋白陽性表達均明顯增加,詳見圖1。

        圖1 各組大鼠海馬組織BDNF蛋白表達比較(×400)

        表2 各組大鼠BDNF免疫陽性神經(jīng)元平均光密度值比較(±s,OD/mm2)

        表2 各組大鼠BDNF免疫陽性神經(jīng)元平均光密度值比較(±s,OD/mm2)

        注:與A組比較1)P<0.05;與B組比較2)P<0.05;與D組比較3)P<0.05

        組別 n 4 w 8 w A組 15 24.36±0.15 24.87±0.34 B組 15 12.16±0.081) -C組 15 18.52±0.432) -D組 15 - 9.56±1.321)E組 15 - 16.58±0.643)

        B組、D組大鼠海馬BDNF免疫陽性神經(jīng)元平均光密度值較A組明顯減少(P<0.05);與B組比較,C組大鼠 BDNF免疫陽性神經(jīng)元平均光密度值明顯增加(P<0.05);與D組比較,E組大鼠BDNF免疫陽性神經(jīng)元平均光密度值明顯增加(P<0.05),詳見表2。

        2.3 各組大鼠海馬組織NT-3蛋白表達比較

        正常大鼠NT-3蛋白陽性表達呈棕色,B組和D組大鼠陽性表達均減少,經(jīng)“雙固一通”灸法防治后,C組和E組大鼠的NT-3蛋白陽性表達均明顯增加,詳見圖2。

        圖2 各組大鼠海馬組織中NT-3蛋白表達比較(×400)

        B組、D組大鼠海馬NT-3免疫陽性神經(jīng)元平均光密度值較A組明顯減少(P<0.05);與B組比較,C組大鼠 NT-3免疫陽性神經(jīng)元平均光密度值明顯增加(P<0.05);與D組比較,E組大鼠NT-3免疫陽性神經(jīng)元平均光密度值明顯增加(P<0.05),詳見表3。

        表3 各組大鼠NT-3免疫陽性神經(jīng)元平均光密度值比較(±s,OD/mm2)

        表3 各組大鼠NT-3免疫陽性神經(jīng)元平均光密度值比較(±s,OD/mm2)

        注:與A組比較1)P<0.05;與B組比較2)P<0.05;與D組比較3)P<0.05

        A組 15 38.56±0.05 38.34±0.32 B組 15 11.32±0.061) -C組 15 24.51±0.232) -D組 15 - 8.68±0.821)E組 15 - 20.36±0.583)

        3 討論

        中醫(yī)學將糖尿病(DM)稱之為“消渴”。糖尿病周圍神經(jīng)病(DPN)在古醫(yī)籍中無確切的病名,但長期以來DPN與“消渴”都是密切聯(lián)系在一起的?!饵S帝內經(jīng)》時期已對消渴的病因、病機、癥狀等有了較為詳細的記載。《內經(jīng)》明確地指出消渴病因為“此肥美之所發(fā)也,引人必數(shù)食甘美多肥也。肥者令人內熱,甘者令人中滿,故其氣上溢,轉為消渴”,這些論述與現(xiàn)代醫(yī)學研究認為飲食失控可誘發(fā)糖尿病的理論十分吻合。唐初著名醫(yī)家甄立言《古今錄驗方》記載消渴臨床癥狀為“渴而飲水多,小便數(shù),無脂似麩片甜”,王燾在《外臺秘要》中指出“消渴者,每發(fā)小便至甜”?!端貑枴ぬ庩柮髡摗?“脾病不能為胃行其津液,四肢不得稟水谷之氣,氣日以衰,脈道不利,筋骨肌肉皆元氣以生。”說明 DPN的臨床表現(xiàn)是以四肢麻木不仁為主;而脾虛化生津液不足,營陰虧耗,從而引起氣血虧虛,不能濡養(yǎng)筋脈而導致四肢不溫而痛;氣虛血行不暢,久而成瘀。

        中醫(yī)學“治未病”以正氣為本,固護先天和后天是其基礎和關鍵,通過“治”達到“防”的目的,“治”是積極的、主動的“防”?!胺馈钡囊饬x有三,一是預防疾病,二是療疾防變,三是調節(jié)機能。中醫(yī)學“治未病”的本質特征是“固護正氣、以治為防”[11]?!半p固”即固護人體先天之本和后天之本,“一通”即通瀉病邪。足三里為胃經(jīng)合穴,胃腑之下合穴,針之可調理脾胃,補益氣血生化之源,固護后天之本;關元為任脈腧穴,也是三陰經(jīng)與任脈交會穴,為元陰、元陽關藏出入之所,針之可益精補氣,扶助人體先天之本。足三里、關元配合,兼顧先天和后天,補益正氣,再與治療消渴的效穴胰俞相配伍,則可達到以治為防、防微杜漸的目的[12]?!半p固一通”針灸法以中醫(yī)發(fā)病學和防治學理論為基礎,堅持“未病先防,既病防變”的治療原則,注重調動機體整體的潛在能力,以治為防,防治結合[13]。

        灸法在對 DM及其并發(fā)癥的防治方面也有極為豐富的記載。古文獻《千金翼方》載:“消渴咽喉干,灸胃管下俞三穴各百壯,穴在背第八椎下橫三寸,間寸灸之?!庇钟小笆巢怀漯嚲娜铩敝f。在現(xiàn)代臨床研究方面,對DPN患者采用雷火灸法[14-15]、溫針灸[16]可明顯改善患者的生活質量。也有學者發(fā)現(xiàn),在治療 DPN上,運用溫和灸治療后患者空腹血糖、糖化血紅蛋白、一氧化氮、丙二醛和血漿內皮素均有明顯改善,且與西藥組有明顯差異[17]。亦有報道稱通過溫針灸法可以顯著改善DPN患者中醫(yī)證候積分、Toronto量表評分,提高神經(jīng)傳導速度[18]。在現(xiàn)代動物實驗方面,趙永等[19]觀察到“雙固一通”灸法可對模型大鼠的血清中的TNF-α和 IL-6的含量起到良性調節(jié)的作用。另有學者[20-21]研究表明艾灸可更有效地清除自由基,發(fā)揮胰島素(INS)的作用,改善患者的代謝狀態(tài)。

        神經(jīng)營養(yǎng)因子(neurotrophic factors, NTFs)是一類在靶組織內合成,并逆行運輸至效應神經(jīng)元的能對中樞和周圍神經(jīng)發(fā)揮營養(yǎng)作用的小分子肽類物質和蛋白質[22]。而NTFs的缺乏被認為是DPN的發(fā)生的主要原因[23]。在神經(jīng)營養(yǎng)因子家族中神經(jīng)生長因子(NGF)研究較多,其功能為維持神經(jīng)的功能和形態(tài)、修復神經(jīng)損傷,還能促進胰島的正常發(fā)育和功能維持,當DPN發(fā)生時,體內 NGF水平下降,引起神經(jīng)軸突運轉異常,影響神經(jīng)正常功能[24]。近來發(fā)現(xiàn)腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子(BDNF)和神經(jīng)營養(yǎng)素-3(NT-3)對中樞和周圍神經(jīng)組織有廣泛作用,對神經(jīng)元發(fā)育有促進作用,并能使受損神經(jīng)元免于凋亡[25]。BDNF和NT-3是神經(jīng)營養(yǎng)因子家族中重要成員,它們與NGF有50%同源性[26]。BDNF對在體運動神經(jīng)元發(fā)育、成年后運動神經(jīng)元存活及病變運動神經(jīng)元存活和軸突再生有著十分重要的作用[27-30]。李昌琪等[31]在小鼠坐骨神經(jīng)壓榨損傷后,腹腔注射 BDNF抗體中和內源 BDNF,證實了小鼠坐骨神經(jīng)損傷后內源性BDNF可參與脊髓前角運動神經(jīng)元內突觸素Ⅰ mRNA表達的調節(jié)。張力等[32]也發(fā)現(xiàn)內源性BDNF對周圍神經(jīng)的再生和髓化起重要作用。在Wobler小鼠模型中(運動神經(jīng)元疾病),外源性BDNF可阻滯運動功能失調,并減少去神經(jīng)支配的肌肉萎縮和運動神經(jīng)元軸突的丟失。因此,BDNF在受損運動神經(jīng)元的修復中起重要作用[33]。NT-3主要分布在大腦海馬,在骨骼肌中也大量存在,對支配肌肉的感覺神經(jīng)元和運動神經(jīng)元都發(fā)揮著營養(yǎng)作用。NT-3可以調節(jié)神經(jīng)元的活動以及促進損傷神經(jīng)的修復,NT-3缺乏或含量不足時,會對學習記憶等功能產(chǎn)生影響,并與阿爾茨海默病等神經(jīng)退行性病變密切相關。以往的許多研究已證實DM可以引起周圍神經(jīng)系統(tǒng)NT-3合成和運輸下降[34]。NT-3能夠促進神經(jīng)元存活,阻止神經(jīng)元損傷后死亡,促進神經(jīng)元修復和調節(jié)神經(jīng)遞質傳遞等功能,并可以逆轉受損神經(jīng)元的萎縮,使損傷部位存活的神經(jīng)元增多[35]。

        本實驗結果顯示,通過“雙固一通”艾灸法治療后,模型大鼠的血糖明顯下降,發(fā)揮了其降糖的作用,而且發(fā)現(xiàn)模型組大鼠海馬中BDNF和NT-3蛋白表達的數(shù)量明顯降低,DM及 DPN嚴重損傷了大鼠神經(jīng)功能;而 DM和DPN治療組中,二者BDNF和NT-3蛋白的表達顯著增加,因此,“雙固一通”艾灸法通過影響B(tài)DNF和NT-3的產(chǎn)生,保護糖尿病大鼠的感覺神經(jīng)元,對糖尿病及并發(fā)癥周圍神經(jīng)病變起到治療作用。

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